Manual de Fisiologia

March 22, 2018 | Author: Aispuro Oscar | Category: Kidney, Breathing, Blood Pressure, Lung, Muscle


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Universidad Autónoma de Baja California Facultad de Ciencias Químicas e IngenieríaPrácticas de Laboratorio de Fisiología PRACTICA NO. 1 Manejo de equipo de laboratorio de fisiología Objetivo Que el alumno conozca los principios teóricos esenciales que fundamentan la instrumentación fisiológica, así mismo adquiera la habilidad y destreza necesarias para operar, calibrar y manipular adecuadamente el equipo electrónico de registro de eventos fisiológicos (fisiografo, transductores, amplificadores, miógrafos, electrodos, etc.) Generalidades Para una mayor comprensión de los sistemas fisiológicos fundamentales son necesarias las prácticas de laboratorio que ofrecen al estudiante la posibilidad de un pensamiento y filosofía científica que le garanticen una práctica profesional de alta calidad. Para cumplir adecuadamente lo anterior y aprovechar al máximo las oportunidades que ofrece el laboratorio de Fisiología son esenciales las mediciones cuantitativas en forma de registro gráfico, para lo cual es indispensable a su vez el contar con un instrumental y equipo capaz de registrar gráficamente el amplio espectro de los eventos fisiológicos, los cuales han de registrarse meticulosamente y analizarse con cuidado para obtener las conclusiones del trabajo de experimentación, y así fundamentar sólidamente el aprendizaje de la Fisiología Humana. De todo lo anterior nace la importancia de que el alumno conozca y opere el instrumental y equipo de experimentación en la forma más familiar y adecuada posible, que le permita incluso proyectar y realizar trabajos de experimentación fisiológica que consoliden para siempre sus conocimientos de la Fisiología.. Parte Experimental Material y equipo: Baumanómetros Esfigmomanómetros Espirómetros. Contenedores para ratón y ratas. Procedimiento: 1) Proporcionar toda la información necesaria y suficiente al alumno, con su debida anticipación, que le sirva como material de estudio referente a los principios teóricos del instrumental y equipo que deberá operar. 2) Discusión conjunta maestro - alumno del material teórico presentado para aclaración de dudas y elaboración de conclusiones. 3) Práctica individual de cada uno de los alumnos sobre operación, calibración, y manipulación de los principales instrumentos de registro de eventos fisiológicos. Resultados y Observaciones: Realiza una tabla de resultados donde indique lo siguiente: Sujeto Presión arterial (mmHg) Volumen Circulante (L) Volumen de reserva Inspiratoria (L) Anota tus observaciones Conclusiones: Cuestionario 1. Describe el concepto de fisiología 2. Menciona cual es el uso de los siguientes aparatos a. Baumanómetro Katzung. Arthur Guyton. Espirómetro d. Esfigmomanómetro c. .. Bertram g. 1990 Farmacología básica y clínica. ed. Textos Universitarios. ed interamericana. Fisiógrafo e. Mex. manual moderno 6ta edición. Baño de órganos Bibliografía: Manejo de animales. Fisiología humana. José Orteriza Fdz. 1979.b. medico ingles. El uso del término de “presión sanguínea”. 1. La presión alta de la sangre o hipertensión. entre el hombro y el codo.  Se manejan valores normales de 120/80 mmHg o que fluctúen entre ellos. Al medir la presión de la sangre se registran dos cifras. Las arterias que llevan la sangre con oxigeno. aumenta de forma directa el riesgo de enfermedad coronaria (ataque al corazón) y de apoplejía (ataque cerebral). o presión diastólica. siendo la presión arterial mucho mayor que la de los capilares y venas. con lo que al corazón le resulta más difícil hacer que la sangre circule.PRACTICA NO. Cada vez que late el corazón. La cifra más alta. bombea sangre hacia las arterias. o presión sistólica. Ponga el brazo izquierdo si es diestro y viceversa a la altura del corazón. Procedimiento para tomar la Presión Arterial Para tomarse la presión. De acuerdo con la Asociación Americana del Corazón (American Heart Association). descubrió que el corazón bombeaba sangre a través de dos circuitos que llevan y traen sangre desde los pulmones al corazón y de allí a todo el resto del cuerpo. 2 Presión arterial y regulación en ejercicio Objetivo Practicar la medición de los parámetros de frecuencia cardiaca. presión arterial y respiración en condiciones de reposo y en ejercicio Generalidades William Harvey. Ponga el manguito alrededor del brazo desnudo. Esta medida representa que tan alto llega la columna de mercurio debido a la presión de la sangre. siéntese tranquilamente 5 minutos. Las presiones generadas en las diferentes partes del sistema cardiovascular varían considerablemente. las arterias pueden oponer una mayor resistencia al flujo de la sangre. es la fuerza que ejerce la sangre contra las paredes de las arterias. 2. La presión de la sangre. Cuando la presión de la sangre está alta. se refiere a la presión en el interior de la arteria cuando el corazón está en reposo y se está llenando de sangre. la presión alta de la sangre en los adultos se define de la forma siguiente:  Una presión sistólica de 140 mmHg o mayor. se refiere a la presión en el interior de la arteria cuando el corazón se contrae y bombea la sangre al cuerpo.  Una presión diastólica de 90 mmHg o mayor. se refiere a la presión arterial o tensión arterial. por lo que puede ser medida en cualquier punto a lo largo de su trayecto. por lo que la presión de la sangre es más alta cuando el corazón se contrae. apoyándolo en una mesa o el brazo del sillón. Una persona no se puede tomar la presión de la sangre a sí misma a no ser que tenga un aparato electrónico para medirla. Los monitores electrónicos de la presión de la sangre miden también el ritmo cardiaco o pulso. Tanto la presión sistólica como la diastólica se miden en "mmHg" (milímetros de mercurio). Dicha presión es igual en todo el sistema arterial. La cifra más baja. sin haber fumado ni tomado café y con la vejiga vacía. y las venas que llevan la sangre sin oxigeno. . El pulso se puede encontrar en el lateral de la parte baja del cuello. Al tomar el pulso no sólo se mide la frecuencia cardiaca. que hacen mucho ejercicio cardiovascular. las arterias se expanden momentáneamente en proporción con la fuerza con que la sangre es bombeada a través de ellas. Se suele medir cuando la persona está en reposo. las lesiones y las emociones. y consiste simplemente en contar el número de respiraciones durante un minuto contando las veces que se eleva su pecho. Cuando el corazón impulsa la sangre a través de las arterias. Los deportistas. Las niñas a partir de los 12 años y las mujeres en general suelen tener el pulso más rápido que los niños y los hombres. El pulso podría fluctuar y aumentar con el ejercicio.  Si no está seguro de los resultados. Bombee la pera con rapidez hasta que la presión alcance 30 mmHg más de la máxima esperada. El ritmo del pulso es la medida de la frecuencia cardiaca. La frecuencia respiratoria La frecuencia respiratoria es el número de veces que una persona respira por minuto. las enfermedades. no mire al reloj continuamente. más bien concéntrese en las pulsaciones. es decir. anote la presión. sino que también puede indicar:  El ritmo del corazón. Cuando el latido deja de oírse. Siga desinflando. Cuando la . La frecuencia respiratoria normal de un adulto que esté en reposo oscila entre 15 y 20 respiraciones por minuto. Cuando se tome el pulso:  Utilizando las yemas de los dedos índices y corazón. Cuando se miden las respiraciones. que están localizadas cerca de la superficie de la piel en ciertos lugares del cuerpo. del número de veces que el corazón late por minuto. La frecuencia respiratoria puede aumentar con la fiebre. 4. éstas se expanden y se contraen con el flujo de la sangre.  La fuerza de los latidos. Cada vez que el corazón late. Escuche el sonido del pulso a medida que cae la presión. Esta expansión puede apreciarse cuando se toma el pulso.  Empiece a contar las pulsaciones cuando el segundero del reloj marque las 12.  Cuente su pulso durante 60 segundos (o durante 15 segundos y después multiplíquelo por cuatro para calcular los latidos por minuto). que es la presión máxima o sistólica. 5. es importante tener en cuenta también si la persona tiene dificultades para respirar. anote de nuevo la presión.  Mientras esté contando. El pulso normal de los adultos sanos oscila entre 60 y 100 latidos por minuto. pídale a otra persona que cuente por usted. Repita el proceso al menos una vez más para comprobar las lecturas. Cómo tomarse el pulso: Cuando el corazón impulse la sangre a través de las arterias. las enfermedades y otras condiciones médicas.3. Coloque la campana del estetoscopio en la flexura del codo. haciendo que la presión disminuya 2 a 3 mmHg por segundo. en la parte interior del codo o en la muñeca. notará sus latidos presionando con firmeza en las arterias. presione suavemente pero con firmeza sobre las arterias hasta que note el pulso. Desinfle el manguito lentamente. como los corredores. justo por debajo del manguito del esfigmomanómetro. Cuando el latido se hace audible. 6. pueden tener ritmos cardiacos de hasta 40 latidos por minuto sin tener ningún problema. que es la presión mínima o diastólica. dolor o presión en el pecho. 3. Enseguida termine el sujeto se sienta. la frecuencia respiratoria y la presión arterial después de 5 minutos de reposo completo y sentado. subir el pie. 4. (1. incoordinación muscular. ni hacer ejercicio vigoroso). los resultados de la prueba darán una idea de la rapidez con que deben darse los tiempos del ejercicio. además de la frecuencia del pulso. marbo. Tomaran el pulso en reposo del sujeto (hombre y mujer por equipo). Tabla 2. los sujetos se levantan y dan unos cuantos pasos relajados. El sujeto realizara un ejercicio estándar consiste en subir y bajar de un escalón o banco de 33 cm para mujeres y 40 cm para hombre. (Nota: Las pruebas de ejercicios no deben hacerlas ninguna persona que tenga alguna enfermedad cardiovascular o respiratoria) 8.. Se da orden de que los sujetos se pongan de pie y permanezcan erectos en posición de firmes durante un minuto. confusión mental. Al final de ese periodo se detienen y se les toma de nuevo el pulso por 30 segundos (en este “experimento” el sujeto no debe caminar mucho. 7. al término del minuto se toma una cuenta de pulso durante 30 segundos. 9. al final de un ejercicio de 6 minutos de duración. Después de un periodo breve de descanso sentados. 2. Parte Experimental 1. El siguiente experimento se realiza para calcular un valor aproximado del consumo máximo de oxigeno y para ver el efecto del ejercicio sobre la presión arterial y la frecuencia respiratoria. 3. 4. si la frecuencia del pulso se eleva por encima del valor numérico de la presión arterial sistólica. Anote sus resultados en la siguiente tabla 1. bajar el otro pie y enderezarse). alrededor de su lugar. manteniendo la postura. descansadamente. bajar un pie.frecuencia es mayor de 25 respiraciones por minuto o menor de 12 (en reposo) se podría considerar anormal. presión arterial sistólica mayor de 240 mmHg o diastólica mayor de 125 mmHg. el objetivo es alcanzar una frecuencia cardiaca más o menos estable entre 130 y 150 por minuto. 5. 2. varias veces hasta que dos cuentas coincidan. Hágase la prueba de esfuerzo del escalón como se describió en el punto no. 6. El ejercicio deberá interrumpirse si se presentan los siguientes síntomas: Disnea. Tómese el pulso carotideo. que se mantendrá sentado y totalmente relajado durante 5 minutos. durante un minuto. Cuando se haya alcanzado el objetivo de una frecuencia cardiaca de 130 –150 por minutos se registra el pulso e inmediatamente la presión arterial con el sujeto sentado además se cuenta la frecuencia respiratoria. . se toma la frecuencia del pulso durante los últimos 15 segundos de cada minuto de ejercicio. subir el otro pie y enderezarse. 5. después de este tiempo se tomara el pulso por 30 segundos. Resultados: 1. Llenar la siguiente tabla 1 de Frecuencia Cardiaca Frecuencia cardiaca por minuto Reposo De pie inmóvil De pie con movimiento Ejercicio 1 Reposo de 5 minutos 1 minuto. Ejercicio 2 5 minuto. Ejercicio 2 3 minuto. Ejercicio 2 4 minuto. Ejercicio 2 2 minuto. Ejercicio 2 Deportista Hombre Mujer No-Depostista Hombre Mujer 2. Graficar para cada sujeto la frecuencia cardiaca (ordenada) contra la intensidad del ejercicio medida en minuto (abscisas) . Ejercicio 2 6 minuto. Llenar la siguiente tabla 2 DATOS Pulso Frec. Describe el concepto de presión sistólica 2.6 Frec. Describe el concepto de presión diastólica . respiratoria Valores en reposo P. Deportista Hombre Mujer No-Deportista Hombre Mujer Observaciones: Conclusiones: Cuestionario: 1. sistólica P. 6 Peso en Kg. Resp. min. diastólica Pulso min 5 Pulso min 6 Valores después Promedio 5 y 6 del ejercicio 2 Presión min.3. A. A. 7 ma. ed. Gonong. 6ta. Edición 1986. El manual moderno. Ed. . Menciona algunas enfermedades asociadas a desordenes del control de la presión arterial Bibliografía: Tratado de fisiología de Guyton. James D Witherspoon.3. Interamericana. Explique los mecanismos fisiológicos que intervienen en el control de presión arterial. Dr. Ed. 4. Edición. 1978. William F. Manual de Fisiolioga Medica. 1978. Hasper and Row. Human Physiology. así como las capacidades inspiratorias. la presión en los pulmones aumenta y la corriente de aire sale. El diafragma juega un importante papel en la respiración abdominal. espiratoria y vital. el contenido del tórax y los pulmones disminuye y la corriente de aire pasa a través de la nariz y la tráquea.PRACTICA NO. es un músculo plano de convexidad superior que separa el abdomen del tórax. Generalidades El mecanismo de Respiración La respiración sirve para absorber el oxígeno del aire y expeler el dióxido de carbono formado en nuestros cuerpos. En líneas generales. ocurriendo ambas en condiciones normales. y en condiciones normales éste está ocupado por líquido. éstas son: respiración abdominal y respiración pectoral.expiración normal 2 y 3 expiración profunda 4 aire residual (siempre queda en los pulmones) pie Podemos distinguir dos clases de respiración. Cuando estos músculos se contraen. de reserva inspiratoria y espiratoria. a través del cual los pulmones siguen el movimiento del tórax. empujan el diafragma hacia abajo y entonces el volumen de la caja torácica aumenta. 3 Espirometría Objetivo Identificar y cuantificar los volúmenes relacionados con la respiración como el volumen circulante. Este proceso se realiza en los pulmones que están cuidadosamente protegidos en la cavidad torácica. la respiración puede compararse al trabajo de un fuelle: cuando el diafragma se desplaza hacia abajo y el esternón arriba. Queda poco espacio entre los pulmones y las costillas. Esto provoca una inspiración Cuando los músculos se relajan de nuevo. Intercambio de aire estando de 1 y 2 inspiración profunda 2 inspiración . el diafragma asciende también a causa de la presión de la prensa abdominal y el volumen disminuye de nuevo: espiración: . Cuando se espira el contenido del tórax disminuye. Respiración abdominal La respiración abdominal es la más importante: cerca del 60 %. Hay músculos a ambos lados. gracias a lo Oxígeno cual el volumen aumenta y la presión en los Dióxido de carbono 0. es bombeada a todo el cuerpo. la parte inferior de los pulmones está mucho mejor ventilada. 0. Además. . Es debido a este proceso que se obtiene la energía necesaria para vivir y trabajar. mientras que todo el volumen de los pulmones es aproximadamente de 6-7 litros. Una buena respiración abdominal es muy importante para los pacientes que sufren enfermedades musculares. Es sencillo ver que durante la inspiración la pared abdominal se adelanta. Cuando los músculos Gases residuales 0. En su recorrido por el cuerpo.04% 4% pulmones disminuye. Pulmones Los pulmones están constituidos por un tejido esponjoso de millones de alvéolos conectados con la tráquea. lo que. Alrededor de estos alvéolos hay vasos sanguíneos muy finos que absorben el oxígeno de los pulmones y lo transportan al corazón a través de las venas pulmonares. atrás y lateralmente. la sangre desprende oxígeno y absorbe dióxido de carbono. con la respiración abdominal. desde donde la sangre rica en oxígeno.06% 1% se relajan las costillas descienden también por la acción de la gravedad Con cada inspiración -espiración. por ejemplo. Los músculos que permiten la respiración abdominal son más susceptibles de debilitarse que el diafragma.Vista Lateral Vista Frontal Inspiración (diafragma descendido) Movimiento de las costillas y el diafragma durante la respiración. Espiración (diafragma elevado) Respiración pectoral Composición del aire La respiración pectoral se consigue porque las costillas que están articuladas con las aire aire vértebras y con el esternón son empujadas inspirado espirado hacia arriba por distintos grupos de 79 % 79% músculos. sólo una pequeña cantidad de aire de los pulmones se renueva (aprox. Este dióxido de carbono es un producto de deshecho elaborado cuando el alimento es quemado en las células. hace que haya menos posibilidad de infección. El tórax se ensancha hacia Nitrógeno 20 % 16% adelante.5 litros de aire). Vasos sanguíneos eferentes. Centro respiratorio Para esta regulación involuntaria hay un complicado conjunto de pequeños órganos que están constantemente midiendo. 3. El primero se refiere a que nosotros voluntariamente podemos regular el ritmo y profundidad de nuestra respiración: podemos contenerla. la cantidad de nitrógeno y oxígeno presente en la sangre y cuál es la presión existente en los pulmones. y menos mal que es así. Ventilación normal . Corte de un conducto alveolar para mostrar dos alvéolos en sección. la regulación que ocurre sin que nuestra voluntad participe. 2.Respiración voluntaria e involuntaria La respiración es una actividad del cuerpo generalmente automática. es mucho más importante. Conductos alveolares con alvéolos 1. situado en el sistema nervioso central. 4. conteniendo mucho dióxido de carbono. todos los músculos que participan en la respiración deben recibir regularmente un estímulo. Sin embargo. Sin embargo. Vasos sanguíneos aferentes. la regulación involuntaria. Bronquiolos. Estos pequeños órganos pasan su información al centro respiratorio. hacerla más rápida o más profunda. esto es. El centro respiratorio reacciona de una manera particular a la cantidad de dióxido de carbono en sangre. pues de lo contrario tendríamos que pensar en cada respiración que hiciésemos. como una especie de detectores de polución del aire. conteniendo mucho oxígeno. Este centro es una especie de medidor y regulador en el que toda la información se procesa: desde ahí salen estímulos a los músculos que se ocupan de inspirar y espirar. Hay dos mecanismos reguladores para este propósito: voluntario e involuntario. 4. 5. 2. Los sujetos deberán de hacer 30 sentadillas sin levantar los talones inmediatamente después registre frecuencia cardiaca y volumen circulante normal (VC) Resultados: Realiza los siguientes cálculos de las capacidades pulmonares: Capacidad inspiratoria (CI) = VC + RI Capacidad espiratoria (CE) = VC + RE Llenar la siguiente tabla de los resultados generales de fumador. A los que se les practique la espirometría deberán de recostarse por 10 minutos. Los sujetos que se someterán a la practica serán : 2 fumadores (hombre y mujer). Reposar durante 5 minutos. 2. no-fumador y depostista . El volumen será medido por el espirómetro. Checar que el espirómetro esta calibrado a cero antes de cada uso 3. Después de una espiración normal colocar el aparato en los labios y exhalar fuertemente todo lo que queda. Respirar de pie un rato despacio normalmente e inspirar profundamente y exhalar fuertemente en el aparato. 1.Procedimiento. El estudiante se sentará cerca del espirómetro. Anotar resultados. anotarlos y promediar para sacar resultados. 2 no fumadores (hombre y mujer) 2 deportistas (hombre y mujer) 4. Con el espirómetro se medirá lo siguiente: Volumen circulante normal (VC): 1. 4. 2. Observadores se deberán de abstener de hacer bromas a los sujetos de experimentación para obtener los registros. Se tendrá que respirar por la boca. Volumen de reserva inspiratoria (RI) : 1. Anotar resultados Capacidad vital (CV) : 1. respirar por la boca. Volumen de reserva espiratorio (RE) : 1. 3. 3. Determinar la Frecuencia respiratoria de los sujetos en reposo. 2. 2. evitando respirar por la nariz con el espirómetro. respirando despacio y normalmente por 1 minuto. Respirar un minuto normalmente y después inhalar profundamente y expirar en el aparato. Repetir el procedimiento 2 veces. Los alumnos deben de hacer conciencia de que los volúmenes y capacidades se pueden falsificar modificando la mecánica de la respiración. no-fumador. deportista Sujeto Fumador Fumador Desportista Deportista No-Fumador No Fumador Responda las siguientes preguntas: Que cambios obtuvo durante los cambios de posición y porque? FR en reposo FR después del ejercicio VC después del ejercicio Que cambios obtuvo después de el ejercicio y porque? Observaciones Conclusiones: .Sujeto Fumador Fumador Deportista Deportista No-Fumador No Fumador VC RI RE CI CE Resultados Capacidad Vital de fumador. Mencione algunas alteraciones patológicas que afecten a los volúmenes y capacidades pulmonares? 3. Explique que ocurre en el enfisema? Bibliografía . Explique que ocurre en el asma? 4.Cuestionario. 1. Que aplicación clínica tiene el espirómetro? 2. tapizan tubos y conductos y tienen contracción lenta e involuntaria. pueden llegar a tener una gran longitud (hasta 3 cm. cuando el esfuerzo es muy fuerte y prolongado. Los músculos estriados están constituidos por un gran número de células o fibras musculares. motivo por lo que se aprecian bandas o discos claros y oscuros que se alternan. mientras otros muy potentes como el cuadriceps en el muslo. que si bien tienen un calibre muy pequeño (10-100 micras). Generalidades Los músculos son los motores del movimiento. Los músculos gastan mucho oxigeno y glucosa. Al contraerse. El cuerpo humano se cubre de unos 650 músculos de acción voluntaria. en forma de huso como el bíceps o muy cortos como los interoseos del metacarpo. Además los músculos sirven como protección a los órganos internos así como de dar forma al organismo y expresividad al rostro. el trapecio. para que la sangre arrastre las toxinas presentes en la musculatura. son los llamados músculos lisos y blancos. Cada miofibrilla tiene a su vez filamentos de actina y miosina (moléculas de proteína) que se interdigitan a lo largo de toda la fibra muscular. Se encuentran por ejemplo. dan como resultado los calambres y fatigas musculares por acumulación de toxinas musculares. Por su parte los músculos lisos son blanquecinos. que sostiene erguida la cabeza. Para ello regulan el funcionamiento de centros nerviosos. Clases de músculos Los de contracción rápida y voluntaria: se llaman músculos estriados o rojos. los de la masticación. o los gemelos en las piernas que permiten ponerse de puntillas. por ejemplo. para que el sistema nervioso elabore las respuestas conscientes a dichas sensaciones. Otro efecto de trabajo de los músculos es la producción de calor. Su misión esencial es mover las diversas partes del cuerpo apoyándose en los huesos.). 4 Propiedades de los músculos Objetivo Examinar y comprobar algunas de las funciones y propiedades de los músculos. Tal riqueza muscular permite disponer de miles de movimientos. Los músculos realizan el trabajo de extensión y de flexión. Un músculo. recupera su posición de reposo. Los músculos intestinales de contracción lenta e involuntaria. Cada fibra muscular contiene varios cientos o millares de miofibrillas.PRACTICA NO. Gracias a esta facultad. provocando que los músculos no alcancen a satisfacer sus necesidades. cuya propiedad más destacada es la contractilidad. como el dorsal en la espalda. se acorta y se tira del hueso o de la estructura sujeta. el paquete de fibras musculares se contrae cuando recibe orden adecuada. produciéndose así la contracción y la relajación. Los filamentos de actina pueden deslizarse entrando y saliendo de los espacios existentes entre los filamentos de miosina. Algunos músculos son muy grandes. tienen una contracción rápida y voluntaria y se insertan en los huesos a través de un tendón. En ellos se reciben las sensaciones. estos estados desaparecen con descanso y masajes que activen la circulación. que hacen de palancas. para aquello tiran de los huesos. es un haz de fibras. . Hay músculos planos como el recto del abdomen. Acabado el trabajo. Los músculos estriados son rojos. Los pronadores y supinadores hacen girar la muñeca y la mano. de contracción involuntaria. En el cuerpo humano hay más de 650 músculos. que mueven el brazo hacia atrás. llamados Maceteros. Los más importantes son: Cabeza Los que utilizamos para masticar. Los que permiten abrir o cerrar los párpados: Orbiculares de los ojos.mastoideos. para mover el brazo hacia adelante y los dorsales. Los que utilizamos para moverla hacia atrás: Esplenio Tronco. Los que utilizamos para soplar o silbar. Brazos El Deltoides que forma el hombro. El Tríceps Branquial que extiende el antebrazo. El músculo cardiaco es un caso especial. El Bíceps Braquial que flexiona el antebrazo sobre el brazo. el diafragma que separa el tórax del abdomen. Los pectorales. y pueden contraerse. Propiedades de los músculos: Son blandos. que elevan el hombro y mantienen vertical la cabeza. Los utilizados en la respiración: Intercostales. El músculo del movimiento de los labios cuando hablamos: Orbicular de los labios. en forma de sierra. pueden deformarse. Serratos. Cuello Los que utilizamos para doblar la cabeza hacia los lados o para hacerla girar: se llaman Esterno cleido . Músculos de la Mano . Los trapecios. pues se trata de un músculo estriado. llamados Bucinadores. (Antebrazo) Los flexores y extensores de los dedos.recubriendo el conducto digestivo o los vasos sanguíneos (arterias y venas). Sostenga 3 cubos de hielo por el mismo tiempo en que escribió el nombre 3. forman la pantorrilla. El sartorio que utilizamos para cruzar una pierna sobre la otra. . 4. Observar el efecto sobre el papel II Parte 1. El Bíceps crural está detrás.Extremidades Inferiores Los glúteos que forman las nalgas. Apoyarse firmemente sobre los dedos de su pies derecho 2. 4. extiende la pierna. dobla la pierna por la rodilla. 2. sobre el bíceps. Los flexores y extensores de los dedos. Flexionar el brazo con fuerza. Escribir ahora su nombre el mismo número de veces 4. Colocar ajustada una tira de papel alrededor del brazo. Sienta el tendón cuando está flexionado y extendido sobre el tobillo III Parte 1. El tríceps está delante. El individuo sometido al experimento se subirá la manga de la camisa. Los gemelos son los que utilizamos para caminar. Obsevar lo sucedido 5. 6. Caliente su mano por masaje o colocándola en agua caliente. Compare los distintos resultados y explíquelos. Escriba tres veces su nombre y tome tiempo 2. (músculos del pie) Parte experimental I Parte 1. 3. 5. descubriendo bíceps. Tocar la pantorrilla correspondiente. Escribir 3 veces su nombre nuevamente. terminan en el llamado tendón de Aquiles. hasta que regrese a su temperatura normal. Levantarse sobre dicha pierna 3. ¿Cuál es el efecto del frío y del calor sobre el músculo? . 5. Resultados Conteste las siguientes preguntas 1. 2.IV Parte 1. Contar número de veces que pueda hacerlo en 20 segundos. 3. ¿Qué indica lo sucedido en la parte I sobre la acción del músculo al contraerse? 2. 8. ¿Qué efecto tiene este movimiento sobre la posición del talón? 4. Inflarlo hasta que el punto radial sea imperceptible. 4. ¿Cómo se unen los músculos de la pantorrilla al talón? 5. ¿Cuál es la situación en cada una de estas posiciones? 6. Abrir y cerrar la mano rápidamente. 6. Repetir esto por 10 veces. 7. ¿En la parte II como se siente los músculos de la pierna? 3. Descansar unos minutos y luego colocar un brazar para presión arterial. Trazar una gráfica con el número de movimientos por lapso. Contando el número de veces en 20 segundos repetir 10 veces. anote los resultados. Abra y cierre la mano rápidamente con fuerza. Que es fatiga muscular? 2. Cuál es la función del musculo liso a nivel del tubo digestivo . Función del musculo cardiaco 3.7. ¿Qué relación se puede establecer entre el riego sanguíneo y el tiempo necesario para que sobrevenga la fatiga muscular? Observaciones Conclusiones Cuestionario 1. Que ocurre en la atrofia muscular 5.4. Menciona algunas enfermedades asociadas a la atrofia muscular Bibliografía . PRACTICA NO. Después de la arteria renal. la vejiga es capaz de almacenar hasta 800 ml de orina. electrolitos. glucosa. Aproximadamente del 20 al 25% de la sangre que sale del ventrículo izquierdo del corazón entra a los riñones a través de las arterias renales. De aquí la orina pasa a uno de los dos uréteres. Los riñones están situados abajo del diafragma en el angostamiento del dorso. 5 Diuresis Objetivo Comprenderá la importancia del funcionamiento del riñón. así como el efecto de algunas sustancias en la diuresis y retención del agua. vejiga urinaria y conductos asociados a los riñones. aminoácidos y se llegan a reabsorber principalmente la glucosa y las proteínas. cada uno con el tamaño aproximado de un puño. La interna es la medula renal que contiene 10 pirámides renales. es filtrado y entre los productos que esta filtrando se encuentran agua. la porción externa se denomina corteza renal. La punta de cada pirámide es una papila renal. con apariencia de dos frijoles gigantes de color rojo oscuro. creatinina. esta se ramifica hasta formar miles de arteriolas diminutas que llevan sangre hasta las nefronas formando la red capilar del glomérulo. La pared del glomérulo sirve como un ultrafiltro muy permeable al agua. . cada papila renal tiene varios poros que son las aberturas de los conductos colectores. Aproximadamente 120 ml/min del plasma que llega al riñón. Conforme se produce la orina. esta fluye por las aberturas de los conductos colectores hacia la pelvis (cámara con forma de embudo). entra en el riñón. esto significa que en el adulto normal la sangre pasa a través de los riñones con una velocidad aproximada de 1200ml/min. urea. ácido úrico. Generalidades El sistema urinario de los mamíferos consiste en riñones. La ira. Volumen diario promedio normal para un adulto es de 1200 a 1500 ml . que es cuando la orina sale de la vejiga.Durante la micción. la longitud de la uretra masculina dificulta las invasiones bacterianas de la vejiga. Valores: De cada 120 ml/min de liquido filtrado en el glomérulo solo un promedio de 1 ml es excretado en la orina. La cafeína y la teofilina causan dilatación de las arteriolas. 4. por lo tanto produce más orina. por el contrario en las mujeres es muy común las infecciones urinarias debido a la corta distancia que existe entre la uretra y la vejiga. La nicotina causa efecto opuesto acelerando la producción de ADH. contribuyendo a la retención excesiva de orina. Traumatismos o cirugías producen excesiva ADH. aumentando el volumen urinario. Factores que afectan la producción de orina: 1. 2. 5. La concentración del agua en el organismo está regulada por la Hormona Anti Diurética (ADH) y la Hormona Diurética (DH). aumentando la presión y filtración por lo que el volumen de orina será mayor. la orina fluye por la uretra. cuando el organismo necesita conservar agua. La ADH es segregada por la hipófisis para que los túbulos renales se vuelvan permeables y permitan la absorción de agua. 3. el miedo o tensiones nerviosas hacen que el riñón reciba mayor cantidad de sangre. Parte Experimental Material 4 vasos de precipitado de 500 mL 1 probeta de 50 mL 1 probeta de 100 mL 1 pipeta transfer 1 vaso de precipitado de 50 mL Cloro (1 por todo el grupo) Papel sanitario Toallas de papel (1 rollo) Guantes Jabón para lavar material Bebidas 1 litro de café negro sin azúcar 1 litro de agua purificada 1 litro de agua de jamaica natural sin azúcar 1 litro gatorade o suero . Algunos medicamentos y el alcohol suprimen la ADH. Esta será la muestra testigo de cada sujeto. Al presentarse en el laboratorio vaciaran de nuevo su vejiga y colocaran la orina en un vaso seco.Procedimiento 1. de la cual se determinará la densidad urinaria y el flujo urinario por minuto. Medir la cantidad de orina cada 15 minutos. considerar el tiempo 0 como el inicio del experimento. El experimento se seguirá durante 1 hora con 30 minutos Resultados Llenar las siguientes tablas con los datos correspondientes a cada una de las bebidas utilizadas. café. Posteriormente realizar una grafica comparando los resultados de las 4 bebidas Bebida:________________ Sexo:__________________ Tiempo (min) Volumen (mL) 0 15 30 45 60 75 90 Bebida:________________ Sexo:__________________ Tiempo (min) Volumen (mL) 0 15 30 45 60 75 90 pH Densidad (g/mL) pH Densidad (g/mL) . en un periodo no máximo de 15 minutos. Las bebidas a tomar serán: Agua purificada. 4. anotando su densidad y pH. El experimento se realizará con cuatro sujetos. los cuales deberán tomar una bebida diferente cada uno. Todos los sujetos vaciaran su vejiga inmediatamente después de levantarse de la cama el día del experimento. anotar la hora(tiempo 0). 2. 3. gatorade y agua de jamaica. Bebida:________________ Sexo:__________________ Tiempo (min) Volumen (mL) 0 15 30 45 60 75 90 Bebida:________________ Sexo:__________________ Tiempo (min) Volumen (mL) 0 15 30 45 60 75 90 pH Densidad (g/mL) pH Densidad (g/mL) Grafique para cada caso Tiempo vs pH. Son tres graficas solamente! . Tiempo vs Densidad y Tiempo vs Volumen (tiempo=x). .Observaciones Conclusiones Cuestionario Contesté brevemente las siguientes preguntas 1. Unidad anatómica y funcional del riñón. mencione cuales. Principales funciones del riñón. La nefrona está formada por dos porciones. 3. Las funciones básicas de la nefrona son: 6. 4. 2. Intensidad del flujo sanguíneo para ambos riñones. La parte del gasto cardiaco total que atraviesa los riñones recibe el nombre de: 5. En la filtración glomerular intervienen 3 fuerzas importantes. 8.7. Bibliografía . Volumen final de filtrado glomerular en ambos riñones es un promedio de: 9. El aumento de presión arterial aumenta ligeramente el porcentaje del filtrado glomerular debida a: 10. Mencione cuales. aminoácidos y proteínas. Lugar donde se absorbe la glucosa. Existen procedimientos adecuados para el manejo y cuidado de cada uno de estos animales. provocando su defensa con mordidas. requerimientos nutricionales. por lo que se deberá evitar entre otras cosas. incluidos en el suborden de los Fisípedos a su vez incluidos en el orden de los Carnívoros. y sobre todo es demandado cuando se pretenden obtener productos bioquímicos en cierta cantidad (sueros y antisueros. En la mayoría de las ciencias biomédicas se realizan investigaciones en animales en beneficio de la salud y bienestar del hombre. Es evidente. dentro del orden de los Lagomorfos (no emparentados filogenéticamente con los roedores aunque presentan dentición semejante). que junto con los Félidos forman el grupo de los Cynofélidos. es el animal más utilizado en la experimentación biológica. . Los diversos estudios han contribuido al descubrimiento de las funciones del organismo. (Oryctolagus cuniculus). reptiles.PRACTICA NO. Fácil de alimentar con piensos artificiales y de reproducir en cautividad.). mediante la práctica y manipulación adecuada de diversas especies con responsabilidad y ética. Mamíferos Por varios motivos. La única manera de aprender a manipular un animal es haciéndolo. la obstrucción de la nariz y oprimir el cuello Las especies utilizadas son muy variadas. Los animales del laboratorio son absolutamente necesarios para el estudio de la fármacos y de la fisiología.ej. Generalidades Desde que el hombre tuvo que empezar a capturar animales para proveerse de alimento y vestimenta. Conejo. Mas tarde vendría la domesticación de los animales para trabajo y protección y con el avance de la ciencia los experimentos con animales. Perro. Todo método de sujeción e inmovilización debe permitir la libre respiración. Junto con el cerdo y los ratones y ratas. que van desde insectos. esto se lleva a cabo con un manejo gentil y calmado sin exceso de ruido y sin movimientos rápidos que tienden a asustarlo . es de gran importancia que se realice el manejo con un mínimo de estrés y peligro al animal y al practicante. Su mantenimiento en jaula y su alimentación por piensos integrales es muy simple. si aceptamos el principio biológico de que: “la filogenia de un ser vivo es sólo una recapitulación de su ontogenia”. pertenece a la familia de los Lepóridos. los mamíferos son los mejores animales de experimentación. se vió obligado a idear técnicas de sujeción que le permitieran inmovilizar al animal. peces. también domesticado. p. uso de medicamentos y control de enfermedades. (Canis familiaris) mamífero doméstico perteneciente a la familia de los Cánidos. los mamíferos de experimentación serán los más cercanos al ser humano. por lo que muchos de sus componentes fisiológicos serán coincidentes o muy próximos. aves y los mamíferos que son los mas utilizados. 6 Manejo de animales de laboratorio Objetivo El alumno conocerá el procedimiento para el manejo de animales que se utilizan en el laboratorio. puede ser mantenido en jaula y alimentado con pienso integral. grupo típico del Nuevo Mundo que a su vez se incluyen dentro del importantísimo orden de los Roedores (el orden más numeroso de mamíferos) con característica dentición (incisivos de crecimiento continuo). presentan además comportamientos adecuados (tras la oportuna selección genética ) para su manipulación. de tamaño apropiado y alta tasa de reproducción. Su único defecto es su corta cola. 1. por lo que recogeremos al animal impidiéndole que pueda utilizar sus dientes para mordernos. Ambos. como es el caso del hámster y la cobaya.buen carácter lo hacen muy apropiado para su manipulación (el único problema es el de su tamaño). Por la cola se utiliza solo para trasportarlo de un lugar a otro cercano (por ejemplo de una caja a otra). es el único método) o bien sujetarlo por su cola o bien por ambos. el ratón. también perteneciente al orden de los Roedores. al suborden de los Myomorfos. que dificulta las sangrías. Fáciles de mantener. incluida dentro de la familia Cricétidos. Conejo En los animales más grandes. rata y ratón. animal caracterizado por sus bolsas bucales. perteneciente a la familia de los Cávidos. los animales más utilizados en experimentación.Además su –en general. Zonas de agarre (recogida y transporte) La máxima de este apartado será el recoger al animal sin estresarle demasiado y sin hacerle daño. Además sin que dicho agarre suponga la posibilidad de que el animal nos hiera. . con la misma taxonomía que la rata. Manipulación del animal Como norma general. Animal muy dócil. (Mesocricetus auratus). Cobayo (Cavia porcellus). pertenecientes al orden de los Roedores. Lo normal es sujetarlo por el pliegue de piel de detrás de su cabeza (en el caso de que no tengan cola. 4. pues se estresan con facilidad. incluídos dentro del suborden de los Caviomorfos. Hamster. 3. con pienso integral y de una fortaleza física fuera de lo normal. Tradicionalmente utilizadas por la experimentación biológica. lo que dificultará la realización del experimento. Por la cola y dejarlo sujetarse con las patas delanteras a una superficie rugosa (tapa de la caja) para hacer frotis vaginal o sexarlo. Por la cola y piel del cuello para administrarle algún fármaco. Rata (Ratus norvegicus). subfamilia Murinos. Rata y Ratón: En el caso de la rata. el único punto de peligro reside en sus dientes. hoy en día han sido superadas por otras especies con mayor grado de fertilidad (y de menor debilidad) como es el caso de los ratones y ratas. son junto con el cerdo y el conejo. en poco espacio. como es el caso del conejo (que puede utilizar sus patas para herirnos). lo que puede provocar una reacción de intranquilidad mantenida durante todo el proceso de trabajo. dentro del suborden de los Myomorfos. perteneciente a la subfamilia Cricetinos. 2. familia de los Muridos. Ratón (Mus musculus). la cobaya y el hámster. debemos manipular a los animales de laboratorio sin brusquedad e infringiéndoles el menor daño posible. subcutánea. b. general.. se realizan cinco tipos de inyecciones  Intramuscular: normalmente se elige el muslo del animal. linfática.1. un sistema de inmovilización bueno es el abrazarles de manera que su cabeza. No les gusta estar en superficies lisas (se asustan) 3. etc. en su cara ventral en el caso de rata. inhalatoria. Una vez sujeto por el pliegue de piel de detrás de la cabeza. por detrás de la pata delantera. Zonas de sujeción (inmovilización) Para inmovilizar a los más pequeños. regional. Parte Experimental Material Biológico Ratones Conejos Material y equipo Guantes de carnaza o gamuza Guantes de latex Cajas para transporte. Anestesia Distintos tipos: local. sujeta por el pliegue de piel. intraperitoneal. Se colocan con la cara hacia nuestro costado como balón de fútbol o sandia. gases no anestésicos. Métodos físicos: decapitación. Para los conejos. Métodos físicos y químicos. endovenosa. 2.  Intraperitoneal : se aplica en la parte ventral del abdomen. o hámster y en su dorso. agentes inhalatorios: gases anestésicos.  Subcutánea: se toma un pliegue por detrás de la cabeza o en el costado del cuerpo. Métodos químicos: a. en caso de que tengan cola. Normalmente.  La intravenosa: se aplica en la cola de las ratas y ratones y en la oreja de los conejos. agarraremos al animal de la cola y del pliegue de piel por detrás de la cabeza. mientras que con la otra mano sujetamos sus patas traseras. . rectal. en el caso del conejo y cobaya. agentes no inhalatorios. quede oculta en nuestra bata. se sujetan por todo el cuerpo contra la mesa. Vías de administración: local. tranquilizantes. Si no tienen cola. Eutanasia Elección del método. manteniéndolos sobre la mesa del laboratorio. electrocución. Toallas de papel Desinfectante Lysol Puntos de inyección y extracción Realiza los diferentes puntos de inyección y extracción para ratones y ratas. ratón. se obliga con la otra mano a que levante sus patas hacia delante (parece como si adoptara la postura de sentado). la forma menos compleja (algunos especialistas recogen cantidades importantes mediante punción cardiaca) es recoger la sangre del pabellón auricular del conejo. O por sondeo esofágico Extracción de sangre: se realiza fundamentalmente en la vena caudal. las cantidades extraídas siempre serán pequeñas. Importancia del uso de animales de laboratorio 2. ratones y jerbos. previamente dilatada la vena con xilol. En el caso del conejo. situada en la cola de las ratas. Que es un anestésico.  Oral: no significa atravesar tejidos. . sino que se deja caer el contenido de la jeringuilla dentro de la cavidad bucal. De todas formas. Observaciones Conclusiones Cuestionario 1. Investigar los diferentes anestésicos y dosis utilizados en rata. Textos Universitarios . Arthur Guyton.. 4. 1990 Farmacología básica y clínica. ratón. Fisiología humana. Bertram g. ed interamericana. Katzung. Mex. José Orteriza Fdz.3. ed. . Función del xilol Bibliografía Manejo de animales. 1979. conejo y rana. manual moderno 6ta edición. prepararon extractos de alquitrán de hulla y los aplicaron directamente sobre la piel de 137 conejos. Tratando de buscar una causa a esta peculiar enfermedad ocupacional. El bienestar animal y el binomio estrés/sufrimiento. Así. Generalidades En 1775 Percivall Pott. los denominados ratones transgénicos y ratones knockout. y especialmente en el ámbito de la Oncología. Mus musculus. Danio rerio. que estableciese de una manera concluyente la relación causa-efecto entre el supuesto carcinógeno y el desarrollo de tumores. Repitieron la aplicación cada dos o tres días durante tres meses. En los últimos años. monos. describía la elevada incidencia de cáncer de escroto entre los deshollinadores ingleses. herramienta esencial de los genetistas del siglo veinte. Varias especies animales han prestado servicios de valor incalculable a la biomedicina: la mosca de la fruta. 7 Disección de una rata Objetivo El conocimiento de la rata como modelo experimental. el minimalista nemátodo Caenorhabditis elegans. Drosophila melanogaster. Este ejemplo histórico ilustra la forma en que los modelos animales complementan. conejos. mediante la familiarización con la anatomía macroscópica de sus sistemas y órganos más importantes. algunos autores señalaron que los distintos hábitos higiénicos en las distintas regiones geográficas podrían estar relacionados con la distinta susceptibilidad a esta enfermedad: los deshollinadores ingleses se bañaban con una frecuencia considerablemente menor. Katsusaburo Yamagiwa. pollos … Y aunque el animal de laboratorio más popular de la historia sea la recién fallecida oveja Dolly. de tal manera que su piel estaba casi permanentemente en contacto con el hollín desprendido durante su jornada laboral. el pequeño pez cebra. Muchos laboratorios utilizan animales en experimentos como la evaluación de la toxicidad. Al cabo de un año. Así. cobayas. Yamagiwa. la . nos han proporcionado una nueva vía de aproximación al conocimiento de las bases moleculares subyacentes al desarrollo de múltiples enfermedades humanas. Esta hipótesis requería una demostración experimental. un médico japonés que había estudiado con Rudolf Virchow. estas observaciones apuntaban a la exposición al hollín como agente desencadenante de este tipo concreto de tumores. dos tipos de modelos animales derivados de la manipulación genética de ratones. animal predilecto de los fisiólogos de todo el mundo. siete de los animales tratados habían desarrollado carcinomas invasivos. la rata. La rata blanca y el ratón blanco son los animales más comúnmente usados como mamíferos de laboratorio. proporcionó esa demostración experimental. de una forma insustituible. Yamagiwa. el protagonista indiscutible de la investigación biomédica moderna es el ratón. Un siglo y medio más tarde. así como adquirir el adiestramiento en su manejo para ser utilizada posteriormente en otras prácticas. este primer modelo animal de la historia de la investigación oncológica fue presentado a la Sociedad de Medicina de Tokio en 1915 por el Dr. perros. la teratogenicidad.PRACTICA NO. son conceptos muy complejos y difíciles de definir y evaluar. un cirujano londinense. las aproximaciones descriptivas en la investigación biomédica. junto con su técnico Koichi Ichikawa. con un algodón empapado en Éter. En cualquier debate ético la reducción del número de experimentos con animales y los posibles métodos alternativos deben tenerse en cuenta. 2. desde la altura del labio inferior hasta los orificios genitales. Una vez anestesiada. Sujétese en posición extendida mediante cinta adhesiva en las extremidades. . A continuación. A cualquier nivel debemos prestar atención a la evaluación de los experimentos con el objetivo de buscar un balance entre el estrés/sufrimiento y la utilidad de cada experiencia. Algodón Rollo de Servilletas Jabón liquido antibacterial Desinfectante Lysol en atomizador o spray Cloro (1 por todo el grupo) Procedimiento: Disección de Rata 1. con la parte ventral hacia arriba. la morbilidad. con cuidado de no dañar los nervios y músculos de la zona axilar y retirarla hacia los lados. Material y equipo Guantes de carnaza o gamuza Cajas para transporte. sin tener una idea clara de los límites ni ver a los animales de experimentación como entes con valor intrínseco y sensibles al dolor y al sufrimiento. de diferentes productos en fase de desarrollo. Estudian la fisiología animal. y se alejaría o acercaría en función de su estado.irritabilidad. Material que debe traer el alumno Guantes de latex Cinta adhesiva (Masking tape) 1 Vaso de precipitado de 50 ml. Para facilitar la observación del funcionamiento de determinados órganos. levantamos la piel mediante pinzamiento y se hace una incisión en la línea media. Material de disección. la rata deberá mantenerse viva. Determínese el sexo externamente. por lo que habría que vigilar constantemente que no se despierte ni deje de respirar. Anestesiar al animal en una campana de cristal mediante un algodón empapado en Éter o cloroformo. Bandejas de disección. Parte Experimental Material Biológico Ratones Ratas Wistar machos y hembras. la carcinogenicidad. para ello se aplicara un vaso de precipitados. sin tomar en cuenta su bienestar. a través de la piel de la superficie ventral. etc. la mortalidad. se procede a la fijación de la rata sobre la tabla de disección. Separar la piel de la capa muscular con los dedos. al hocico de la rata. 3. Una vez separado el músculo a ambos lados de la incisión aparecen todas las vísceras abdominales: a. Aparato Urigenital (Fig. el yeyuno y el íleon. Se corta el esófago y el recto. a. los uréteres y la vejiga urinaria. detrás de la vejiga urinaria. donde pueden verse los riñones. cerca de los ovarios y se siguen hasta las dos ramas del útero que acaba en la vagina. tiene forma de numerosas masas tisulares diseminadas en el mesenterio del intestino delgado. . se encontrarán los ovarios cerca de los riñones despegando con cuidado la grasa. identificando el ciego (saco muy voluminoso). Por último aparecen la uretra y el pene. 2. 3. 1. con forma de hoja lobulada y las glándulas prostáticas. 2. como órganos del aparato reproductor masculino. las vesículas seminales. En el macho pueden encontrarse los testículos en el saco escrotal.Disección abdominal del aparato digestivo. observándose sucesivamente el duodeno (localícese el colédoco). Se rompe el saco y sacando el testículo se puede observar el epidídimo. A lo largo de todo el abdomen se realiza una incisión en la línea alba del plano muscular. 2. También se observan los oviductos. Una vez extraídos los órganos digestivos queda expuesta la pared posterior de la cavidad abdominal. Estómago.2) 1. e. d. Extirpar un riñón y mediante corte longitudinal observar las distintas zonas (corteza. c. De la misma forma se sigue al intestino grueso. b. las tijeras deben mantenerse horizontalmente y con la punta roma hacia el interior del abdomen. que desemboca en el ano. En primer lugar se sigue el intestino delgado. desgarrando suavemente el mesenterio. Bazo. Si la rata es hembra. Paquete intestinal cubierto de masas de grasa que deben ser separadas. muy cortos. que tiene forma de lengüeta. Páncreas. Para no dañar los órganos. (Fig.1) 1. médula y pelvis). Hígado con varios lóbulos. Junto al riñón aparecen las cápsulas suprarrenales. el cólon (con estriaciones) y el recto. vasos deferentes y cordón espermático. Moviendo este paquete hacia la izquierda se podrán identificar todas las partes del intestino. la fúndica y la pilórica. Identifíquese la desembocadura de las vías biliares en el intestino delgado (conducto colédoco) y la vena porta-hepática. b. en donde se diferencian la zona cardial. También se pueden identificar. Para ello se ha de ligar la vena porta-hepática y las arterias celíaca y mesentérica anterior. 2. Separar por simple tracción una de ellas y cortarla transversalmente para observar la corteza y la médula adrenal. que es difuso y de color rosado. Posteriormente se procede a la extracción de todo el tracto digestivo. También se pueden ver.5) 1. la arteria pulmonar. y a continuación la carótida y subclavia izquierdas. Manteniéndose el escalpelo al mismo nivel que .4) 1. hasta el nivel de las extremidades anteriores. Después de abrir la cavidad torácica. se introducen las tijeras directamente en la línea media. las venas pulmonares. 2. el tronco braquioencefálico. Disección del Cerebro (Fig. entre los pabellones auditivos. 2. Puede observarse el timo. hasta el hocico y hacia detrás. A continuación. al entrar el aire en la cavidad pleural. podría suspenderse la anestesia en caso de trabajar con el animal vivo. saliendo del ventrículo derecho. que se dividirá más arriba en carótida y subclavia derechas. desplazar el corazón hacia un lado para identificar los siguientes vasos: aorta (cayado). Se pueden observar el corazón y los pulmones por transparencia a través del diafragma pinzando el cartílago (apéndice) xifoides y levantándolo. Manteniéndose a la rata con la cara dorsal hacia arriba. A continuación se corta por la línea media del músculo (esternohioideo) y se separa hacia los lados. 4. A la altura a la aurícula derecha hay que observar las venas cavas Disección del cuello (Fig. formado por una masa blanquecina que tapa parcialmente el corazón. 2. en primer lugar. y se corta por el centro del esternón en dirección hacia la cabeza. Después de extraer el timo y separar la grasa que rodea a los grandes vasos. Junto a la carótida puede identificarse el nervio vago. de donde salen. por lo tanto. La parte libre de la piel ayuda a sujetarla bien. la glándula tiroides y vasos sanguíneos: la arteria carótida común y la vena yugular interna. 3. que rápidamente se bifurca en las arterias pulmonares derecha e izquierda y llegando a la aurícula izquierda. el pulmón se retrae separándose del diafragma. 2. Se continúa la incisión hacia delante. los pulmones ya no pueden funcionar. Antes de abrir la capa muscular.3) 1. 2. Podrá observarse entonces la tráquea. y los pulmones colapsados.Disección del torax (Fig. Haciendo una incisión en la pared torácica se observa cómo. 5. se hace una pequeña incisión con el escalpelo en la piel. Se estira lateralmente la piel y se coge la cabeza de la rata con los dedos pulgar y medio. en el extremo inferior de la caja torácica. identificar en esta región del cuello los nódulos linfáticos y las glándulas salivares. Esto sucede al desaparecer la presión negativa interpleural. ya que cualquier desviación causará o bien la punción del cerebro o bien el fracaso en la perforación del cráneo. Es muy importante mantener el escalpelo en posición horizontal. aparato respiratorio . Con el escalpelo ir sacando el techo del cráneo hasta que quede al descubierto: bulbo olfatorio. hemisferios cerebrales y la mayor parte del cerebelo.la parte posterior del cráneo se perfora el hueso interparietal. Observaciones Conclusiones Cuestionario Cuáles son los parámetros fisiológicos que se miden en cada sistema de la rata para comparar con el funcionamiento humano. 1. 2. La presión ejercida sobre los instrumentos puede ser controlada en todo momento. aparato circulatorio 3. sistema nervioso central 2. harcourt mosby. Overall (2002). Strategies for MMP inhibition in cancer: innovations for the post-trial era. 3: 509-519. . Mex.4. Bertram g. José Orteriza Fdz. Protease degradomics: a new challenge for proteomics. manual moderno 6ta edición. M. ed. y C. Cancer 2: 657-672. aparato genitourinario 6. y C. Arthur Guyton. Cell. López-Otín. Nature Rev. C. 1990 Farmacología básica y clínica. C. López-Otín (2002). 1979. Overall. Fisiología humana.. Farmacología integrada. page curtis. Textos Universitarios . aparato digestivo Bibliografía Manejo de animales. sistema endocrino 5. ed. Mol. Biol. ed interamericana. Nature Rev. M. Katzung.
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