PARASITOIDES DE Anthonomus eugenii (Coleoptera- Curculionidae) Y Lyriomiza sp. (Diptera- Agromyzidae) EN CHILE HABANERO (Capsicum chinense Jacq.) DEL ESTADO DE YUCATÁN.pdf

!!!!!"#!$%&$'(&)(**+$*$+"%(%,-.*!"/$&,0& INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CONKAL PARASITOIDES DE Anthonomus eugenii (Coleoptera: Curculionidae) Y Lyriomiza sp. (Diptera: Agromyzidae) EN CHILE HABANERO (Capsicum chinense Jacq.) DEL ESTADO DE YUCATÁN TESIS Que presenta: ANTONIO DURÁN YÁÑEZ Como requisito parcial para obtener el título de: LICENCIADO EN BIOLOGÍA Conkal, Yucatán, México 2013 DEDICATORIA A mis padres, Abelardo Antonio Durán López y Dora Eugenia Yáñez Soto les agradezco la educación que me dieron, y les reitero que mis logros no tendrían un valor sin su confianza y porque sin su apoyo desmedido no hubiera sido posible la culminación de mi carrera. AGRADECIMIENTOS Agradezco al proyecto FOMIX-YUCATAN 2008, 108814 "Determinación y manejo de la entomofauna benéfica asociada a plagas de chile habanero en la península de Yucatán". A Víctor López Martínez quien fungió como asesor y amigo, pero que ante todo me respaldó y confió en el trabajo, estimulando mi conocimiento y dirigiéndome con estrecho afecto en toda la tesis. A mis maestros Andrés Trejo Rivero y Javier Nava Gruizar por enseñarme las bases de mi profesión, enseñarme el enfoque al que me dedico actualmente y por hacer mas amena la carrera. A la Doctora María García Ramirez por su apoyo en la tesis, sus consejos, revisiones y por ser guía en todo el trabajo, junto con congresos, artículos y resúmenes. A Jorge Carlos Berny Mier y Teran por su apoyo, consejos, facilidades para efectuar este trabajo pero ante todo por la amistad que junto con el trabajo de esta tesis se formo. A Luis Abdala Roberts y Felipe Tut Pech, por su recomendaciones y por servir de guía en diferentes ocasiones. A la COMARCA: Jorge Escalante Pasos, Fernando Fleites Ayil, Raymundo González Ramírez y Raúl Monsreal Ceballos, por su eterno apoyo, criticas, ayuda, compañía y sobre todas las cosas, gracias por su amistad. A los agricultores, campesinos y gente de campo, que siempre me ayudaron en desmedida sin importar las circunstancias. Obtención de parasitoides de Liriomyza spp.....................3 Justificación!!!!!!......................................... RESULTADOS Y DISCUSIÓN. 2.................................2 Insectos Plaga del Chile Habanero!..................... 1... 12 IV.1 Antecedentes!!!!!!...........CONTENIDO Página ÍNDICE DE CUADROS ............................................ 2............................. 1....... 4................1........1 Objetivo general .. 16 5...........................HIPÓTESIS............. Diversidad de parasitoides.. 2 1............................................................................... Picudo del chile (Anthonomus eugenii Cano)......................... Análisis de datos.... Obtención de parasitoides de A...!!!!!!!!!!!!!! 1 1................................................. 2.............................. MATERIALES Y MÉTODOS ....... 4 2..2 Objetivos específicos............................................................. ii RESUMEN ............................................ 14 5...... 18 5. 2.... 19 5...................................................... OBJETIVO ................. 20 VI............... 4 2................................................... 10 III....... 2............. 1.................. 7 2................. 2........... 12 3..... 6........ 13 V...........1 Descripción del chile habanero (Capsicum chinense)!!....................................................2 Planteamiento del problema!!!!!!!!!!!!!!......................... eugenii...........................1 Áreas de estudio ...... 8............................!!!!!!!!!!!!!!...... Daños y abundancia de plagas.................................... 21 .............................INTRODUCCIÓN. Minador de las Hojas (Liriomyza sp....................)............................. 17 5........... 2 II............................................... 18 5.........................................................!!....................... Método de control del picudo del chile......... 20 5.............................................. 5 2. 3........... 1 1.... 12 3........ Insectos plaga y enemigos naturales.......................... 8 2............. 2.. 7................ iii ABSTRACT............................. iv I..... 6 2.... REVISIÓN DE LITERATURA ............. i ÍNDICE DE FIGURAS.............. Métodos de Control de Minador de la Hoja.............. 5........... Muestras obtenidas............................ 14 5.................................... ................. 1. 23 6.......... CONCLUSIONES. 31 ........ eugenii...... 29 VIII. 2........................... 22 6.......... Daños de A................................... Parasitismo..... 2.... 4.... 25 6..................... 26 6............. 22 6... Daños de Liriomyza spp...................... 2......... Parasitismo de Liriomyza spp........................ 21 6...... 27 VII............ eugenii .............................. LITERATURA CITADA!!!!!!!!!!!!!!!!!!!.................... 2...... 1............ Parasitismo según el tamaño del fruto de chile habanero............................... 1.. eugenii......................6... Abundancia de Parasitoides de A........... 3........... incidencia de A. 1.............. 24 6...................... 3........................ 2.... 1....... Incidencia de Liriomyza spp....... Porcentaje de incidencia dentro de los meses de Julio a Septiembre del 2010!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!. Localidades de muestreo en el estado de Yucatán !.!!!!. 26 6.. 15 2. Emergencia de parasitoides por tamaño del fruto!!!!!!!!!. Sitios de colecta con presencia de Liriomyza spp!!!!!!!....!! 28 vii . 25 4........ÍNDICE DE CUADROS Cuadros Página 1..... Localidades muestreadas para la localizacion de parasitoides!!!. 26 5...!!. Incidencia por estrato del minador de las hojas!!!!!!!!!!.. 23 3. .ÍNDICE DE FIGURAS Figuras Página 1.. 19 7....... Distribucion de busqueda de minas en follage según el nivel de la planta!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!. Geolocalización de los cultivos de Capsicum chinense Jacq. Pupa de Anthonomus eugenii Cano..!!!!!!!!!!!!!...... ..... 15 3..!.. 24 viii viii viii viii .. Mina de Liriomyza spp!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!.. muestreados en el estado de Yucatán!!!!!!!!. 17 6. 10 2.!!!!!!!!!!!!!!.. Figura 1: Ciclo vital del genero Liriomyza spp..... 17 5......... Parasitoide de Anthonomus eugenii Cano del género Catolaccus..... Mina de Liriomyza spp!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!........ 16 4... Los estados de Campeche. La demanda de esta hortaliza en mercados extranjeros ha impulsado la producción en extenso. en laboratorio se disectarón y midieron los frutos para la determinación de larvas del picudo. constituyen las plagas principales del chile habanero en Yucatán. Los frutos se incubaron de manera individual en frascos de plástico (3 x 4 cm) transparentes. aumentando las perdidas y delimitando la exportación por cambios y daños en el fruto. de Liriomyza spp. El chile habanero. dentro se colocá algodón húmedo para evitar la deshidratación y muerte de las larvas. Liriomyza spp.RESUMEN Se realizó el estudio de los parasitoides de las plagas entomologicas. después se clasificaron por tamaño. para la obtención de parasitoides. para Anthonomus eugenii Cano se seleccionaron frutos con presencia del insecto. es uno de los cultivos más importantes del sur de México. Anthonomus eugenii y liriomyza spp.5 de alto. Anthonomus eugenii y liriomyza spp. En la Península de Yucatán. además de permitir la entrada de patógenos al tejido de la planta. Anthonomus eugenii Cano. ix .. con tecnología baja y excesiva aplicación de insecticidas. cultural e industrial. Quintana Roo y Yucatán cuentan con la denominación de origen. debido a su importancia culinaria. Se registró la emergencia de adultos (picudos y parasitoides) cada 2 días. sin embargo este cultivo se maneja a cielo abierto. para de esta forma determinar la entomofauna benefica de este cultivo. no existe hasta el momento información con respecto a los enemigos naturales que ataquen a Anthonomus eugenii Cano o Liriomyza spp. El material entomológico se determinó con claves taxonómicas especificas. Los insectos parasitoides son insectos muy complejos y fascinantes. Se separaron cortando parte de la hoja en cuadrados perfectos de 1 cm por lado las cuales se colocaron en recipientes que funcionan como cámara de cría con un tamaño de 6cm de diámetro por 4. en 2009 se cultivaron en esta región 445 ha. 351 de estas en Yucatán. es por esto que se realizaron los estudios correspondientes en cultivos de chile habanero distribuidos en el estado. puede reducir la capacidad fotosintética y causar la caída prematura de las hojas. Cada 24 h se inspeccionban los recipientes para observar la emergencia de parasitoides o minadores adultos. de igual forma se alimentan de los retoños de las hojas afectando el crecimiento de la planta. cuyas larvas se desarrollan en otros insectos. ataca los frutos causando su caída. Capsicum chinense Jacq. Por lo tanto el uso de enemigos naturales como agentes reguladores de poblaciones de las plagas puede ser un método para la regulación en cultivos de la región. como consecuencia existe un aumento en las poblaciones de insectos plaga. matándolos para completar su desarrollo.) en el estado de Yucatán. en chile habanero (Capsicum chinense Jacq. The fruits were incubated individually in plastic bottles (3 x 4 cm) transparent. because there is an increase in pest populations Therefore the use of natural enemies as control agents of pest populations may be a method for the regulation of the crops of the region.5 tall. The states of Campeche. Anthonomus eugenii and Liriomyza spp. cultural and industrial.) in the state of Yucatan. There was the emergence of adults (weevils and parasitoids) every 2 days. Capsicum chinense Jacq. can reduce the photosynthetic capacity and cause premature leaf drop. to Liriomyza spp. to obtain parasitoids of pests. then sorted by size. In the Yucatan there is as yet no information regarding the natural enemies that attack or Anthonomus eugenii Cano Liriomyza spp. Is one of the most important crops in southern Mexico. likewise. crops within habanero chile (Capsicum chinense Jacq. Liriomyza spp. with low technology and excessive use of insecticides. Quintana Roo and Yucatan have the appellation of origin in 2009 were grown in this region has 445. but this crop is handled in the open. that is why the corresponding studies were performed in cultures of habanero chile distributed in the state of Yucatan.. to thereby determine the beneficial insect fauna of this crop. The habanero chile. Were separated by cutting the sheet of perfect squares of 1 cm per side which are placed in containers that serve as brood chamber with a size of 6cm in diameter by 4. 351 of these in Yucatan. Insect parasitoids are very complex and fascinating insects whose larvae develop in other insects. increasing losses and outlining the changes and export by damage to the fruit. just as they feed on the buds of leaves affecting plant growth. because of its importance culinary. The entomological material were determined using appropriate taxonomic keys. are inspected every 24 h to observe the vessels emergency leafminer parasitoids or adult Anthonomus eugenii Cano also for fruits were selected with the insect in the laboratory were dissected and measured for determination of fruit weevil larvae.ABSTRACT In the present work was carried out the study of the parasitoids of major entomological pests such as Anthonomus eugenii and Liriomyza spp. Anthonomus eugenii Cano attacks the fruit causing it to fall. is placed in wet cotton to prevent dehydration and death of the larvae. are major pests in Yucatan habanero chile. The demand for this vegetable in foreign markets has boosted production at length. and allows the entry of pathogens into plant tissue. x x x x . killing them to complete their development. I.) ocupa el segundo lugar en cuanto a superficie de siembra de hortalizas en el estado de Yucatán. En la actualidad el cultivo del chile habanero (Capsicum chinense Jacq. rábano (Raphanus sativus L. tiene un amplio uso en la cocina tradicional y parte de su producción tiene como destino el mercado de exportación. en Yucatán. social y económico para el estado de Yucatán.000 ha (Trujillo. Este cultivo tiene diversos problemas fitosanitarios que afectan su producción. . 1934. Antecedentes En el estado de Yucatán. y afectan la calidad y rendimientos de los cultivos agrícolas. 2004). chile hananero (Capsicum chinense Jacq. El chile habanero representa un alto valor cultural. Patrock y Schuster. estableciendo entre 800 y 1. después del tomate (Solanum lycopersicum L.) (INEGI. 2005).. 1. entre estos cultivos están principalmente el tomate (Solanum lycopersicum L.). sandía (Citrullus lanatus (Thunb. INTRODUCCION 1. Estas plagas interrumpen el desarrollo de varios tipos de solanáceas. las hortalizas forman parte importante de la economía. y no otras solanáceas (Elmore et al.) y cilantro (Coriandrum sativum L.).). 1992).). & Nakai). entre ellos destacan el picudo del chile (Anthonomus eugenii Cano) y el minador de la hoja (Liriomyza sp. el picudo del chile solo ataca a Capsicum spp.) Matsum. conocer a los enemigos naturales permitirá establecer con mayor precisión cuáles especies son suceptibles para una evaluación en . Cuando estos servicios naturales se pierden por la simplificación biológica. Ambas sugieren mecanismos claves de regulación (Root.. Desde un punto de vista práctico. los costos económicos y medioambientales pueden ser significativos (Altieri y Nicholls. es más fácil diseñar estrategias de manejo con el uso de enemigos naturales (Altieri y Nicholls. 1. 2. Para abordar y resolver esta problemática se ha propuesto el uso de enemigos naturales para su control. 2003). 2006). Planteamiento del Problema El manejo de las plagas agrícolas en el cultivo del chile habanero. Hay dos hipótesis que explican la menor abundancia de herbívoros en policultivos: con respecto a la concentración de recursos y la de los enemigos naturales. por lo tanto el estudio de los parasitoides en plagas del chile habanero en la región es totalmente indispensable para su caracterización y utilización como método de control en años posteriores. 2003). Justificación Son muchos los aspectos que se desconocen acerca de los enemigos naturales de insectos plaga en México. se basa principalmente en el uso de insecticidas de origen sintético (Dzib et al. 3. como consecuencia se produce la eliminación de enemigos naturales por la utilización de insecticidas de amplio espectro.1. 1973). En este contexto el presente trabajo planteó la obtención de parasitoides del picudo del chile y minador de la hoja. 1997). incrementando así el conocimiento de los enemigos naturales de estas especies en la región.programas de control biológico (Delfin y Leon. plagas del chile habanero. 13 . Chiapas. 1996). sin embargo. 2002). el chile habanero se cultiva en Belice.3 m. los estados con mayor producción son Baja California. .. es probable que sea originario de América del Sur. la cual contiene alrededor de 90 géneros algunas de mucha importancia como Solanum. Además de México. en el país. hermafroditas e hipóginas. Veracruz y Yucatán (Soria et al.. 2000). El chile habanero es una planta dicotiledónea de hábito de crecimiento determinado. Esta especie pertenece a la familia de las Solanáceaes. Nuez. desarrolla tres a cinco ramas primarias y de nueve a trece secundarias. presentando un promedio de 6 frutos por axila de entre 2 y 6 cm con 3 o 4 lóculos. 2000). la corola esta en la mayoría de las especies con 5 o 7 pétalos cada uno de 10 a 20 mm de largo (Bosland y Votava.II. hojas verdes oscuras ovaladas o lanceoladas de 10 a 15 cm de largo y ancho. Descripción del chile habanero (Capsicum chinense) El origen del chile habanero es incierto. 2002. 1. Guatemala. se comporta como planta perenne y su ramificación es erecta (Bosland y Votava. Cyphomandra y Physalis. verdes en tierno y naranjas cuando han llegado a madurez (Soria et al. REVISIÓN DE LITERATURA 2. Honduras y Costa Rica. las plantas presentan una altura no menor a 1. Lycopersicum. Tabasco. Las flores del género Capsicum son pentámeras. incluso químicas. el grado de coevolución parasitoide–presa es enorme. deshidratado. El concepto de plaga es aplicable a los agroecosistemas de donde el hombre obtiene materia y energía para su sustento. no existe una plaga que no cuente con enemigos naturales. sin embargo. e involucra interacciones. Sin embargo. Insectos Plaga del Chile Habanero Los insectos son mucho más benéficos que perjudiciales. sus cultivos o sus animales. es por su grado y tipo de pungencia de picante. 2004). La característica más importante que favorece su venta en el mercado. se convierte en plaga. Cuando un organismo extrae de un ambiente más energía que la que el hombre considera adecuado. esto sucede cuando fallan o no existen los mecanismos naturales. bióticos o abióticos.El chile habanero. que abarcan varios niveles tróficos (Romero. como condimento. así como la derivación de capsaicina como extracción para su uso farmacéutico. como una fuente de trabajo permanente para los agricultores en la región. entre otros. en salsas. 2004). convirtiéndose en plaga o transmitiendo enfermedades a él. El chile habanero es afectado por diversos insectos como: pulga saltona 15 . siendo necesario combatirla. 1998). cocido. de control. tiene diversas formas de consumo: fresco. 2. abrigo o techo. En Yucatán. el cultivo es el segundo de importancia económica debido a su alto consumo en fresco y. durante los últimos 10 años se ha intensificado la demanda nacional e internacional de chile habanero. 2. algunas de sus especies compiten con el hombre. calidad y forma de los frutos (Trujillo. También es utilizado en la medicina tradicional para tratar enfermedades gastrointestinales y algunos casos de diarrea (Cano. (Hemiptera: Aleyrodidae)). hojas y frutos del chile durante su alimentación (Sorensen. pequeño. 1995. deformación. Pueden desarrollar varias generaciones en un año. 1996. Picudo del chile (Anthonomus eugenii Cano) Es un pequeño coleóptero perteneciente a la familia de los curculiónidae de la subfamilia Anthonominae y aunque su procedencia se deriva del norte de México.negra (Epitrix cucumeris (Harris) (Coleoptera: Chrysomelidae)). la larva se alimenta dentro del fruto en desarrollo y ocasiona maduración prematura.39 mm de ancho. una vez que se produce la emergencia. Los huevos son de color blanco al ser depositados. Nuez. pero pronto se vuelven amarillos. Esta especie se encuentra en el suborden polífaga. de cuerpo robusto y negro. pulgón del melón (Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae)). Son de forma oval y miden 0. el minador de las hojas (Diptera: Agromyzidae) y la mosquita blanca (Bemisia tabaci Genn. 1. gusano del cuerno (Manduca sexta L. aparición de manchas necróticas y caída de frutos. de 3-4 mm de longitud. donde las larvas se transforman en pupas en el interior y. 2. Desarrolla su ciclo biológico en la parte central del fruto. (Lepidoptera: Sphingidae)) y gusano soldado (Spodoptera exigua (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae)). entre otros (Bautista. 2. el ciclo de desarrollo de huevo hasta adulto se completa en 7 semanas aproximadamente. 2006).53 mm de longitud y 0. los picudos salen de los frutos. Los huevos son depositados . se encuentra distribuido en gran parte de América. Capinera. volando con facilidad y dispersándose en el cultivo. 2002). así mismo el adulto daña la flor. Aunque las especies más importantes son: el picudo del chile (Coleoptera: Curculionidae). El ciclo de vida de este insecto comienza con la oviposición que puede comenzar a dos días después del apareamiento. La larva tiene 3 estadios. completando así su ciclo de vida (Capinera. con una cabeza de color marrón amarillento. Presenta una etapa prepupal de 4 a 9 días. 2. Un agujero limpio. Carecen de patas torácicas y tienen pocas setas grandes. redondo marca el escape del escarabajo de la yema o frutas. La pupa se asemeja a la de los adultos en la forma. 2.9 mm y el tercer estadio aproximadamente 3. el segundo 1. 1. respectivamente. y a pesar de que el control químico es uno de los más usados. 2002). Método de Control del Picudo del Chile Los métodos de control consisten en la eliminación consecutiva de las malas hierbas presentes dentro del cultivo. aunque más de una puede ocurrir dentro de un fruto más grande. Las larvas son voraces. muchas veces se ejercen por el uso de insecticidas de contacto cuando la plaga se encuentra dentro del fruto y la probabilidad de eliminar de esta forma al insecto es nula y no así. la utilización de enemigos naturales y en su caso parasitoides del picudo del chile se ha intentado con Eupelmus cushmani Crawford (Eupelmidae) y Catolaccus hunterii 17 . El período de incubación promedio es de 3 a 5 días. El primer estadio mide aproximadamente 1 mm de longitud. 1. de color blanco a gris. en la destrucción de los desechos del cultivo anterior. y 8. con sólo una larva sobreviviendo dentro de un brote. Por otra parte. 2 y 3. 2. el problema de resistencia y residualidad va en aumento conforme a las aplicaciones que en su mayoría son por ignorancia o mala aplicación.7.3 mm. La hembra crea una cavidad con su aparato bucal antes de depositar el huevo.por separado bajo la superficie de la yema o la vaina. excepto que las alas no están totalmente desarrolladas. a sus enemigos naturales.4 días para los estadios 1. El adulto emerge de la pupa tres o cuatro días después de haber sido formada.2. la alternancia de cultivos. La celda de la pupa es frágil y se encuentra dentro del flor o fruto. El tiempo medio de desarrollo de las larvas es de aproximadamente 1. así como la eliminación de frutos infestados. durante los cuales la larva crea una celda de pupa de secreciones anales. . 1994). dos especies de pteromálidos y un eulófido.) Los minadores de las hojas (Liriomyza spp. no se han encontrado sus parasitoides específicos con los que se ha desarrollado en su ciclo de evolución junto con A. 2007). 2009) y aunque el 75 % de las especies de esta familia se alimentan minando las hojas el resto de las especies se alimentan de diferentes partes de la planta. 2. Minador de las Hojas (Liriomyza spp. no obstante este autor demostró que estas galerías estaban producidas por insectos. debido a que estos parasitoides no son específicos para este insecto (Riley y King. en 1846 señala . los minadores de hoja se citan por primera vez por Beckmann en 1681 sobre cerezos en Alemania. eugenii. 2. En un estudio complementario de la misma zona (Toapanta et al. 2.) pertenecen a la familia Agromyzidae.. 2001). están representados tanto en hábitats acuáticos como terrestres con alrededor de 3000 especies (Vincent y Ring. Es importante mencionar que debido a que el centro de origen del chile habanero no se ha determinado o se especula mucho del mismo. (Braconidae) en el sur de California. Se indicó que Triaspis eugenii Wharton y López-Martínez (Hymenoptera: Braconidae) (Wharton y López-Martínez. estos son nombrados así por sus hábitos alimenticios. aunque en aquella época se pensaba que estas galerías se debían a pequeñas serpientes que vivian en las hojas provenientes del cielo. en la costa del Pacífico (Mariscal. con cuatro especies de bracónidos. Fue hasta 1737 que Réamur los nombra como minadores de hojas y posteriormente Curtis.Crawford (Pteromalidae) en Hawaii y con Bracon vestiticida Vier. 1998). 2000) fue el parasitoide más abundante (Rodriguez-Leyva et al. pero sin éxito. En México los reportes de parasitoides del picudo del chile se localizan. y L. los adultos son de reducido tamaño (2 mm de longitud). tales como melón. 1973). La forma inmadura vive dentro de las hojas de la planta. Lanzoni et al. huidobrensis (Blanchard). pero también en la superficie de la hoja. Los adultos son de aproximadamente 2 mm de largo. 2002). pepino. 1995. L. apio y crisantemo. se ha propagado en todo el mundo. 2005). Las hembras viven hasta 18 días y los machos alrededor de 6. que cita la especie Liriomyza cicerina (Rond.) sobre Cicer arietinum L. L. llegan a causar grandes daños por el uso indebido de insecticidas. trifolii (Burgess). el período de prepupa normalmente se produce en el suelo. bryoniae (Kaltenbach). L. poner sus huevos y la forma de alimentarse del mesófilo de la planta (Milla y Reitz.. sativae (Branchard). Los primeros daños de esta familia en cultivos fueron señalados por Rondani en 1875. lechuga. El minador de las hojas que se originó en América del Norte. Se ha determinado el ciclo vital del género (Figura 1) en el que el estado de huevo dura 1 a 4 días. L. tomate. A pesar de que las especies del género Liriomyza son consideradas plagas secundarias. dependiendo de la temperatura y la planta hospedante. longei (Frick) (Van der Linden. Las galerías excavadas por Liriomyza pueden reducir la capacidad fotosintética y causar la caída prematura de las hojas. 2005). strigata (Meigen).daños en plantas ornamentales de esta familia de insectos. Esta familia incluye algunas especies consideradas como plagas importantes de una variedad de hortalizas y plantas ornamentales. El apareamiento comienza en alrededor de 1 día de 19 . tanto en el haz como en el envés y el estado de pupa dura 8 a 13 días (Weintraub y Horowitz. (garbanzo) (Spencer. El genero Liriomyza es una plaga cosmopolita en muchos cultivos y cuenta con seis especies importantes consideradas mundialmente como plagas L. causa daños a las hojas a través de perforaciones realizadas por las hembras para alimentarse. la fase de alimentación de las larvas dura 4 a 10 días. además de permitir la entrada de patógenos al tejido de la planta. consumiendo el mesófilo sin dañar la epidermis de la hoja. mientras que en las hojas jóvenes pueden observarse picaduras recientes. así como adultos revoloteando. En las hojas viejas de la planta pueden observarse larvas de tercer estadio y pupas. 1. huevos y larvas de primer estadio. 2. Figura 1: Ciclo vital del genero Liriomyza spp. 1996). e incluso . Además en estas especies de minadores. se ha detectado una rápida aparición de resistencia. este metodo es poco efectivo porque es difícil el acceso de los insecticidas a las larvas. 2. 2. en cualquier momento pueden observarse los tres estados de su ciclo. Los minadores son especies polivoltinas. la tactica usada en los cultivos agrícolas para este insecto plaga son los agroquímicos.edad y los picos de oviposición ocurren 4 a 8 días después de la emergencia (Steck. Métodos de Control de Minador de la Hoja En general. si bien la localización en la planta es diferente. organofosforados. Estos pueden ser endopárasitos o ectoparasitos y se desarrollan en el interior o exterior de la larva del minador e incluso en la pupa.. Diglyphus intermedius. 21 . Entre los principales parasitoides reportados para Liriomyza spp. Los enemigos naturales que afectan a los minadores son fundamentalmente himenópteros parasitoides. 1995) contra todo tipo de insecticidas: organoclorados. carbamatos y piretroides (Minkenberg y Lenteren. Pteromalidae. Closterocerus cinctipennies. que son considerados un factor de control para el género en cultivos de Capsicum annuum como son las especies de: Chrysonotomyia spp. Elosegui. 2003). 1986. Chrysocharis ainsliei. 1986). Se encuentran en las familias: Braconidae. y Eulophidae. de la familia Braconidae y Halticoptera circulus (Walker) para la familia Pteromalidae (Chandler 1984). y Zagromosoma americanum para Eulophidae. de igual forma se ha experimentado con patógenos para su control.resistencias cruzadas (Peña. Opius spp. estos últimos necesitan ciertas regulaciones ambientales para su buen funcionamiento (Perez. sin embargo. Objetivos Específicos Determinar las especies de parasitoides asociados al picudo del chile (Anthonomus eugenii Cano) y el minador de las hojas (Liriomyza spp.) asociados al cultivo de chile habanero (Capsicum chinense Jacq.).III. . Objetivo General Definir la composición faunística de enemigos naturales de la fase larvaria del picudo del chile y del minador de la hoja en el cultivo de chile habanero en el estado de Yucatán. en el estado de Yucatán. OBJETIVOS 3. Conocer la distribución de los parasitoides del picudo del chile habanero y del minador de la hoja del chile habanero. 1. 2. 3. Establecer el porcentaje de parasitismo de los enemigos naturales del picudo del chile habanero y del minador de la hoja. .). donde la población de picudos aumenta por la capacidad de carga del sistema. por lo tanto. HIPOTESIS Existen enemigos naturales parasitoides asociados a los insectos plaga. los cuales regulan su población en sistemas conservados. se encontrarian en cultivos de chile. picudo del chile (Anthonomus eugenii) y minador de las hojas (Liriomyza spp.IV. 1.V. Sinanche. contemplando aquellos cultivos con similares medidas y extensiones pero que diferían en cuanto a altitud. . Áreas de estudio El presente estudio se realizó en parcelas sembradas con chile habanero en el estado de Yucatán. Oxkutzcab. las localidades de muestreo (Cuadro 1) se ubicaron durante el inicio del año del 2010 en el mes de febrero. Tizimín. Peto y Yobaín. Las parcelas se ubicaron a través de recorridos que se realizaron a los municipios de Maxcanu-Halachó. Cada parcela visitada se georreferenció y su ubicación fue señalada en un mapa creado en GoogleEarth® (Figura 2). Valladolid. precipitación pluvial y condiciones de suelo. MATERIALES Y METODOS 5. así como vegetación aledaña al cultivo y métodos de manutención por el agricultor. Se obtuvieron muestras en parcelas de chile habanero presentes en la Península de Yucatán en el ciclo de producción 2010. 99"N 87°39'5.80"N 89° 8'8.5 0.08"N 89°27'7.39"O 19°51'1.80"N 89° 8'31.8 2 Parcelas encontrad as 1 1 1 1 1 1 2 1 1 0 2 3 Aspersiones semanales * Figura 2. Maria San Antonio Bacab Izamal Tixkuytun Conkal Unidad Samaria 20°11'32.89"O 20°10'15.5 0.5 1 1 1 1 1 1 1 3 2 1 2 0 1 0. 25 .70"O 21° 4'43.55"O 21° 6'24.90"N 89°10'19.Cuadro 1.41"O 21°18'0. muestreados en el estado de Yucatán.15"N 89°47'25. Geolocalización de los cultivos de Capsicum chinense.64"O 20° 4'40.09"N 89°18'5. Localidades Nombre Coordenadas Superfic ie (Ha) Dzitya Kinchil Cenote Azul Mococha Muna San Diego Buenavista Unidad Vergel Alfonso Caso Sta. Localidades de muestreo en el estado de Yucatán.66"N 89° 0'6.59"O 20° 5'6.23"O 20°54'58.84"O 20°24'55.5 0.14"O 21°16'3.84"N 89°56'54.6 1.5 1 0.21"O 20°56'8.5 3 1 0.02"N 89°28'31.02"O 21°17'5.46"N 87°43'5.5 1 2 2 4 21° 3'4.79"N 89°29'53.69"N 89°40'42.81"N 87°43'6.35"O 0.87"O 0.38"N 87°44'4.44"O 21°21'4. También se dividieron por tamaño de fruto en mayor que 2. 2. esto como dato de colecta. posteriormente se cerraron los frutos para esperar la emergencia de las larvas o parasitoides que pudiesen emerger. Figura 3. 3). En el laboratorio se procedió a la disección y medición de los frutos para la examinación y visualización de las larvas (Figura.5.5 cm y menor que 2. Obtención de parasitoides de A. Pupa de Anthonomus eugenii. se realizaron muestreos quincenales. la incubación se produjo en frascos de plástico de 3 X 4 cm transparentes para su mejor visualización. Las observaciones y registros de la emergencia de parasitoides y picudos adultos se realizaron cada segundo día durante 15 días posteriores a la puesta de su incubación. en cada muestreo se tomaron muestras de frutos con presencia del insecto. .5 cm. Los frutos se trasladaron al laboratorio de entomologia de la Universidad Autonoma de Yucatan campus Xmatkuil. estas se seleccionaron al azar en las parcelas ubicadas en todo el estado. eugenii En los periodos de producción comprendidos al año de colecta (febrero 2010-febrero 2011). en bolsas de papel debidamente etiquetados. Pupa de Liriomyza spp. Las observaciones y registro de la emergencia de parasitoides o minadores se realizó cada segundo dia durante quince días posteriores a la puesta de su incubación. en hojas de papel debidamente etiquetadas con la ayuda de una hielera con hielo para evitar la deshidratación de las hojas y la muerte prematura de larvas o pupas. Figura 4. los cuales se depositaron con algodón húmedo dentro de frascos transparentes de 3 X 4 cm para su mejor visualización. Obtención de parasitoides de Liriomyza spp. En laboratorio se disectaron las hojas en cuadrados de 1 X 1 cm. Las hojas se trasladaron de igual manera al laboratorio de entomologia de la Universidad Autonoma de Yucatan campus Xmatkuil. en cada muestreo se colectaron hojas con presencia de la larva del minador (Figuras 4 y 5). se realizaron muestreos quincenales. 3. 27 . Mina de Liriomyza spp. En los periodos de producción comprendidos en el año de colecta (febrero de 2010-febrero 2011). Figura 5. la selección de las hojas fue al azar.5. En el caso de especímenes de la familia Braconidae. numero 1 para Liriomyza sp. En el caso de un morfotipo de Liriomyza se enviaron a secuenciacion para de esta forma efectuar la identificacion correcta ya que se carecia de colectas anteriores las cuales ayudaran a identificar al grado de especie estos individuos. Muestras obtenidas Los insectos se obtuvieron en estado adulto despues de ser puestos a incubar en los metodos ya descritos.5. 5. 4. . Orgánico: se ejerce con la utilización de productos orgánicos y aceptados para su exportación y Sin manejo: el cual no admitía ningún tipo de aspersión de insecticidas y/o repelentes naturales en el cultivo. identificándolos como 3 tipos de manejo: Tradicional: consta de la aspersión de insecticidas de uso común por los agricultores. para su posterior identificación. para poder determinar en estos tres escalones de manejo la incidencia de parasitismo e insectos plaga. asi mismo los individuos no identificados se enviaron con el especialista en cuestión de cada grupo. 5. (1998) a nivel taxonomico de género. eugenii. y numero 2 para A. se conservaron en frascos con alcohol al 70%. Insectos plaga y enemigos naturales * * Se llevó a cabo la comparación de enemigos naturales y presencia de insectos plaga en los cultivos con diferentes tipos de manejo. se utilizaron las claves de Wharton et al. hasta su montaje en seco con alfileres entomológicos del numero 0 para los parasitoides. 6. en donde se determinaró la oviposición del insecto plaga. se utilizo un cultivo sin manejo por insecticida.5 cm y >2. Distribución de busqueda de minas en follaje según el estrato de la planta. se midieron los frutos y se dividieron en grupos de <2. Daños y abundancia de plagas Para la determinación de daños y abundancia de Liriomyza spp.5 cm. la planta se manejó en tres niveles (Figura 6) en donde se determinó la preferencia de algún estrato por la plaga. 29 . 6. para que este no afectara en la incidencia de las plagas y la resistencia presentada por la planta.5. Figura. Con el objetivo de determinar aspectos de preferencias de los enemigos naturales y y para conocer y relacionarlos con el nivel de parasitismo. El parasitismo se determinó por medio del conteo de parasitoides con base al total de los insectos emergidos.* * . y se realizaron curvas de abundancia para determinar la cantidad y porcentaje de parasitismo para los insectos plaga. tomándose de las parcelas ubicadas con anterioridad.5. daño foliar y parasitismo del insecto plaga. así mismo se determinó el porcentaje de parasitismo para esta especie. la incidencia de las plagas. algún estrato de la planta. 5. 7. 8. Diversidad de parasitoides Para determinar las especies de parasitoides que se encontraron en el cultivo se realizaron entre dos y cinco muestreos mensuales durante un año. el porcentaje de parasitismo se determinó por medio de los parasitoides emergidos de las muestras puestas a incubar. La incidencia de las plagas se calcularon por abundancia en los cultivos y principalmente se tomó de cultivos testigo. en donde las aspersiones eran nulas. en los cuales se tomaron y dividieron chiles y hojas con presencia de la plaga. de esta forma se contabilizó manualmente en todas las etapas fenológicas del cultivo. la incidencia de la plaga se calculó mediante los valores de abundancia. Análisis de datos Las variables observadas en este estudio fueron. El análisis de daño por sustrato se analizó para determinar la incidencia de Liriomyza spp. donde la fructificación fue notable y se encontraba el cultivo susceptible a poblaciones de este insecto. cuando el cultivo llegó a su finalización. presente en todas las parcelas muestreadas. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 6. eugenii se estableció en los meses de cultivo (Septiembre-Enero). 1. . en donde se estimó el crecimiento de la población desde el mes de Septiembre hasta finales de Noviembre.823 especímenes pertenecientes a la especie Anthonomus eugenii. eugenii Se obtuvieron de los dos temporales (Abril-Julio y Octubre-Enero) de cultivo que comprendía el año de muestreo un total de 1. El trabajo de incidencia poblacional de A.VI. incidencia de A. Las poblaciones del picudo del chile se establecieron en los segundos meses de los temporales muestreados (Mayo y Noviembre). (Hymenoptera: Braconidae). fueron: Opius sp. no se traslaparon en su ubicación dentro de todo el estado. Sin embargo. considerando los rendimientos de chile habanero alcanzados (8-12 ton/ha). Parasitismo Se encontraron 182 parasitoides pertenecientes a las familias: Pteromalidae. Daños de A. Halticoptera circulus Walker (Hymenoptera: Pteromalidae) y Chrysonotomyia formosa Westwood (Hymenoptera: Eulophidae). (Hymenoptera: Pteromalidae) que se encontraron ubicados en 3 parcelas en todo el estado. 3. con cuatro Morfo-especies. una morfoespecie para picudo del chile y tres para minador de las hojas. eugenii Los Daños ocasionados por el insecto plaga fue leve al considerar la cantidad en daño/kilogramos (31 kg/ton). 1. 1. 2. sin embargo. por lo que no se observaron pérdidas considerables en la producción. así mismo. Eulophidae y Braconidae. 6. es de considerar que el muestreo del picudo del chile se generó en parcelas con nulas aspersiones y que los daños ocasionados pueden generar preocupación en el agricultor debido a ser una plaga polivoltina de ciclo rápido. los parasitoides reportados para Liriomyza spp. Estos números bajos de daño se deben a la poca incidencia de la plaga.6. Los parasitoides encontrados para picudo del chile fueron: Catolaccus spp. Estos mismos datos fueron procesados por incidencia de parasitoides en 22 . Maria San Antonio Bacab Izamal Tixkuytun Conkal Unidad Samaria Parasitoides Encontrados 0 0 2 37 0 0 0 0 0 0 1 0 0 4 2 1 1 0 2 3 2 4 3 2 1 2 0 1 Aspersiones Semanales * * 23 . eugenii * * Los parasitoides localizados en los 14 sitios muestreados fueron en total 44 individuos. eugenii. Por lo tanto los números arrojados fueron un total de tres sitios con colectas de parasitoides (Cuadro 2): Cuadro 2. 1. Abundancia de Parasitoides de A. estos fueron separados desde su incubación y mantenidos en tablas para su corroboración 6. pertenecientes al género Catolaccus spp. Localidades muestreadas para localización de parasitoides en A. eugenii Localidad Dzitya Kinchil Cenote Azul Mococha Muna San Diego Buenavista Unidad Vergel Alfonso Caso Sta. 4. de la familia Pteromalidae (Figura 7).frutos con mayor o menor medida. estos fueron colectados en su mayoría en sitios sin algún tipo de aspersión quimica o en zonas de bajo control agroquímico y que eran propensos a verificar la incidencia de poblaciones de parasitoides de A. sin embargo.Figura 7. 24 . Parasitismo según el tamaño del fruto de chile habanero En trabajos anteriores correspondientes a Riley et al.5 cm (Cuadro 3). en A. 3.5 cm de tamaño. Este trabajo verificó la preferencia del parasitismo de Catolaccus sp. esto debido a la mejor localizacion por parte de los parasitoides y su mejor alcanze a estos. verificando la preferencia en 86. (1992) y observaciones hechas por Rodriguez-Leyva (2007) reportan la ausencia de parasitoides en chiles con un fruto mayor a 2. eugenii debido a la dificultad de parasitar larvas cuando el tamaño del fruto es mayor y por lo tanto en grosor y espacio entre las semillas de donde se encuentra la larva del picudo. eugenii. Emergencia de parasitoides por tamaño del fruto Parasitoides Emergidos Emergencia en chiles < Emergencia en chiles 2. imposibilitando de esta forma el trabajo eficaz de la regulación de los parasitoides por estas circunstancias.5 cm longitud 5 6. Cuadro 3. 2. Incidencia de Liriomyza spp. el estudio fue meramente observativo y por medio de los resultados de este estudio se pretendió corroborar la ausencia de parasitismo de A. Parasitoide de Anthonomus eugenii Cano del género Catolaccus (Hymenoptera: Pteromalidae) * * 6.5 cm longitud 37 32 >2.5 % con respecto al fruto de menor tamaño a 2. 03 23. Muestreos 1 2 3 4 Plantas con presencia de minas 319 323 174 101 Nº plantas Muestra 435 433 424 423 Incidencia % 73. dentro de los meses de Julio a Septiembre del 2010. pero sin resultados negativos para el agricultor y la cosecha.La incidencia de Liriomyza spp.083 minas durante el periodo de trasplante y primera fructificación del cultivo en los meses de Julio a Septiembre del 2010.59 41. con niveles inferiores a los que había iniciado al establecerse inicialmente la plaga Cuadro 4. estimando la incidencia del insecto plaga en los diferentes estratos de la planta. identificando la estabilidad de la población por sus enemigos naturales en el mes de Septiembre donde se estableció. produciendo caída prematura de hojas e importante baja en el rendimiento por parte de la planta y su producción de frutos (Cuadro 5).33 74. en donde se registró mayor número de larvas en la parte inferior de las plantas muestreadas. Porcentaje de incidencia de Liriomyza spp. el mayor resultado de daño en la planta se tornó más significativo en la parte inferior de ésta.. El total de minas realizadas por la plaga fue de 2. 25 .87 Sin embargo. en el cultivo de Capsicum chinense se muestra en el cuadro 4. De las muestras colectadas se obtuvieron un total de 694 adultos de minador de la hoja de los 14 sitios de muestreo.Inferior Incidencia % por Estrato Superior – Medio .31 – 4.09 – 37. Los parasitoides encontrados en los 14 sitios mostraron un porcentaje de 26 . Muestreo Hojas Revisadas Minas por estrato Superior – Medio .31 14.51 6. el uso desmedido de insecticidas genera un ambiente no propicio para el control poblacional del parasitoide hacia la plaga. Parasitismo de Liriomyza spp.34 – 39. por lo cual fue abandonada.3 – 39.86 – 16. 2.83 3.49 3.72 15. sin embargo. cuando la floracion y fructificacion estuvieron presentes. 2. Daños de Liriomyza spp. generando resistencia en Liriomyza y eliminando a su enemigo natural. esta plaga se manifestó con mayor intensidad a los dos meses de plantacion del cultivo.Cuadro 5.61 – 8. 6.96 – 13. colectas realizadas en los meses de Febrero 2010-Febrero 2011.Inferior 1 2 3 4 870 866 808 846 134 .136 28 – 39 . 2. fueron contenidos en todos los cultivos por los parasitoides encontrados. Incidencia por estrato del minador de las hojas. * Los daños de Liriomyza spp. siendo este insecto poco problema para los agricultores.40 – 30.342 122 – 323 .264 . generando un 70% de daños a la planta y decayendo la produccion de la parcela. de esta forma se localizaron dos parcelas que fueron siniestradas debido a esta plaga en las plantas.342 32 – 69 . 1. 83 0 0 0 11 36 18 7 Minadores adultos colectados 0 0 48 158 89 45 Parasitismo % 0 0 22.9 22. Halticoptera circulus y Chrysonotomyia formosa.63 % en sitios donde las aspersiones de agroquimicos eran de hasta 2 veces por semana. Cuadro 6.9 % en sitios con nula aspersión y menores a 13. el nivel regulador de los parasitoides sobre las poblaciones de Liriomyza se presentó sin embargo con frecuencia en sitios donde había o no aspersión de agroquímicos.7 20.11 20. Localidad Parasitoides encontrados Dzitya Kinchil Cenote Azul Mococha Muna San Diego Buenavista Unidad Vergel Alfonso Caso Sta. pero con una diferencia destacable en sus niveles de parasitismo (Cuadro 6).. Sitios de colecta con presencia de liriomyza spp. Los parasitoides encontrados fueron Opius sp.22 15.55 27 . Maria San Antonio 0 25 10 0 0 138 48 0 0 18.parasitismo con 22. trifolli. que se identificaron preliminarmente como Liriomyza trifolii y L.61% De todas las muestras de Agromícidos se determinaron 2 morfoespecies. 28 . ya que los registros previos en Yucatán indican la existencia solo de L.63 0 20. huidobrensis. las muestras colectadas en el nor-oriente del estado se enviaron para la corroboración de la especie por análisis de ADN.16 21. sin embargo.Bacab Izamal Tixkuytun Conkal Unidad Samaria Total 0 6 0 25 138 0 44 0 124 694 0 13. por lo que podrían ser usados muy eficazmente como control biológico en la región. Adicionalmente. sin embargo se encontraron diferencias de la incidencia de parasitoides en los cultivos que mantenían un control de las plagas por medio de insecticidas orgánicos o sin la presencia de alguno de estos. Fue posible evidenciar la presencia de entomofauna benéfica que regula las poblaciones de A. CONCLUSIONES Anthonomus eugenii Cano. Lo anterior coincide con trabajos previos. 2007) Liriomyza spp. se obtuvieron especímenes del genero Catolaccus. fueron localizados sus parasitoides.VII. estos enemigos naturales representan nuevos reportes de los parasitoides encontrados para este insecto dentro de la península de Yucatán. quien se encontró dentro de las parcelas con presencia de picudo parasitando a estos insectos y controlando su población. eugenii en el estado de Yucatán. Estos mostraron la capacidad de regular las poblaciones del picudo del chile. los cuales indican que este género es un parasitoide asociado al coleóptero en otros tipos de chile (Rodriguez-Leyva. que se reportó en los muestreos correspondientes a este proyecto son registrados en monocultivos anteriormente. 29 . al igual que en el picudo del chile. sin embargo. dando a conocer su importancia dentro de estos monocultivos como insectos polivoltinos que aumentan su población de una manera muy eficaz. Así mismo. fue encontró en la mayoría de los cultivos de la región. De igual manera se determinó la especie a L. trifolli esto ayudara a trabajos posteriores para la determinación y combate eficaz del hospedero así como de sus parasitoides en el cultivo del chile habanero. 30 . And Nichols. 1995. G.. plaga de horícolas y ornamentales. Perspectiva estadística del estado de Yucatán. Documento de estension. Cano. E. O. E. Elmore. R. M. 2002.H. LITERATURA CITADA Altieri. de México. Sustrai. 113 p. G. C. Second edition. 31 . Chandler. ISBN: 968-839-489-0. M. 1998. A. una guía ilustrada para su identificación. INEGI. J. Colegio de Postgraduados. Cd.U. G. Mex. La mosca minadora Liriomyza huidobrensis. Institute of Food and Agricultural Sciencie (IFAS). Plagas que afectan el chile habanero y agroquímicos utilizados para su control en el estado de Yucatán. J. Guatemala. 2006. Pereyda. Peppers: Vegetable and spice Capsicum. Montecillo. And Votava. A. 2003.. New York. N.J. Acta Zool. 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