MICOTECA CULTIVO Nombre Común Y Nombre Científico

May 26, 2018 | Author: Sandra Puentes | Category: Fungus, Plants, Beneficial Insects, Soil, Leaf


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MICOTECA CULTIVO CADUCIFOLIOSDurazno (Prunus Persica); Manzano (Malus domestica); ciruelo (Prunus domestica) Edwin Leonardo Barinas Rojas Sandra Yamile Puentes Coronado Trabajo presentado a la docente: MÓNICA JOVANNA PATIÑO PACHECO MANEJO INTEGRADO DE ENFERMEDADES Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia Facultad de Ciencias Agropecuarias, Ingeniería Agronómica Tunja, Colombia 2017 CONTENIDO INTRODUCCIÓN............................................................................................................................. 3 GENERALIDADES DEL CULTIVO. ........................................................................................ 4 1. Cladosporium carpophilum (tel. Venturia carpophila Fisher) ................................................. 5 1. 7 RESULTADOS. ............................................................................................................. 8 2. Roya, Tranzschelia pruni-spinosae (Pers.)................................................................................ 12 2.8 RESULTADOS. ........................................................................................................... 15 3. Rhizoctonia: Rhizoctonia solani (teleomorfa: Thanatephorus cucumeris) ............................ 18 3.8 RESULTADOS. ................................................................................................................. 21 INTRODUCCIÓN. por ejemplo. fusarium. Los cultivos de caducifolios en el departamento de Boyacá siguen siendo importantes en la economía de la región. con el apoyo de la Granja de Nuevo Colón y con la colaboración de la Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia (UPTC) de Tunja. en la actualidad se encuentran las cuatro especies con una gama de variedades que se han ido adaptando a las condiciones agroecológicas de las zonas. monilia.. . Manzano. La incidencia de las enfermedades en los diferentes cultivos de caducifolos genera perdidas en la producción y por ende perdidas económicas para el agricultor. pera. sarna. ciruelo. durazno. eliminar los hongos y nematodos del suelo antes de la plantación. Aunque es posible tratar una plaga. venturia. hasta plantearse la sustitución por otra especie. etc. ocasiona costes que pueden hacer replantearse el plantar o no una especie. en las instalaciones del vivero Tunguavita. Los frutales caducifolios en Colombia se remontan a la década de 1980 y su introducción se debe a productores particulares y al Instituto Colombiano de la Reforma Agraria (Incora). dentro de las principales enfermedades que atacan estos cultivos esta: alternaria. disminuyendo el potencial de soluto de la solución del suelo.5 Mg= 5. franca limosa.8 Altura recomendada 1560 msnm Temperatura mínima 8ºC Temperatura máxima 40ºC Humedad relativa 75% Precipitación puede variar entre 6652 y 11406 m3 /ha al año Brillo solar Topografía Duración del ciclo Producion a partir cultivo del segundo o tercer año después de su plantación Riego efectivo mm/ciclo Horas luz requerida entre 10 y 14 horas luz Grados día 450 a 800 grados día Densidad de siembra 5 o 6 m entre plantas Forma propagación enjertación . Tabla 1.5 Tolerancia salinidad baja salinidad La alta salinidad afecta la capacidad de campo del suelo debido a su efecto osmótico. franca arenosa y limosa). Contenido de MO 2% Nivel de N-P--K N= 175 kg/ha P= 100 g /planta K= 60 kg/ha Niveles de Ca y Mg Ca= 36. GENERALIDADES DEL CULTIVO. Propuesta según los requerimientos del cultivo de durazno ( Prunus Pérsica) en Colombia REQUISITOS DEL CULTIVO ITMES Rango Explicación (breve) Drenaje Profundidad efectiva 50 cm pH recomendado 6-7. Textura del suelo texturas medias (franca. 3 Transmisión o fuentes de inóculo: Por dispersión de salpicaduras de esporas de partes infectadas de la planta. donde todas las variedades fueron atacadas. maduran de forma desigual.MARCO TEORICO. liberación de esporas por la lluvia (Muncharaz. ataca fundamentalmente a tallos y esporádicamente a hojas.5. 1. solo afecta a los brotes jóvenes.Se han notificado daños graves a los albaricoques en Sudáfrica (Bottomley. de morfologías muy variadas. lo que dificulta el desarrollo normal de la fruta.2 Síntomas: moteado. Venturia carpophila Fisher) Afecta a : el albaricoque. Cladosporium carpophilum (tel. lo que provocó la caída prematura de la fruta. tiene una piel gruesa y mal sabor. humedad y aspersión prolongada. 2017). Aparece como parches marrones pequeños. distorsionan. 1. pero pueden causar daños superficiales. 1954) y en melocotones en la región de Ecrasnodar de la URSS. 2017). 1. 1. Las lesiones de las hojas y ramitas son importantes principalmente en hibernación del hongo. pero además suelen formar estructuras productoras de esporas asexuales. de color marrón pálido y elevado. circulares. superficiales y de color hollín en la superficie expuesta de la fruta 6-8 semanas después de la caída del pétalo: estos parches finalmente se fusionan para formar áreas grandes de color marrón oscuro.4 Distribución geográfica: Cosmopolita (CMI. como por ejemplo la simple fragmentación del micelio.1 Reproducción asexual: Estos hongos poseen muchas formas diferentes de reproducción asexual. las lesiones son pequeñas. . el melocotón y la almendra. 1. a menudo exudan goma. Las hojas pueden o no verse afectadas.4 Epidemiología: Factores como la lluvia.1 Taxonomía: Reino: Fungi División: Ascomycota Clase: Dothideomycetes Orden: Capnodiales Familia: Davidiellaceae Género: Cladosporium Especie: Carpophilum 1. 1967).5 Ciclo de la enfermedad: 1. En las ramitas. la ciruela. generalmente se producen manchas poco pronunciadas dispersas a lo largo del brote y que no son muy visibles (Muncharaz. Los melocotones infectados se agrietan. 1. Las lesiones foliares se forman en la parte inferior como parches de color marrón oscuro acompañados de largas lesiones estrechas de color marrón oscuro en la nervadura central. 1944) y Australia (Fisher & Jenkins. La infección comienza después de la caída de los pétalos. Ciclo de vida de cladosporium 1. En las frutas los síntomas aparecen 5 semanas después de la inoculación. los conidios se producen a partir de esporas en reposo o micelio. En primavera. La mayoría de las infecciones se producen en el momento. más de 10 ° C (óptima 22 ° C a 27 ° C) para la germinación de esporas y entre 2 ° C y 35 ° C para el desarrollo de la enfermedad. las cuales tras dispersarse crecerán formando micelios con células uninucleadas. Infección de la fruta: aquí las esporas y el micelio se adhieren estrechamente a la superficie entre los pelos. En las ramitas. Las condiciones que favorecen el desarrollo de la enfermedad son temperaturas superiores a 16 ° C para la producción de esporas. formando una capa de células cortas y rellenas. originando así una célula con dos núcleos que terminará formando hifas con células con dos núcleos. El hongo pasa el invierno en lesiones en ramitas. Los conidios se producen en la primavera después de la caída de los pétalos y son arrastrados por el viento o salpicados por la lluvia .6 Desarrollo de la enfermedad: Los cultivos de conidios y ascosporas causan síntomas de pecas. hay alguna lesión en las células externas . A través de la lluvia y el viento serán llevados a las hojas y frutos. El hibernación en estado de conidial es por brotes infectados y en estado ascígeno de hojas caídas infectadas. en los cuales estos dos núcleos se fusionan en uno originando esporas.5. pero el contacto cercano del hongo con las células externas permite la absorción de la nutrición de la fruta a través de las paredes intactas. cuando la vaina se divide.1. Figura 1. el micelio hiberna en forma de células esféricas de color marrón oscuro . en las hojas al final de las 8 semanas. Es posible que los conidios fúngicos puedan pasar el invierno. Las inoculaciones y las infecciones continúan hasta que la fruta madura. Evidentemente. La germinación sigue en breve y el hongo penetra en el tejido de la planta. pero los síntomas a menudo no se ven durante algunas semanas. esta ocurre cuando dos hifas contactan entre si entonces una célula de una hifa pasa su núcleo a otra célula de la otra hifa. aunque la fruta permanece susceptible durante la cosecha. Estas hifas binucleadas crecen entre unas estructuras reproductoras formadas por hifas uninucleadas y terminan formando los esporangios. El hongo no penetra en la carne del melocotón.2 Reproducción sexual. la muestra debe estar seca. En este espacio se debe colocar la muestra preservada de alguna parte de la planta afectada con esta enfermedad. Agente causal Cultivo Variedad Fecha de la colecta: Tejido colectado Finca Municipio Departamento: Coordenadas . se debe fijar con contac trasparente en toda la hoja Nombre de la enfermedad. Figura 2. una vez recolectada la muestra fue llevada al laboratorio de Fitopatología ubicada en las instalaciones de la Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. tallos o ramas afectados en el Estereoscopio . se muestran plantas de durazno infectadas con Cladosporium carpophilum. los cancros pequeños tienen márgenes irregulares. en la cual se evidencian chancros que comienzan como pequeñas lesiones rojizas en el crecimiento y estos cancros se expanden lentamente. pero no causan áreas hundidas en la corteza. 7 RESULTADOS. Las lesiones más viejas tienen aproximadamente 1/4 de pulgada de diámetro y desarrollan una apariencia verde polvorienta o aterciopelada. Observación de hojas tallos o ramas afectados a afectados a simple vista simple vista  Observaciones realizadas en el estereoscopio y montaje de cámaras húmedas Figura 3.1. Se recolectaron muestras con el fin de realizar la extracción del Hongo. Observaciones de síntomas y signos de Cladosporium carpophilum en durazno Observación de hojas. En la figura 1. Observaciones de síntomas de signos producidos por Cladosporium carpophilum Vista al estereoscopio Observación de hojas. Tabla 2. La floración y la madurez del fruto. Observación de Observación de estructuras Observación de estructuras estructuras reproductivas reproductivas del patógeno reproductivas del patógeno del patógeno 10x 40x 100x 1. Propuesta para el control químico de la enfermedad Cladosporium Carpophilum para el cultivo de Durazno en Colombia Categ # de Nombr Ingredi Modo oría máx Enfer Grupo e Presentació ente de de Dosis aplica medad químico comerc n activo acción resist ción ial encia folpet Ftalimidas FOLPA Polvo Contacto. Estrobilurina Y ® SC Concentrad acción 0 L methyl s a preventiva.1 Control químico. 3 180.8. Observaciones estructuras patógeno producidos por Cladosporium carpophilum. o 200 cc /ha . 1. 7 y un día antes del grueso de la cosecha). Luego se deben realizar tres aplicaciones previo a la cosecha (15. 7 N® 50 mojable preventivo 220 WP g/100 L agua (3 Clados -4 porium Kg/ha) Carpop kresoxi STROB Suspensión Contacto con 1 13cc/10 2 hilum m. agua curativa y (mínim erradicante.8 MANEJO DE LA ENFERMEDAD.  Observación del microscopio de estructuras reproductivas del patógeno Figura 4. vista al microscopio. Se han recomendado tradicionalmente tres aplicaciones durante el período de floración. El control químico de esta enfermedad apunta a proteger a la planta en los dos estados de máxima susceptibilidad. La primera se realiza cuando los estambres comienzan a asomar de las cuales se considera muy importante la última que trata de proteger los restos o envolturas florales. ref 350 resistencias 7 color Naranja Variedad Irina.4. por lo que no se puede ingresar a un monte en que se aplicó Captan durante las 96 horas siguientes a la aplicación. Producto de contacto. color Amarillo Variedad Tlaxcala. ref 380 resistencias 8 color Chapeado Variedad Sel 60.2 Control genético Variedad Sel 103. PROCL Concentrad Sistémico. resistencia claddosporium carpophilum 7.8. ref 350 resistencias 7 color Naranja Variedad Sel 63. Dichas aplicaciones es conveniente realizarlas durante la floración debido a que en el momento en que madura la fruta la población de patógeno es generalmente alta lo que incrementa el riesgo de selección por resistencia. Imidaz N-propil-N. Benzimidazoles. Tienen algún efecto sobre infecciones ya establecidas. de bajo riesgo de generar resistencia. ref 400 resistencias 8 color Amarillo naranja Variedad Oro de Tlaxcal. ORAZ o preventiva. 00 L triclorofenoxi emulsionabl curativa y agua )etil]imidazol e erradicante -1- carboxamida Captan dicarboximid Captan Polvo Contacto. ref 400 resistencias 7 color Amarillo chapeado Variedad Sel 68. ref 350. ref 350 resistencias 7 color Amarillo chapeado . ref 400 resistencias 8 color Chapeado Variedad Sel 248. Dicarboximidas. Por su alto riesgo de generar resistencia se aconseja no realizar más de dos aplicaciones en la temporada. Su principal característica es el alto riesgo de generar resistencia en la población del patógeno. 1 180 2 a mojable preventivo g/100 L agua Los fungicidas efectivos son: Captan. No debe utilizarse 15 días antes ni 15 días después de una aplicación de aceite debido a que la combinación resultante sobre la planta es altamente fitotóxica. No debe aplicarse más de una vez durante la temporada y es conveniente que esa aplicación se realice durante la floración 1.6. 2 100g/1 3 ol [2-(2. Por esta razón se recomienda aplicarlo siempre en mezcla con otro fungicida de bajo riesgo como el captan. ref 350 resistencias 4 color Chapeado Variedad Sel 232. Posee 96 horas de período de reentrada restringida. Un exceso en la fertilización nitrogenada favorece el desarrollo de la enfermedad.. pedúnculos y cancros. Eliminación de inóculo secundario: Durante la floración y cuajado de frutos deberían eliminarse las flores atizonadas y cancros ya que estos son fuente de inóculo para la fruta. que permite ampliar las fronteras de comercialización de una de las frutas colombianas más promisorias en el mercado nacional e internacional (Alvarez. Citrus sinensis (Rutaceae) a diferentes concentraciones frente a los modelos biológicos: Trichoderma harzianum. cajones en buen estado y evitando que la fruta se golpee al manipularla. Es importante el manejo de la fertilización.8. mostrando mayor potencial inhibitorio que el fungicida comercial Dithane empleado a 10000 ppm. se deduce la necesaria la eliminación de los mismos para reducir los niveles de inóculo inicial.(Fernández. 2002).3 Control cultural. (Murillo. El aceite esencial de eucalipto inhibió completamente el crecimiento de este hongo a 3000 ppm. 1. 2009) Estos biopreparados representan una alternativa de manejo ambientalmente amigable y segura.4 Controles alternativos Se evaluó la actividad antifúngica de los aceites esenciales de Eucalyptus sp (Myrtaceae) y cascara de naranja.8. Se debe evitar que entre en contacto inóculo con los frutos cosechados teniendo una buena higiene de los cajones. canasto cosechero forrado. Esta tarea es más sencilla cuanto más cerca de la floración se realice. . Eliminación de inóculo primario: Conociendo que el patógeno permanece en frutos momificados. Por último es importante dar a la fruta condiciones poco favorables al desarrollo de la enfermedad. Para esto se debe remover rápidamente el calor llevándola a temperaturas cercanas a 0 ºC. luego crece la brotación y se dificulta la búsqueda de los cancros. Se debe evitar la producción de heridas utilizando guantes. Absidia sp y Fusarium oxysporum. En montes con excesivo vigor en donde se sombrea la entrefila se crea un microclima húmedo que dificulta el control. 2010) 1. Manejo de la cosecha: La correcta manipulación de la fruta en la cosecha y poscosecha permite minimizar las pérdidas. Esta tarea se puede realizar a fines del verano o durante la poda invernal. Sin embargo no es una práctica corriente la eliminación y quemado de las mismas. del packing y cámaras. manejo del microclima : Mediante el manejo correcto de la poda se puede lograr mayor insolación y ventilación. las uredosporas son dispersadas principlamente por el viento y en menor medida por el agua de lluvia e insectos. y las hifas receptoras. con un ciclo vital complejo. 1996). originados por la germinación de una eciospora. capa protectora del ecio. formado por 5 fases que se desarrollan en dos huéspedes diferentes. de 16 . Los espermogonios se desarrollan tanto en el haz como en el envés de la hoja. Estas fases son las siguientes: 1. uredinosporas. Roya. (C. Tranzschelia pruni-spinosae (Pers. teliosoporas. En éstos se encuentran los espermacios. provocadas por la acumulación de uredosporas en el envés (Peréz. 2.M.3 Transmisión o fuentes de inóculo: la falta de riego debilita la resistencia varietal o el exceso de humedad es determinante para la infección. .4 Distribución geográfica: Cosmopolita 2. 2. melocotonero.Y. basidiosporas. formando unos círculos de hasta 2. las diferentes esporas de los diferentes estadios son.2.. Los ecios se forman en el envés pero pronto comienzan a aparecer en el haz. 2015) 2.5 mm de diámetro. reducción del crecimiento de ramos. su contenido es amarillento. ciruelo. se forman en el envés de las hojas y forman al principio pequeños puntos pardos que pueden unirse al crecer. originando los ecios cuando entran en contacto. su pared presenta el ápice engrosado y está finamente ornamentada con verrugas. que recogen los anteriores. Las esporas producidas en el interior del ecio son globoides. tiene un margen revoluto.24 micras de diámetro. manchas amarillo-marrón en el haz de la hoja. 2. órganos reproductores masculinos.1 Taxonomía Reino Fungi División Basidiomycota Subfilum Pucciniomycotina Clase Pucciniomycetes Subclase Incertae sedis Orden Pucciniales Familia Uropyxidaceae Género Tranzschelia 2.) Afecta: Albaricoquero. el peridio.5 Epidemiología: se tarta de una roya que tiene multiples estados de esporulación diferencial con sus respectivas esporas( macrociclica) que se desarrollan en diferentes hospedantes(heterocíclica). 2.2Síntomas: Causa la defoliación prematura. formando un pequeño punteado negro. almendro. 3.6 Ciclo de la enfermedad: Hongo de tipo roya. Los uredinios.. la infección foliar puede ocurrir dentro de un amplio rango de mojado foliar de 18-36 hs de mojado a 15-20°C con un periodo de incubación de 8 a 10 días. muerte progresiva local y reducción de la floración en la estación siguiente al momento de la infección. 7 Desarrollo de la enfermedad: Las hojas caídas constituyen algunas de las fuentes hibernadas e infecciosas de la enfermedad donde el patógeno pasa el invierno en forma de uredo y teliosporas. tiene 3 o 4 poros ecuatoriales. Éstas son bicelulares.20 micras.com/especie/tranzschelia-pruni-spinosae. Num. Las basidiosporas producidas por las uredosporas y las teliosporas pueden infectar las hojas jóvenes en mayo.40 x 12 . muy fuertemente constreñidas. El micelio del hongo puede también permanecer viable en el tallo de un hospedador intermedio para asegurar futuras infecciones. no persistente. Disponible en <https://www. de forman que se fracturan con facilidad. Las pústulas o soros constituyen en realidad masas de uredosporas que se producen desde las estructuras del hongo en los tejidos infectados y que rompen la epidermis vegetal. Los telios son anfígenos y aparecen más o menos agrupados. ISSN 1887-5068 Figura 5. y su pared. las dos células son globoides. en el que se desarrollan los basidios y basidiosporas.com [en línea]. 5.negruzcos y en su interior se forman las teliosporas. La germinación de una de estas teliosporas origina un micelio especial. La infección puede convertirse en epidemia durante la incesante formación e infección de las generaciones de uredosporas. tienen forma elipsoidal. un promicelio. 08/11/07 [consultado el: 22/10/2017]. miden 20 . Las esporas se forman sobre un pedicelo. 2007) asturnatura.html>. Ciclo de vida de una roya 2. y están soportadas por un pedicelo corto e hialino.24 micras. Los síntomas aparecen a principios de julio en forma de manchas coalescentes de color amarillo-marrón en el haz de las hojas y como pústulas de aspecto pulverulento de color marrón rojizo en el envés de las mismas. de color pardo oscuro. de 35 .asturnatura.com "Tranzschelia pruni-spinosae (Pers.) Dietel". son pardo . (asturnatura.43 x 19 . 4. engrosada en la zona apical. verrugosas. Asturnatura. Presentan paráfisis pardas y capitadas. . 153. la muestra debe estar seca. En este espacio se debe colocar la muestra preservada de alguna parte de la planta afectada con esta enfermedad. se debe fijar con contac trasparente en toda la hoja Nombre de la enfermedad. Agente causal Cultivo Variedad Fecha de la colecta: Tejido colectado Finca Municipio Departamento: Coordenadas . Observaciones de síntomas de signos producidos por Tranzschelia pruni-spinosae Observación de hojas. provocadas por la acumulación de uredosporas en el envés (figura 1). Observaciones de síntomas de signos producidos por Tranzschelia pruni-spinosae Vista al estereoscopio Observación de hojas.  La roya se caracteriza por la aparición de manchas amarillo-marrón en el haz de la hoja.8 RESULTADOS. tallos o ramas afectados en el Estereoscopio  Observación del microscopio de estructuras reproductivas del patógeno Tranzschelia pruni-spinosae . tallos o ramas afectados a simple vista  Observaciones realizadas en el estereoscopio Figura 7.2.  Figura 6. 9 MANEJO DE LA ENFERMEDAD. Tabla 3. se protegerán los nuevos brotes.9. Las hojas ya afectadas por esta enfermedad no se curan. Las aplicaciones preventivas deben ser realizadas sobre todo si el tiempo es lluvioso y las plantas han sido atacadas en otras ocasiones. Propuesta para el control químico de la enfermedad Tranzschelia pruni-spinosae para el cultivo de cerezo. pero si se realizan al menos 2 aplicaciones continuas de 7-10 días de intervalo. 2.1 Control químico. flores y frutos. Vista al microscopio Observación de estructuras Observación de estructuras Observación de estructuras reproductivas del patógeno reproductivas del patógeno reproductivas del patógeno 10x 40x 100x 2.Figura 8. Observaciones estructuras patógeno producidos por Tranzschelia pruni-spinosae .en Colombia . un suelo bien drenado y con una separación notable entre ellas. Por tanto. Retirar del suelo las hojas muertas afectadas. Cultivar semillas de calidad en lugares con buena exposición solar.9.9.2.2 Control biológico.3 Control cultural.. 2. De la evaluación de siete aislamientos de bacterias bajo condiciones de campo y producción orgánica se identificaron una especie de Bacillus y otra de Pseudomonas con potencial de reducir intensidad (% de hojas con síntomas) de Roya y en el caso de Bacillus con resultados comparables a tratamientos con hidróxido de cobre. Mantener el cultivo resistente mediante una fertilización adecuada. También es recomendable cambiar la primera capa de sustrato por una nueva que no esté infectada. Desinfectar las herramientas cada vez que se usen para no contaminar otras plantas. . puedes consultar el artículo sobre el mantenimiento de las herramientas de jardín. La limpieza es la actividad más importante a llevar a cabo con el fin de evitar tanto la antracnosis como la roya. uno de los químicos más utilizados en el manejo de la Roya (Haddad et al. 2009). ya que ahí se conserva el hongo. Si quieres saber más sobre cómo hacerlo. algunas de las tareas preventivas que se pueden realizar son: Arrancar las malezas para que no se acumule el agua y el hongo no pueda propagarse. causando asi la contaminación. R. 3. formando una roseta seca y marrón que persiste a través de la época de cultivo.2 Síntomas: Los síntomas exteriores visibles en las plantas más viejas incluyen la marchitez repentina y el amarilleo del follaje y la pudrición de color negro de los peciolos cerca de la corona. Rhizoctonia: Rhizoctonia solani (teleomorfa: Thanatephorus cucumeris) Es un patógeno de plantas.G. por ejemplo. de forma irregular.6 Ciclo de la enfermedad R. solani también sobrevive como micelio al colonizar la materia orgánica del suelo como un saprófito. solani puede sobrevivir durante muchos años produciendo estructuras pequeñas (de 1 a 3 mm de diámetro). se introduce como un contaminante natural de los suelos minerales. de color marrón a negro (llamadas esclerocios) en el suelo y en el tejido vegetal. El hongo causa una pudrición seca característica de color marrón con fisuras profundas en la corona o cerca de ella.4 Distribución geográfica: cosmopolita 3.3 Transmisión o fuentes de inóculo: terrones que se adhieren la semilla y se covierten en portadores subsiguientes. en suelos húmedos.1 Taxonomía: Taxonomía Reino: Fungi Filo: basidiomycota Clase: Hyphomycetes Subclase: Incertae sedis Orden: Agonomicetales Familia: Agonomicetaceae Género: Rhizoctonia Especie: R. encontrándose tanto superficialmente como en estratos profundos del suelo(CIP.3. El hongo es atraído a la planta por los estimulantes químicos liberados por las células vegetales en crecimiento activo y / o los residuos vegetales en descomposición. particularmente como resultado de la actividad patogénica de la planta. 3. ocasionando daño considerable en los brotes emergentes del tubérculo cuando lascondiciones no favorecen su rápida emergencia.Kühn 1858 3. 1996). Las zonas expuestas de las raíces infectadas están cubiertas a menudo por masas de micelio marrón. Los esclerocios y / o micelios presentes en el suelo y / o en el tejido de la planta germinan para producir hilos vegetativos (hifas) del hongo que pueden atacar una amplia gama de cultivos de alimentos y fibras.5 Epidemiología: Se desarrolla a temperaturas muy diversas en zonas cálidas. templadas y frías. la hifa fúngica entrará en contacto con la planta y se . con un gran rango de huéspedes y de distribución mundial. solani J. ácidosy fríos (suelos inundables). La raíz y la corona quedan destruidas parcial o completamente. Posteriormente. Ciertos patógenos de arroz de R. A medida que avanza el proceso de atracción. solani han desarrollado la capacidad de producir esclerocios con una capa externa gruesa que les permite flotar y sobrevivir en el agua. la enfermedad es común en todas las regiones donde secultiva papa. 3. 3. las hojas marchitas se caen y secan. que son masas de hifas estrechamenteentretejidas con superficies duras y resistentes.7 Desarrollo de la enfermedad Por lo general. y posible deficiencia de nutrientes (lawson. lo que limita el movimiento de agua y nutrientes hacia la planta y causa la defoliación prematura. Los tallos infectados tienen una apariencia seca. "tiesa". la hifa continúa creciendo y colonizando el tejido muerto. el hongo continúa creciendo en la superficie externa de la planta y causará enfermedades al producir una estructura de infección especializada (un appresorio o almohadilla de infección) que penetra en la célula de la planta y libera nutrientes para un crecimiento y desarrollo fungosos continuos. especialmente durante el calor del día. el cual formaestructuras de resistencia o esclerocios. marchita. cutina y pectina). y se repite un nuevo ciclo cuando están disponibles nuevos sustratos. El estado sexual se conoce como Thanatephorus cucumeris (Frank) Donk (Domschet al 1980). perteneciente a laclase Basidiomycete no produce esporas asexuales (conidios) y únicamente encondiciones especiales produce esporas sexuales (basidiosporas). En la naturaleza R. los tallos se descomponen rápidamente. 2017) . A medida que el hongo mata las células de la planta. lo que produce cancros hundidos cerca del nivel del suelo. El proceso de infección se promueve por la producción de muchas enzimas extracelulares diferentes que degradan varios componentes de las paredes celulares de las plantas (por ejemplo. Los cancros aumentan y rodean el tallo. Se produce un nuevo inóculo en o en el tejido del huésped. Este hongo.adherirá a su superficie externa.solani se reproduce asexualmente y existe como micelio vegetativo. celulosa. a menudo formando esclerocios. 3. Después del acoplamiento. comienza con la formación de lesiones marrones y marrones rojizas que aumentan. Agente causal Cultivo Variedad Fecha de la colecta: Tejido colectado Finca Municipio Departamento: Coordenadas . la muestra debe estar seca. En este espacio se debe colocar la muestra preservada de alguna parte de la planta afectada con esta enfermedad. se debe fijar con contac trasparente en toda la hoja Nombre de la enfermedad. se desarrollan unas pequeñas necrosis secas. Observaciones estructuras patógeno producidos por Rhizoctonia solani Vista al microscopio Observación de estructuras Observación de estructuras Observación de reproductivas del patógeno reproductivas del patógeno estructuras reproductivas 10x 40x del patógeno 100x . Observaciones de síntomas de signos producidos por Rhizoctonia solani Observación de hojas. Esta pudrición es el origen de la caída de la planta y de su muerte. Figura 10. Observación de frutos Observación de flores tallos o ramas afectados a afectados a simple vista afectados a simple vista simple vista  Observación del microscopio de estructuras reproductivas del patógeno (Cámaras húmedas. 40x. 100x). el color se propaga. o de improntas con cinta) ((Fotos 10x.8 RESULTADOS. de color pardo a rojo. Poco a poco. Figura 9.3. Los pecíolos de las hojas en la interfaz del suelo. esto con el fin de eliminar en gran parte los agentes contaminantes. en el medio correspondiente para aislar al patógeno. Una vez se termina el proceso de lavado se corta el trozos de máximo 5mm por 5mm y con un grosor de 1 mm en los cuales el 50% del tejido se encuentre infectado y el réstate no. durante 2 a 3 minutos. Se realizan tres lavados de cortes de tejido vegetal con agua destilada estéril.  Se lavaron las muestras recolectadas con abundante agua y haciendo uso de jabón.5%. Y durante un minuto en alcohol al 70%. Finalmente se Sellan las cajas con calor y posterior con vinipel. posteriormente se escurren los trozos empleando gasa sobre el recipiente y se sumergen los trozos durante un minuto en hipoclorito de sodio al 0. Pasos para el aislamiento de fitopatógeno Rhizoctonia solani en medio de cultivo PDA Observación después del Observación después del Materiales para el montaje de montaje de microcultivos montaje de microcultivos microcultivos 10x 40x . para identificarlo se marcar las cajas con la fecha y el nombre del patógeno y se incuban durante ocho días a 25°C. Figura 11. Se Transfieren los trozos sobre una toalla de papel hasta que no se observen húmedos  Con EL fin de evitar la infección por otras patógenos. posteriormente se depositaron las muestras en un vaso que contenía agua destilada. se procede a Flamear las pinzas sobre fuego y se trasferir asépticamente los trozos en las cajas Petri formando una cruz. Las moléculas químicas de acción curativa o preventiva como el carboxin+captan (Vitavax). el tratamiento con moléculas químicas preventivas es efectivo en los tubérculos semilla para reducir el inóculo . respectivamente (Ñustez. 2002). estas moléculas químicas tienen transporte apoplástico siendo eficientes para el control de Basidiomicetes e intervienen en los procesos respiratorios y energéticos de los hongos (Diccionario de especialidades agroquímicas. Material vegetal para el Crecimiento de hongos Crecimiento del hongo en aislamiento en cultivo mixto cultivo puro Figura 12. Se aplican ingredientes activos como carboxin + captan (Vitavax) que pertenece a la categoria toxicologica II y es usado para la protección y desinfección de semillas y en la desinfección de suelos aplicándolo directamente. se emplea el manejo de diferentes moléculas en tres épocas: siembra (carbendazim). Según el CIP (1996). solani (Mantecón. tiabendazol (Mertect). emergencia (Validazim) y desyerba (Tiabendazol). siendo recomendables cuando se utiliza semilla infectada con R. en el contorno del sitio de emergencia y a la base de la planta. benomyl (Benlate). inhibe la síntesis de la enzima del ácido succinico deshidrogenasa ejerciendo una acción sistémica en la planta e inhibiendo la síntesis de ARN. Pasos para el montaje de microcultivos del hongo Rhizoctonia solani en laboratorio 3.1 Control químico. dirigiendo la aplicación al sitio de siembra.9. 3. carbendazim (Derosal) y validazim son comúnmente aplicadas al tubérculo semilla previo a la plantación. 2003). El fungicida preventivo captan es un compuesto heterocíclico que inhibe la respiración celular y generalmente se usa para la desinfección de suelos.9 MANEJO DE LA ENFERMEDAD. al combinarlo con carboxin que pertenece al grupo de las oxantinas. También. en etapas iniciales del cultivo. 2003). Varios géneros de hongos han sido identificados como potenciales agentes de control biológico contra varios fitopatógenos del suelo sin embargo. o se hace uso indiscriminado de los mismos (sobredosis y sobreaplicaciones) (Santibáñez y Rivera. El control biológico se define como la disminución del inóculo o de la actividad de una enfermedad causada por un patógeno como consecuencia de la interacción de uno o más organismos. incluyendo la planta hospedera. solani presente en ellas o cuando los suelos no están demasiado infestados. pero excluyendo al hombre (Baker. pero este beneficio puede ser menor en campo cuando el suelo está infestado por R. son Trichoderma spp.9. Carvendazi Carben Derosal Polvo Sistémico 3 200 L/ha 2 m dazim mojable 3. .4 kg/ha 2 midazo mojable les Carboxin + Carbox vitavax Polvo Sistemico. Además.2 Control genético No existen reportes de variedades resistentes. que generan altos riesgos para la salud humana puesto que se ha determinado que pueden ser carcinógenicos y mutagénicos (De Liñan. 3.9. los que mejores resultados han ofrecido en la práctica y que han sido registrados en diferentes países de Europa y América. 1997). 2000). presentan residualidad y contaminación de suelos y aguas cuando son utilizados intensivamente. 2 200 . Propuesta para el control químico de la enfermedad Rhizoctonia solani para el cultivo de durazno en Colombia Categ # de Grupo oría máx Enfer Ingrediente Nombre Presenta Modo de químic de Dosis apli medad activo comercial ción acción o resiste caci ncia ón Benomyl Benzi Benlate Polvo sistémico 2 0. y Gliocladium spp.400 2 captan amide mojable protectante g/100 kg + semillas Rhizoc Ditioca tonia rbamar solani o tiabendazol benzim Mertec Suspensi sistemico 4 180 a 360 3 idazole ón cm3 /200 Concentr litros de ada agua.3 Control biológico. Tabla 4. solani AG3 persistente en los cultivos de papa. Benomil y captan son fungicidas de categorías toxicologícas III y II respectivamente. 1987).de R. (Lawson. 8. 8x105 propágulos. solani en los que encontraron que era T. En otros modelos de biocontrol se están empleando especies de Trichoderma y Rhizoctonia no patogénica consideradas como hipovirulentas (binucleadas) (Carling et al. solani y el incremento del antagonismo de T. Evite que se estrese la planta y evite lesiones que pueden provocar heridas abiertas que sirven como puntos de acceso para Rhizoctonia.4 Control cultural. la densidad de propágulos de T. 6.Ambos hongos ejercen su acción mediante varios mecanismos entre los que juega un rol importante el parasitismo. 2017) . ya que es una fuente común de Rhizoctonia. Utilice recipientes nuevos. no vuelva a utilizar sustrato de plantas infectadas. Cultive plantas a 12 °C (70 °F) o menos. harzianum el microorganismo causante de este efecto en monocultivos de rábano. Recuerde que esto brinda condiciones ideales para otros organismos de enfermedades de las raíces. Elimine las plantas enfermas y residuos de plantas del área de cultivo. solani. 10. 9.g-1. 2. hamatum es extremadamente alta en suelos con bajo pH. 7. 1. Mantenga los extremos de la manguera lejos del suelo y no permita que la tierra entre en contacto con recipientes. plantas o equipo. siendo esta condición favorable para el desarrollo de supresividad de R. Aumente el flujo de aire en la cobertura foliar de la planta. Si se reutilizan los recipientes. Chet y Baker (1981) reportaron en Colombia suelos supresivos a R. 5. 3. Especies del genero Trichoderma han sido muy estudiadas como antagonistas de patógenos del suelo como R. Debido a que el Rhizoctonia es una enfermedad que se trasmite por aire. Aumente el espacio de la planta para permitir que la humedad escape de la cobertura foliar de la planta e intente mantener niveles de humedad inferiores a 93 %.9. se debe realizar un saneamiento de forma adecuada o se va a trasmitir la enfermedad al cultivo siguiente. 2004). 2002) como agentes de control biológico para reducir la severidad de la rhizoctoniasis (CIP. Chet y Baker (1981) encontraron que en suelos orgánicos de la Sabana de Bogotá. Riegue en la mañana para permitir que las hojas y los tallos se sequen antes del atardecer. Igualmente. Evite el contacto con la tierra. 1996). 4. 3. Sclerotium rolfsii y Sclerotium cepivorum (Harman et al. GC 1988. https://idus. 606 pp. Genética de hongos patógenos de plantas .google.co/books?id=nh00DwAAQBAJ&printsec=frontcover&hl=es&so urce=gbs_ge_summary_r&cad=0#v=onepage&q&f=false Adam. (GS Sidhu. . Nueva York. 535-552. Thanatephorus cucumeris ( Rhizoctonia solani ) una especie de amplio rango de hospederos.2.pdf?sequence=1 https://books. 6. (1962). (CMI Map 198. En Advances in Plant Pathology .).us.I. Distribution of Tranzschelia pruni- spinosae (Pers. Commonwealth Mycological Institute (C. Nueva York. Agrios.). 2nd.es/xmlui/bitstream/handle/11441/31257/Tesis%20Doctoral%20Definitiva%2 01-6-15%20definitivo. ed.REFERENCIAS..com/es/centro-de-formacion/pudricion-de-la-raiz-por- rhizoctonia-los-sintomas-y-como-controlarlos/ . ed. 1967). Pp. Plant Pathology .) Diet. 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