PRACTICA Nº 1 FORMAS DE REPRODUCCION DE LOS ORGANISMOS: ASEXUAL Y SEXUAL OBJETIVOS Al finalizar la práctica, el alumno será capaz de: 1. Reconocer formas de reproducción en organismos unicelulares y pluricelulares 2. Realizar preparaciones microscópicas para la observación de: gemación en 3. levaduras, esporulación en hongos y conjugación en algas Demostrar experimentalmente procesos de regeneración en planarias 4. Demostrar experimentalmente el proceso de reproducción asexual en tubérculos MATERIAL PARA LA PRACTICA Levadura fresca de panificación , alimentos contaminados con hongos, cultivo de planarias, tubérculo de papa, aguas estancadas. Microscopio compuesto de luz, laminas excavadas, lamina porta objetos y laminillas cubre objetos, pipetas pasteur, frascos de boca ancha, goteros, tubos de ensayo, alfileres, estiletes y navajas de afeitar. Solución de sacarosa al 5%, hidróxido de potasio al 10%. PROCEDIMIENTO A. OBSERVACION DE GEMACION EN LEVADURAS • Preparar una suspensión de levaduras en un tubo de ensayo con 5 ml. De sacarosa al 5% y o.5 grs. De levadura fresca • Dejar en reposo durante 30 minutos. • Realizar una preparación en fresco con una gota de suspensión • Observe al microscopio a menor y mayor aumento, recorra el preparado hasta ubicar levaduras en gemación • Si en el campo microscópico observa superposición de levaduras, realice una dilución • Esquematice OBSERVACION DE ESPORULACION EN HONGOS 1º PREPARACION EN FRESCO • De la superficie de un alimento contaminado con hongos, extraiga una muestra con la ayuda de un estilete • Coloque una muestra en una lámina porta objeto que contiene una gota de KOH al 10%. • Cubre la preparación con una laminilla Observe a mediano y mayor aumento Esquematice 2. OBSERVACION DE CONIDIAS EN Aspergillus • Coloque en el microscopio una lámina montada de Aspergillus sp B. • • 8. . OBSERVACION DE REPRODUCCION SEXUAL EN ALGAS • Observación de conjugación de Zygonema sp y Spirogyra sp • Coloque en el microscopio una lámina montada de Zygonema sp • Observe a menor y mayor aumento los tubos o puentes de conjugación así como las zygosporas • Esquematice • Proceda de la misma manera para la observación de la conjugación de la Spirogyra 4º OBSERVACION DE REGENERACION EN PLANARIAS • Obtenga 3 planarias y deje que se extiendan sobre una superficie plana de un corcho previamente humedecida con hielo. De papa que incluya por lo menos 2 yemas . 6. tal como se indica Seccione un pedazo de 2 a 3 cm. separando luego la parte anterior de la posterior .rotule los recipientes y pongalos uno sobre otro. . 5.corte el tercer gusano en varias secciones pequeñas .coloque las piezas seleccionadas de cada gusano en frascos de vidrio diferentes que contenga agua de charco .Plante las porciones de papa en un recipiente que contenga partes iguales de arena y turba Mantenga la humedad permanente . entonces pueden ser alimentadas con pedacitos de hígado . o también puede colocarlo sobre un trozo de vidrio • Cuando los gusanos estén inmóviles.Al final de la primera semana observe los resultados y anótelos en un cuadro o tabla correspondiente 5º OBSERVACION DE LA REPRODUCCION ASEXUAL EN LA PAPA Obtenga una papa y córtelo en tres secciones.• • Observe a menor y mayor aumento las estructuras del conidioforo y de las conidiosporas Esquematice 3º.con una hoja o afeitar o un bisturí haga un corto longitudinal al primer gusano . 3. 7.Observe los resultados al final de la primera semana y anote sus observaciones en el cuadro a tabla correspondiente CUESTIONARIO Existe mitosis en el proceso de la gemación? como se forman las esporas? se le puede llamar cigoto a la zigospora? ¿porqué? Haga un paralelo entre reproducción sexual y asexual se observó regeneración en todas las planarias que procesos celulares ocurren en la regeneración? en cual de los tratamientos de la papa se observó crecimiento? ¿Por qué? Porque no hubo crecimiento en todas las secciones de la papa? 1. proceda de la siguiente manera: . solo cuando estos muestren un progreso en ele crecimiento. 2. 4. De papa que contenga una yema Seccione un pedazo de 2 a 3 cm de papa sin ojo Seccione un pedazo de papa de 5 a 6 cm.corte el segundo gusano por el centro. tratando de colocar un vacio sobre el de arriba para evitar que el agua se evapore .No alimente a las planarias durante el periodo de regeneración. protejalos colocándolos en un lugar frío y lejos de cualquier luz directa. gradillas. tubos de ensayo. Extraer las anteras con ayuda de estiletes o agujas hipodérmicas En un petri realizar la fijación de la muestras en Carnoy durante 10 minutos Extraer el fijador carnoy con la ayuda de una jeringa o una pipeta Pasteur.5 a 2 mm. navajas de afeitar o bisturí. estiletes finos. Evitar que se realice el deslizamiento de la laminilla Observar a menor. Lavar con agua destilada tres veces. peces. jeringa y agujas hipodermicas. OBSERVACION DE MEIOSIS EN CELULAS VEGETALES Con una navaja de afeitar corte los primordios florales del ají que contenga una longitud de 1. como en el paso 4 Colorear con orceína acética al 1% durante 20 minutos Colocar las muestras coloreadas en la parte central de un porta objetos y cubrirlas con una laminilla Aplastar suavemente la muestra con la punta de un lápiz o con la parte posterior de una aguja hipodérmica. el alumno será capaz de reconocer algunas de las fases de división meiótica en células vegetales 2. papel de filtro Fijador carnoy. pipetas. realizar preparaciones en fresco y en seco de muestras de epidídimo. sapo. gallos. placas petri. mecheros. aceite de cedro y gelatina fenicada PROCEDIMIENTO A. pipetas pasteur. vasos de precipitación. diferenciar la espermatogénesis de la espermiogénesis en cortes histológicos de gónadas MATERIAL - Primordios florales de Capsicum sp “aji”. cerdo. orceína acética al 1%. para observar espermatozoides 4. baño maria. Identificar las características morfo anatómicas de las gónadas utilizadas en el laboratorio 3. etc) Microscopio compuesto. mayor y gran aumento Esquematice lo observado B. colocarla sobre una superficie plana y realizar un aplastamiento enérgico con el pulgar. suero fisiológico. con una duración de dos minutos cada vez Coloque la muestra en un tubo de ensayo que contenga HCl al 10% y llevarlo a baño maría a 60º C y por tres minutos para realizar la hidrólisis Lavar la muestra nuevamente. frascos de coloración. ácido clorhídrico al 10%. describiendo círculos concéntricos Cubrir la lámina con papel de filtro. láminas porta y cubre objetos. OBSERVACION DE GONADAS MASCULINAS Lavar las gónadas en agua corriente - . cocina eléctrica. agua destilada. GONADAS Y GAMETOS MASCULINOS DE VERTEBRADOS OBJETIVOS Al finalizar la práctica. gonadas masculinas de vertebrados ( carnero.PRACTICA Nº 2 MEIOSIS EN VEGETALES. carnero. Que características particulares presentan los espermatozoides de toro. ancho y peso. OBSERVACION DE GAMETOGENESIS EN CORTES HISTOLOGICOS DE VERTEBRADOS • • • • • • 1. 3. Determine la consistencia y color Identifique el epidídimo y sus partes Esquematizar lo observado Proceda de la misma manera con las otras gónadas disponibles OBSERVACION DE ESPERMATOZOIDES PREPARADOS EN FRESCOS Realice un preparado en fresco de semen humano Observe a menor y mayor aumento Esquematice Proceda de igual manera con las muestras de otras especies PREPARADOS EN SECO Realice un corte a nivel de testículo y epidídimo para obtener la muestra Tome una muestra con una lámina porta objeto y realice una extensión Secar al ambiente o con la ayuda de un mechero Realizar una coloración simple Observar al microscopio con diferentes objetivos Esquematizar lo observado D. ¿ porque? Cual es el origen y la función del acrosoma? 4. cerdo y pollo? .C. Es posible observar algunas de las fases meióticas en los ápices de las raíces de cebolla Allium cepa. GAMETOGENESIS EN HUMANOS Coloque en el microscopio una lámina montada de corte histológico de testículo Observe a menor y mayor aumento los tubos seminiferos • Localice zonas en las que se pueda observar la fase de espermatogénesis y espermiogénesis Esquematice lo observado GAMETOGENESIS EN ANFIBIOS Coloque en el microscopio una lámina montada de corte histológico de testículo Observe a menor y mayor aumento los tubos seminíferos • Localice zonas en las que se puede observar la fase de espermatogénesis y espermiogénesis Esquematice lo observado CUESTIONARIO Que significado tienen los términos cariocinesis y citocinesis? 2. • • • • • • • • • • . La distribución de los citos en el túbulo seminífero de los anfibios es igual que en los mamíferos? 5.Realizar las siguientes mediciones: longitud. ancho y peso. Reconocer los diferentes estadíos de la ovogénesis en pez. anfibios y mamíferos) Microscopio compuesto. el alumno será capaz de: 1. aceite de cedro. OVOGENESIS EN ANFIBIOS • Coloque en el microscopio una lámina montada de corte histológico de ovario de anfibio • Observe a menor y mayor aumento e identifique los folículos en diferentes estadíos de maduración • Esquematice lo observado OVOGENESIS EN MAMIFEROS • Coloque en el microscopio una lámina montada de corte histológico de ovarios de gata • Observe a menor y mayor aumento e identifique los folículos en los diferentes estadíos de maduración • . pinzas. balanza. OBSERVACION DE CORTES HISTOLOGICOS DE OVARIOS DE VERTEBRADOS OVOGENESIS EN PECES • Coloque en el microscopio una lámina montada de corte histológico de ovario de pez • Observe a menor y mayor aumento los diferentes estadíos de los ovocitos en proceso de maduración y crecimiento Esquematice lo observado. anfibio y mamífero. PROCEDIMIENTO A. Identificar las características morfo anatómicas de las gónadas utilizados en el laboratorio. OBSERVACION DE GONADAS FEMENINAS DE MAMIFEROS • Lavar los ovarios en agua corriente • Realizar las siguientes mediciones: longitud. Determine la consistencia y color • Identificar en la superficie del ovario la presencia de los folículos • Esquematizar lo observado B. identificando las estructuras de los folículos MATERIAL Gónadas femeninas de mamiferos y láminas montadas de cortes histológicos de ovarios de vertebrados ( peces. placas petri. 2. lamina porta y cubre objeto.PRACTICA Nº 3 GONADAS FEMENINAS Y OVOGENESIS EN VERTEBRADOS OBJETIVOS Al finalizar las practicas. centímetro. pipetas Pasteur. hialurodinasa al 0. cápsulas embriológicas.55 M. Esquematice lo observado CUESTIONARIO Que características diferenciales observó en cada una de las gónadas femeninas 2. microscopio de contraste de fase. agua de mar filtrada. Realizar la simulación de una fecundación in Vitro.• 1. ¿ cual es el nombre de ésta? PRACTICA Nº 4 CAPACITACION ESPERMATICA Y FECUNDACION DE MAMIFEROS “ IN VITRO”. agujas hipodérmicas. KCl 0. beakers. En cortes histológicos de ovario de pez hay una estructura cuya presencia indica que el pez ha desovado. lupa esteroscópica. solución Ringer de mamíferos. agua destilada. . suero sanguíneo. CAPACITACION ESPERMATICA DE ESPERMIOS DE MAMIFEROS OBTENCION DE ESPERMIOS DE UN RATON • Sacrificar un ratón macho por dislocación cervical. disectar y extraer la porción más caudal del epidídimo Colocar la muestra en una cápsula embriológica y cubrirla con aceite mineral • Agregue con una pipeta Pasteur una gota de 0.2 a 0. FECUNDACION ARTIFICIAL EN ERIZO DE MAR OBJETIVOS Al finalizar la práctica. Realizar “in Vitro” la capacitación espermática de espermios de ratón 2. láminas excvadas Medios de cultivo. láminas cubre y porta objetos. Realizar en forma experimental la fecundación artificial de erizos de mar MATERIAL Especimenes de ratón hembra y macho. PROCEDIMIENTO A. tijeras. colocar una solución de espermios obtenidos en una gota de suero sanguíneo Llevar a incubación en una estufa a 37ºC por 3 a 4 horas Examinar los espermios con microscopio de contraste de fase Observar al movimiento del flagelo y la reacción del acrosoma Esquematizar lo observado SIMULACION DE FECUNDACION DE MAMIFEROS EN VITRO OBTENCION DE OVOCITOS • Sacrificar un raton hembra sexualmente madura y colocarla en una cápsula embriológica que contenga una solución Ringer de mamíferos • • • • • • B. Biggers. Manipular gametos masculinos y femeninos de mamíferos con las técnicas experimentales modernas 3. aceite mineral ( vaselina líquida). placas petri.01%. pinzas.3 ml de medio de cultivo Biggers Dejar por 5 a 10 minutos y luego retirar la muestra con una pinza CAPACITACION • En una cápsula de cultivo conteniendo aceite mineral. glicerina y plastilina. erizos de mar machos y hembras Microscopio compuesto. estufa. refrigeradora. siguiendo el procedimiento experimental pertinente 4. el alumno será capaz de: 1. FECUNDACION • En una cápsula embriológica con aceite mineral. si se desea unicamente diferenciar machos de hembras sin dañar los especimenes. • Con la ayuda de una Pipeta colocar dos gotasb separadas de agua de mar filtrada sobre un porta objetos. coloque con una pipeta Pasteur una gota que contenga espermios capacitados en Biggers En la gota formada con los espermios. reconocer las gónadas femeninas de color rojo vinoso y las gónadas masculinas de color blanco amarillento .01% • Observe este proceso con la lupa esteroscópica. . en un medio Ringer con hialurodinasa al 0.55 M la misma que inducirá la liberación de los gametos • Con la ayuda de una pinza extraer las gonadas femeninas y colocarlos en beakers que contengan agua de mar filtrada. luego retire el ovario • Con la ayuda de una lupa esteroscópica ubique los ovocitos y con una pipeta Pasteur transfiriendoles a otra cápsula embriológica con Ringer REMOCION DE CELULAS FOLICULARES • Coloque los ovocitos. Agitar suavemente para inducir el desove • Los testículos se recogen directamente en placas pertri y se mantienen sin diluir hasta el momento de utilizarse.• • Lavar la superficie del ovario hasta eliminar la sangre Coloque el ovario en otra cápsula que contenga solución Ringer de mamíferos • Con una aguja hipodérmica perfore los folículos y presione lentamente. por donde va a penetrar el espermatozoide • Esquematizar lo observado CUESTIONARIO 1. En una de ellas colocar ovocitos y en la otra espermatozoides • Observe al microscopio compuesto la forma. se emplea una solución de KCl al 0. Este proceso se realiza bajo lupa esteroscópica • Cubra el preparado con una laminilla a la que previamente se le ha colocado plastilina en sus aristas Observar a mediano y mayor aumento en un microscopio compuesto Esquematizar lo observado FECUNDACION ARTIFICIAL EN ERIZOS DE MAR • Con la ayuda de una tijera abrir los especimenes por la membrana peristomal. Cubre elevado • Observe al microscopio compuesto la elevación de la membrana de fecundación o cono de fertilización. colocar los ovocitos contenidos Incubar en estufa a 37º C • Con una pipeta Pasteur extraiga los ovocitos fecundados y coloquelos en una gota de glicerina situada en el centro de una lámina porta objetos. Cuando aparezca la zona pelúcida haga un lavado con Ringer. que se presentan como masas de células foliculares o del Cumulus cephorus. coloque una gota de suspensión de espermatozoides. Se recomienda conservarlos a 4ºC. color y tamaño del ovocito así como la forma y motilidad del espermio • En otra lámina porta objeto. En que difiere la apariencia de un huevo de erizo de mar sin fertilizar de uno fertilizado por que es de gran utilidad la solución Ringer mamifero • • • • 2. Cubrir con una laminilla que posea plastilina en sus aristas. blastulación y gastrulación B. reconozca y esquematice cada uno de los estadíos del desarrollo embrionario: • Estadío del huevo o cigoto • Estadio de segementación • Estadio de blastulación • Estadío de gastrulación • En sus esquemas realizados señale las estructuras que aparecen en el proceso de segmentación. DESECCION DEL APARATO REPRODUCTOR MASCULINO Y FEMENINO DE ANFIBIOS • • DESCEREBRACION DEL ESPECIMEN Con una mano agarre el sapo de tal forma que la cabeza quede expuesta Con el dedo índice de la misma mano. DESARROLLO DE ANFIBIOS EN MAQUETAS • En las maquetas que le serán presentadas. el alumno será capaz de: 1. OBSERVACION DE CORTES HSITOLOGICOS DEL DESARROLLO TEMPRANO DE LOS ANFIBIOS • Coloque en el microscopio láminas montadas con cada uno de los estadíos del desarrollo embrionario • Observe a menor y mayor aumento las estructuras presentes en cada estadío del desarrollo Esquematice lo observado C. como definirá usted a la capacitación espermática porque utilizamos hialurodinasa al 0. • . haga penetrar una aguja al interior del cráneo y mueva luego la aguja de un lado a otro 2. empuje la cabeza del sapo hacia abajo • Con el dedo índice de la otra mano recorra la linea del medio del cráneo hasta llegar a la base del mismo. Diferenciar los estadíos de mórula. 4.1% en la f ecundación de mamíferos “in vitro” PRACTICA Nº 5 DESARROLLO DE ANFIBIOS OBJETIVOS Al finalizar la práctica.3. Identificar las diferentes estructuras de los órganos reproductores de anfibios en material frescos y conservados MATERIAL A. blástula y gástrula de anfibios en láminas montadas disectar y aislar los órganos reproductores masculino y femenino de anfibio 3. Aca es donde se encuentra la apertura craneal • Por el orifico craneal. los cuales se mantienen en posición gracias al mesenterio. es señal que la aguja está en posición correcta • Extraiga la aguja. existen otros 2 tubos que desembocan en la cloaca. Si el descerebrado se realizó correctamente. Si las patas del anfibio se contraen momentáneamente . Si el sapo todavía está tenso repita el procedimiento DISECCION PROPIAMENTE DICHA • Coloque el sapo descerebrado sobre una tabla de disección con la parte ventral hacia arriba. señale las estructuras de estos 1. el cuerpo del sapo deberá estar completamente suelto a laxo. ¿ Cuáles son y que función tienen? . En el sapo hembra. indicando la posición. 2. mesovario y mesorquio. sujetándola en la tabla con alfileres a través de sus patas y manos • Con un par de tiejras o bisturí realice los cortes que se indican con linea punteada en la figura que se presenta • Abra cuidadosamente con las pinzas la zona abdominal y clave con los alfileres los faldones de piel a la tabla de disección para facilitar la observación de los órganos internos • Ubique los ovarios o testículos. CUESTIONARIO Cuáles son los tipos de segmentación en el huevo de Amphioxus Que función tiene el ovisaco presente en el sapo hembra 3. respectivamente • Extraiga y coloque las gónadas en una placa petr y con la ayuda de una lupa proceda a reconocer sus diferentes estructuras • Esquematice lo observado.• Extraiga ahora la aguja y hágala penetrar en el cordon espinal. además de los oviductos. tamaño forma. color y apariencia de las gónadas. así mismo. etc). pinzas. apariencia y estructuras de las gónadas. en posición cúbito dorsal. los estadíos del desarrollo temprano en peces MATERIAL Peces machos y hembras ( caballa. algodón. campanas de vidrio. tabla de disección. cloroformo. sardina. así como de los reptiles 2. tamaño. de color blanco. bisturí. rosados o anaranjados y granulares. en posición cúbito dorsal. Identificar mediante el uso de esquemas. sujetándolo con la mano izquierda . A. color. desde el ano a la zona gular • Abrir cuidadosamente con la pinzas la zona abdominal e identificar las vísceras y órganos respectivos • Ubicar las vísceras y extraigalos. el alumno será capaz de: 1. forma. láminas porta y cubre objetos.PRACTICA Nº 6 APARATO REPRODUCTOR MASCULINO Y FEMENINO EN PECES Y REPTILES FASES DEL DESARROLLO TEMPRANO EN PECES OBJETIVOS Al finalizar la práctica. Reconocer las diferentes estructuras y caracteres morfoanatómica del aparato reproductor masculino y femenino de los peces óseos y cartilaginosos. tollo. tijeras. teniendo en cuenta que los ovarios son de forma cilíndrica o tubular. indicando la posición. mojarrilla. placas petri. • Coloque las gónadas en una placa petri y con la ayuda de una lupa estereoscópica proceda a reconocer sus diferentes estructuras • Esquematice lo observado. EN PECES CARTILAGINOSOS • Coloque el pez sobre una tabla de disección. mientras que los testículos son planos y alargados. realice un corte longitudinal por la parte ventral. PROCEDIMIENTO APARATO REPRODUCTOR DE PECES EN PECES OSEOS • Coloque el pez sobre una tabla de disección. lagartijas machos y hembras Lupa esteroscópica. sujetándolo con la mano izquierda • Con un par de tijeras. indicando la posición. los machos tienen un par de mixopterigios (órganos copuladotes. • Esquematice lo observado. color.• • • • • • Observe detenidamente las características externas. tamaño. como guía para estudiar el desarrollo temprano en peces • En los esquemas de la figura identifique todas las principales estructuras que se señalan • Indique en que esquemas se inicia y termina la segmentación. si fuera necesario. color. FASES DEL DESARROLLO TEMPRANO EN PECES Revise las descripciones dadas en clase teórica y en su bibliografía. la blastulación y la gastrulación • Explique brevemente los procesos de desarrollo involucrados en la segmentación. la zona abdominal y clave con alfileres los faldenes de la piel a la tabla de disección para facilitar la observación de los órganos internos Ubique el aparato reproductor masculino y femenino y extraigalos • Colóquelos en una placa petri y. ovovivíparos y vivíparos 3. Cual es el papel que desempeñan los claspers o abrazaderas en los peces cartilaginosos 2. Las hembras no tienen mixopterigios Con un apar de tijeras o un bisturí realice un corte longitudinal por la parte ventral desde el ano o cloaca hasta la zona gular Abra cuidadosamente con las pinzas la zona abdominal e identifique las visceras y órganos respectivos Ubique el aparato reproductor masculino y femenino y extraigalo Coloquelos en una placa petri y con la ayuda de una lupa estereoscópica procede a reconocer sus diferentes estructuras Esquematice lo observado. b. apariencia y estructuras de las gónadas. blastulación y gastrulación C. forma. forma. visibles desde las primaras fases de desarrollo) en el borde interior de las aletas pélvicas. Haga un paralelo entre peces ovíparos. apariencia y estructura de las gónadas CUESTIONARIO 1. tamaño. La fertilización en los reptiles es externa o interna ¿Qué particularidad presenta? • . APARATO REPRODUCTOR DE LOS REPTILES • Coloque el espécimen dentro de una campana de vidrio que contenga un pedazo de algodón humedecido con cloroformo • Coloque el espécimen anestesiado sobre una tabla de disección con la zona ventral hacia arriba y observe detenidamente las características externas de los machos y las hembras • Con un par de tijeras o un bisturí realice un corte longitudinal por la parte ventral desde el ano o cloaca hasta la zona gular • Abra cuidadosamente con las pinzas. indicando la posición. con la ayuda de una lupa estereoscópica proceda a reconocer sus diferentes estructuras. pabilo. de tal manera que las vísceras queden expuestas • Limpie la sangre con algodón y mantenga húmedas los órganos con solución Ringer de aves • Observe y reconozca los órganos internos • Amarre con un pabilo o hilo a nivel de esófago y proceda de la misma manera con la parte más distal del intestino • Realice cortes a nivel de los amarres y eviscere el tracto digestivo. tijeras. APARATO REPRODUCTOR DE AVES • Sujete al espécimen con la mano izquierda por las alas y con la mano derecha presione con energía en la región torácica hasta producir la asfixia. algodón. Limpie con algodón húmedo • Reconozca los órganos de reproducción y aíslelos 2. navajas de afeitar. bisturí. BE y BF • Separe dichas porciones y fíjelas con alfileres a la tabla de disección. ratón vivo macho y hembra. Reconocer las diferentes estructuras y caracteres morfoanatómicos del aparato reproductor masculino y femenino de aves y mamíferos Reconocer toda la morfología de un huevo de ave 3. • Sobre una tabla de disección coloque el espécimen sobre su región dorsal • Realice los cortes que a continuación se detallan: AB. AC. estiletes. Identificar mediante la observación de esquemas y maquetas las fases del desarrollo en aves MATERIAL Palomas vivas. el alumno será capaz de 1. tabla de disección Ringer aves y Ringer mamíferos PROCEDIMIENTO A. huevos de gallina frescos y duros Lupas estereoscópica. . pinzas. placas petri. alfileres. machos y hembras.PRACTICA Nº 7 APARATO REPRODUCTOR EN AVES Y MAMIFEROS DESARROLLO EN AVES OBJETIVOS Al finalizar la práctica. AD. Limpie con algodón húmedo Reconozca los órganos de reproducción. evitando romper la yema. ¿ cuál cree usted que es el camino que sigue el óvulo de ave y mamíferos desde los ovarios hasta el exterior? • • C. realice un corte circular de aproximadamente 3 cm de diámetro. Observe los dos tipos de albúmina. . evitando que la yema sea lesionada • Ubique el blastodisco en el polo animal y realice un corte de la yema por mitad siguiente el eje antero – posterior (horizontal) del huevo Esquematice lo observado e identifique las estructuras APARATO REPRODUCTOR EN MAMIFEROS (RATON) • Sujete el espécimen por la cola con la mano derecha y apóyelo sobre una superficie lisa • Con el dedo índice y el pulgar de la mano izquierda sujete la cabeza y realice un tirón enérgico de la cola (sacrificio por dislocación cervical) Coloque el espécimen sobre una tabla de disección en posición cúbito dorsal • Sujete la piel de la región abdominal con los dedos índice y pulgar de la mano izquierda y derecha.• Esquematice lo observado B. Qué función desempeña la chalaza 2. • Realice cortes a nivel de los amarres y eviscere el tracto digestivo. siguiendo el eje longitudinal del cuerpo • Con la ayuda de un par de tijeras realice los cortes de acuerdo a la metodología empleada anteriormente para otros especimenes Limpie la sangre con algodón y mantenga húmedos los órganos con Ringer mamíferos Observe y reconozca los órganos internos • Amarre con un pabilo a nivel del esófago y procede de la misma manera con la parte más distal del intestino. • • • • 3. • Observe los elementos que aparecen. aíslelos y esquematice CUESTIONARIO 1. ESTUDIO MORFOLOGICO DEL HUEVO DE AVE ( GALLINA ) EN HUEVOS • En un huevo en posición horizontal. realice el desgarramiento de la piel en ambos sentidos. Ubique el polo animal ( disco germinativo o blastodisco ) y la chalaza • Vacíe el contenido del huevo en un petri. Haga un paralelo entre los anexos embrionarios del ave con los de un mamífero. la densa y la fluída • Esquematice lo observado e identifique las partes principales EN HUEVO DURO • Retire con cuidado el cascarón sin lesionar la albúmina. Observe la huella de la cámara de aire o eólica Retire cuidadosamente la albúmina. ¿ cuáles son sus conclusiones Basándose en sus observaciones. Solución Ringer mamífero PROCEDIMIENTO A. algodón. teniendo cuidado de no perforar las membranas internas Separe con pinzas y observe las estructuras que aparecen Presione el cuerpo uterino hasta la expulsión de la placenta. gato. carnero. el alumno será capaz de: 1. las decíduas y otros anexos. alfileres. • • • • • • • • DISECCION DE UTEROS GRAVIDOS DE MAMÍFEROS EN CERDO Lavar el útero de mamífero y colocarlo en una fuente Identificar las siguientes estructuras: ovarios. oviducto. vagina y región bulvar Esquematice lo observado • Realice un corte transversal alrededor del cuerpo uterino. cobayo y placenta humana Estuche de disección. Evite perforarlas • Esquematice la forma de la placenta y establezca el nexo que existe entre el útero y la placenta Disecte la placenta cuidadosamente para observar los anexos embrionarios Esquematice lo observado EN RUMIANTE (CARNERO) Proceda de igual manera hasta el paso 3 de procedimiento anterior 2. tabla de disección. para reconocer los anexos embrionarios identificar los diferentes tipos de placentas en los mamíferos 3. fuentes enlozadas. carbón carbólico. agujas hipodérmicas. gato y humanos. estiletes. bolsa plástica. guantes de jebe. detergentes. . reconocer los componentes de la cara materna y fetal de una placenta humana. disectar úteros grávidos de cerdo. útero. carnero. MATERIAL Uteros grávidos de cerdo.PRACTICA Nº 8 ANEXOS EMBRIONARIOS EN MAMIFEROS Y TIPOS DE PLACENTA OBJETIVOS Al finalizar la práctica. 2. así como los otros anexos embrionarios • Esquematice • Realice un corte transversal del cordón umbilical • Esquematice • • • • 1. teniendo cuidado de no perforarlas Esquematice lo observado Disecte una placenta y observe los anexos embrionarios Esquematice lo observado EN ROEDOR (COBAYO) Mate el espécimen por dislocación cervical Coloque en la tabla de disección en posición cúbito dorsal • Sujételo por las extremidades a la tabla de disección y proceda a realizar un corte longitudinal por la línea media abdominal. mantenerlo húmedo con solución Ringer mamífero Disecte cuidadosamente el útero y extraiga la placenta y los anexos respectivos Esquematice lo observado PLACENTA HUMEDA • Lave la placenta con agua corriente para eliminar la sangre remanente. 3. Esquematice lo observado Reconozca el útero grávido y realice un corte longitudinal y superficial del útero Separe con pinzas y extraiga las placentas. CUESTIONARIO Cuáles son las causas que originan las diferencias entre placentas de mamíferos? Que tipo de placentas existen? Descríbelas Que función tiene la barrera placentaria? Físicamente por que está compuesto? .• • • • • • • • • • Realice un corte longitudinal del útero y separe con pinzas • Observe la presencia de los cotiledones que están unidos al útero. hasta extraer la placenta Esquematice la placenta y establezca los nexos que existen entre esta y el útero Disecte la placenta e identifique los anexos embrionarios Esquematice lo observado EN GATA Identifique el órgano reproductor femenino de la gata. Colóquelo en una fuente • Observe la perforación por donde ha salido el neonato • Revierta las estructuras que han sido invertidas en el proceso de expulsión de la placenta • Reconozca las caras maternas y fetal de la placenta. Separe la placenta presionando el útero en la región cotiledonaria. El órgano que aparece es el útero • Disecte y extraiga el ap+arato reproductor completo.