Informe de Laboratorio BIOQUIMICA

May 14, 2018 | Author: luis leon | Category: Lipoprotein, Cholesterol, Creatinine, Low Density Lipoprotein, Chemicals


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Informe de laboratorio #4DETERMINACIÓN DE COLESTEROL TOTAL Y LDL MARCO TEÓRICO Colesterol y lipoproteínas El contenido aproximado de colesterol en cada familia de lipoproteínas es (en % por unidad de peso): 1% en los quilomicrones, 18% en las VLDL, 50% en las LDL y 23% en las HDL. Dado que cada familia posee distinta actividad biológica, el significado clínico de un aumento de colesterol depende de la o las lipoproteínas que se encuentran en exceso. Por otra parte, los mecanismos reguladores de los niveles plasmáticos de lipoproteínas son muy complejos y pueden ser afectados por múltiples factores (genéticos, ambientales, fisiológicos o patológicos), siendo posible encontrar valores de colesterol total cercanos al rango normal acompañados de alteraciones en las fracciones lipoproteicas. Las HDL y las LDL han sido las más estudiadas por su importante actividad biológica: - las LDL, producto del metabolismo de las VLDL en plasma, son las encargadas del transporte del colesterol exógeno (y en mucho menos proporción, endógeno) hacia el interior de las células; - las HDL, sintetizadas en el hígado, remueven el colesterol no utilizado por las células (dentro de ciertos límites de concentración), transportándolo hacia el hígado para su degradación. Diversos estudios epidemiológicos han confirmado que el exceso de colesterol de LDL con respecto a un valor crítico (1,9 g/l) debe ser considerado como factor de riesgo para el desarrollo de enfermedad cardíaca coronaria, considerando que el efecto protector de las HDL sólo parece tener relevancia dentro de cierto rango de concentraciones de colesterol circulante. Tales hallazgos permiten deducir que los valores aislados de colesterol de HDL o de LDL no pueden tomarse como índices predictivos de riesgo, sino que es necesario conformar un perfil lipídico con los valores de colesterol total, colesterol de HDL y colesterol de LDL. FUNDAMENTOS Las lipoproteínas de baja densidad (LDL o β-lipoproteínas) se separan del suero precipitándolas selectivamente mediante el agregado de polímeros de alto peso molecular. Luego de centrifugar, en el sobrenadante quedan las demás lipoproteínas (HDL y VLDL); el colesterol ligado a las mismas se determina empleando el sistema enzimático Colesterol oxidasa/Peroxidasa con colorimetría según Trinder (Fenol/4-AF). Por diferencia entre el colesterol total y el determinado en el sobrenadante, se obtiene el colesterol unido a las LDL MATERIALES • Muestra de sangre • Tubo de tapa lila • Reactivos • Cubetas • Micropipetas • Centrífuga • Espectrofotómetro • Reloj PROCEDIMIENTO 1. Extraer una muestra de sangre del paciente con el tubo lila. Centrifugarlo por 10 minutos. 2. En tres tubos o cubetas espectrofotométricas marcadas B (Blanco), S (Standard) y D (Desconocido) colocar: 3. Mezclar y esperar 10 a 15 minutos en temperatura ambiente. 4. Medir la absorbancia de los tres tubos en 500 nm de longitud de onda. 5. Anotar y calcular los resultados. RESULTADO Tubo 1: 0.000 Tubo 2: 0.013 Tubo 3: 0.010 F = 200 / 0.013 F = 15384 15384 * 0.010 = 153, 84 Resultado es del Colesterol Total es 153, 84% CÁLCULOS DE LOS RESULTADOS PARA DETERMINAR LDL LDL = CT – T/5 – cHDL Para calcular el LDL, según la fórmula de Friedewald, se necesita las cantidades del Colesterol Total (CT), menos los Triglicéridos divido para 5 (T/5), menos colesterol de las HDL (cHDL). LDL = 153.84 – 88.8/5 – 45 LDL = 153.84 – 17.76 - 45 LDL = 91,08 El resultado de LDL es 91,08% CONCLUSIÓN Para obtener este resultados se realizaron dos prácticas, la primera donde se obtuvo los Triglicéridos y la de esta clase las del Colesterol Total y las HDL. El HDL se encargó otro grupo y confiamos que los resultados hayan dado normal. Como podemos ver para determinar la LDL es necesario conformar un perfil lipídico con los valores de colesterol total, colesterol de HDL y triglicéridos. Informe de laboratorio #3 DETERMINACIÓN DE TRIGLICÉRIDOS Marco Teórico Investigar sobre Triglicéridos Fundamentos del método El esquema de la reacción es el siguiente: Materiales • Muestra de sangre • Tubo de tapa roja • Reactivos • Cubetas • Micropipetas • Centrífuga • Espectrofotómetro • Reloj Procedimiento 1. Extra una muestra de sangre del paciente con el tubo rojo. Centrifugarlo por 10 minutos. 2. En tres tubos o cubetas espectrofotométricas marcadas B (Blanco), S (Standard) y D (Desconocido) colocar: 3. Mezclar y esperar 10 a 15 minutos en temperatura ambiente. 4. Medir la absorbancia de los tres tubos en 500 nm de longitud de onda. 5. Anotar y calcular los resultados. Valores de referencia De 10 a 160 mg% Resultado Tubo 1: 0.000 Tubo 2: 0.045 Tubo 3: 0.020 F = 200 / 0.045 F = 4444 4444 * 0.020 = 88.8 Resultado es 88.8 mg% Informe de laboratorio #5 DETERMINACIÓN DE PROTEÍNAS TOTALES, ALBÚMINA Y GLOBULINA PROTEÍNAS Las proteínas son compuestos orgánicos macromoleculares, ampliamente distribuidos en el organismo y esenciales para la vida. Actúan como elementos estructurales y de transporte y aparecen bajo la forma de enzimas, hormonas, anticuerpos, factores de coagulación, etc. La proteína más abundante en plasma es la albúmina. Una de sus funciones más importantes es la de permitir el transporte de ácidos grasos, hormonas esteroides, bilirrubina, catecolaminas, que en forma libre son insolubles en medio acuoso. La concentración de albúmina en plasma influye notablemente en el mantenimiento de la presión coloidosmótica, lo que estaría relacionado con su relativamente bajo peso molecular y su gran carga neta. En condiciones patológicas como pérdidas renales, desnutrición, infecciones prolongadas, etc., suelen presentarse hipoproteinemias, mientras que en otras como mieloma múltiple, endocarditis bacteriana y hemoconcentraciones de diversos orígenes, se observan hiperproteinemias. En general, ambas situaciones se ven acompañadas también por hipoalbuminemias. Los aumentos anormales de albúmina son ocasionales y se relacionan casi siempre con deshidratación que produce el consecuente aumento en el contenido proteico del plasma. Fuente: Mundo Bioanálisis 2010 http://www.mundobioanalisis.com/fabricante/wiener/electrolitos/descarga/1690004.pdf Materiales • Muestra de sangre • Tubo tapa lila • Reactivos: Biuret y Albúmina • Cubetas • Micropipetas • Centrífuga • Espectrofotómetro • Reloj Procedimiento 1. Extraer una muestra de sangre del paciente con el tubo lila. Centrifugarlo por 10 minutos. 2. En tres tubos de ensayo, marcados B (Blanco), S (Standard) y D (Desconocido) colocar: Proteínas Totales / Biuret B S D Estándar 50 ul Suero/Plasma 50 ul Reactivo 3,5 ml 3,5 ml 3,5 ml EDTA/Cu 3. El reactivo de viuret tiene que ser llevado a la incubadora a 37ºC por 10 minutos. 4. Colocar en otros tres tubos más: Albúmina B S D Estándar 10 ul Suero/Plasma 10 ul Reactivo 3,5 ml 3,5 ml 3,5 ml 5. Medir la absorbancia de los tres tubos en 540nm el de Biuret y 625nm el de Albúmina. 6. Anota y calcular los resultados y el Índice de Hoffman. Resultados Absorbancia albúmina: BLANCO ESTÁNDAR MUESTRA 0,000nm 0,0572nm 0,635nm Factor albúmina: F= 2,7 g/dl / 0,572nm = 4,7202797 4,7202797 g/dl * 0,635nm = 2,9973776 Resultado de Albúmina 2,99 g/dl Absorbancia Biuret: BLANCO ESTÁNDAR MUESTRA 0,000nm 0,0210nm 0,255nm Factor Biuret: F= 4,9 g/dl / 0,210nm = 23.33 23.33 * 0,255nm = 5,95 Resultado de Proteínas Totales 5,95 g/dl Globulina: Proteínas totales - Albúmina = Globulina 5,95 - 2,9973776 = 2.9526224 Resultado de Globulina 2.95 g/dl Índice de Hoffman: Albúmina/Globulina 2,9973776 / 2,9526224 = 1.0135 Índice de Hoffman 1.01 Informe de Laboratorio #6 DETERMINACIÓN DE GPT Y GOT MARCO TEÓRICO Transaminasas Las transaminasas GOT y GPT son enzimas ampliamente difundidas en el organismo con elevada concentración en corazón, hígado, músculo esquelético, riñón y eritrocitos. La actividad sérica en condiciones normales es baja o nula. Un daño o enfermedad en cualquiera de estos tejidos conduce a un aumento en los niveles séricos. Así, luego de un infarto de miocardio se produce en suero un marcado aumento de la actividad de GOT (abundante en músculo cardíaco). En hepatitis virales y otras formas de enfermedad hepática que involucren necrosis tisular, predominará la actividad sérica de GPT (abundante en tejido hepático). Una elevada actividad de transaminasas puede detectarse también en traumas accidentales o quirúrgicos y en distrofias musculares o miositis.1 MATERIALES • Baño maría a 37ºC • Agua destilada • Pipeta automática, de ul • Pipeta de 1ml • Muestra (sangre) • Espectrofotómetro • Tubos de ensayo • Cubetas REACTIVOS • Sustrato GOT • Sustrato GPT • Reactivo 2,4-DNFH • Diluyente para Enzimas concentrado PROCEDIMIENTO 1. Preparar el diluyente para enzimas en un litro de agua destilada. 2. Centrifugar la muestra de sangre a 3000 rpm por 5 minutos. 3. Calibrar el espectrofotómetro con agua destilada. 4. En dos tubos marcados B (Blanco) y D (Desconocido), colocar: 5. Mezclar por inversión y retirar del baño. 6. Después de 2 minutos leer la densidad óptica en espectrofotómetro a 505 nm. RESULTADOS GPT Blanco Muestra 0,000nm 0,061nm El valor se lo obtuvo comparando la absorbancia del tubo prueba con la tabla proporcionada por el laboratorio. El valor de GPT de la muestra de suero sanguíneo es 9 UI/L GOT Blanco Muestra 0,000nm 0,034nm El valor se lo obtuvo comparando la absorbancia del tubo prueba con la tabla proporcionada por el laboratorio. El valor de GOT de la muestra de suero sanguíneo es 5 UI/L Informe de Laboratorio #7 DETERMINACIÓN DE UREA MARCO TEÓRICO Urea La urea constituye la fracción de nitrógeno no proteico más importante en la mayoría de los líquidos biológicos. En el hombre es el principal producto final del metabolismo proteico. Se produce en el hígado y es excretada por la orina a través de los riñones. Una elevación de la concentración sérica de urea, se interpreta generalmente como una posible disfunción renal. Sin embargo, no debe dejarse de lado el hecho de que los valores séricos de urea se encuentran íntimamente relacionados con la dieta y el metabolismo proteico, por lo que cualquier alteración en estas variables se traducirá en un cambio de la concentración de urea en suero. FUNDAMENTOS DEL MÉTODO La ureasa descompone específicamente la urea produciendo dióxido de carbono y amoníaco. Este reacciona en medio alcalino con salicilato e hipoclorito para dar indofenol color verde. MATERIALES • Pipeta automática, de ul • Pipeta de 1ml • Muestra (sangre) • Espectrofotómetro • Tubos de ensayo • Cubetas • Reactivo de trabajo • Standar • Tubo tapa lila PROCEDIMIENTO 1. Preparar el diluyente para enzimas en un litro de agua destilada. 2. Centrifugar la muestra de sangre a 3000 rpm por 5 minutos. 3. En 3 tubos marcados B (Blanco), S (Estándar), D (Desconocido), colocar: B S D R. Trabajo 0.5 ml 0.5 ml 0.5 ml Estándar - 5 ul - Muestra - - 5 ul Incubar 10 minutos a temperatura ambiente R. Trabajo 0.5 ml 0.5 ml 0.5 ml Incubar 10 minutos a temperatura ambiente 4. Leer la densidad óptica en espectrofotómetro a 580 nm. 5. Calcular el resultado. NORMALIDAD 20 a 50 mg% RESULTADOS Densidad óptica Blanco Estándar Muestra 0,000 nm 0,149 nm 0,123 nm F = 50 / 0,149 nm F = 335.57 F = 335.57 * 0,123 nm Resultado de Urea 41,27 mg% Informe de Laboratorio #8 DETERMINACIÓN DE CREATININA MARCO TEÓRICO Creatinina La creatinina es una molécula de deshecho que se genera a partir del metabolismo muscular. La creatinina proviene de la creatina, una molécula muy importante para la producción de energía muscular. Aproximadamente el 2% de la creatina del cuerpo se convierte en creatinina cada día. La creatinina se transporta desde los músculos por medio de la sangre hacia el riñón. Los riñones filtran la mayoría de la creatinina y la eliminan en la orina. Aunque es una sustancia de deshecho, la creatinina es una prueba diagnóstica esencial, ya que se ha observado que su concentración en sangre indica con bastante fiabilidad el estado de la función renal. Si los riñones no funcionan bien, no eliminan bien la creatinina y por lo tanto ésta se acumula en la sangre. Por esto la creatinina puede avisar de una posible disfunción o insuficiencia renal, incluso antes de que se presenten síntomas. Por eso la creatinina suele figurar en los análisis de sangre que se realizan comúnmente. MATERIALES • Pipeta automática, de ul • Pipeta de 1ml • Muestra (sangre) • Espectrofotómetro • Tubos de ensayo • Cubetas de 1cc • Tubo tapa lila REACTIVOS • Reactivo Tapa Blanca: solución de ácido pícrico • Reactivo Tapa Azul: solución de hidróxido • Standard: solución de creatinina 2 mg/dl. PROCEDIMIENTO 1. Preparar el reactivo de trabajo, con la mezcla de los reactivos de los frascos de tapa blanca y azul 2. Centrifugar la muestra de sangre a 3000 rpm por 5 minutos. 4. En tres cubetas de 1cc marcadas B (Blanco), S (Estándar) y D (Desconocido), colocar: B S D R. Trabajo 0.5 ml 0.5 ml 0.5 ml Estándar - 100 ul - Muestra - - 100 ul 5. Leer la densidad óptica en espectrofotómetro a 492 nm. 6. Leer la absorbancia después de 30 s de haber puesto la cubeta, esperar a los 90 s y tomar anotar una nueva medida. 7. Calcular el resultado. NORMALIDAD Valores normales de Creatinina: 0,7 – 1,4 mg/dl Varones 0,6 – 1,1 mg/dl Mujeres Los adultos con mucha masa muscular pueden tener más creatinina en la sangre que la población normal. Las personas ancianas, por otro lado, pueden tener menos creatinina en la sangre de lo normal. RESULTADOS Absorbancia Blanco 0,000 nm Estándar Muestra 30 s 0,608nm 0,527nm 90 s 0,623nm 0,532nm 0,608 – 0,623 = 0, 015 0,527 – 0,532 = 0,005 0,005 / 0,015 = 0,333 * 2 = 0,666 Normal Resultado de Creatinina 0,66 mg% CONCLUSIÓN Realizamos una determinación de creatinina cinética, tomando la cantidad de reacción a los 30s y a los 90s. Se puede notar, mientras se esperar los segundos, el incremento de la medida de absorbancia en el espectrofotómetro. Por cual trabajamos junto al espectrofotómetro para tener una medida más exacta y, al colocar el reactivo en la cubeta inmediatamente iniciar la medición de la absorbancia. El color del reactivo fue azul, una vez actuado sobre la muestra y estándar resultó amarillo. Para obtener el resultado se restó la absorbancia de los 90s menos la de los 30s, una vez obtenido el resultado se dividió la muestra para el estándar y este resultado se multiplicó para la cantidad conocida del reactivo estándar: 2 mg/dl. Así obteniendo el resultado de 0,66 mg/dl, el cual entra en el rango de la normalidad. nforme de Laboratorio #10 DETERMINACIÓN DE FOSFATASA ALCALINA MARCO TEÓRICO Fosfatasa Alcalina La Fosfatasa Alcalina (FA) es una enzima que se encuentra en casi todos los tejidos del cuerpo, pero es mayor su presencia en el hígado, las vías biliares y los huesos. La fosfatasa alcalina tiene un gran variedad de isoenzimas con leves diferencias en su estructura, que sugieren diferentes orígenes por cada tejido (FA1 del hígado, FA2 del hueso). Estas isoenzimas pueden ser cuantificadas por separado si es necesario. Una de las mayores fuentes de fosfatasa alcalina es el hueso por ello en los niños y adolescentes con crecimiento óseo esta enzima está normalmente elevada. Se realiza en el contexto de otras pruebas hepáticas (GOT, GPT, Bilirrubina, GammaGT) y se utiliza para evaluar problemas o alteraciones del hígado. Es muy sensible, sobre todo, en problemas de obstrucción de las vías biliares. Es la enzima más sensible a los problemas hepáticos producidos tumores metastásicos. Suele asociarse a la elevación de la gamaGT, excepto que en los problemas óseos en solo se eleva la fosfatasa alcalina. FUNDAMENTO Las fosfatasas alcalinas (FAL) catalizan la hidrólisis del 4-nitrofenilfosfato (4-NFF) formando 4-nitrofenol y fosfato inorgánico, actuando el tampón alcalino como aceptor del grupo fosfato. La reacción se controla cinéticamente a 405 nm a partir de la velocidad de formación del 4-nitrofenol, proporcional a la actividad FAL presente en la muestra. MATERIALES • Pipeta automática, de ul • Muestra (sangre) • Tubo rojo, para suero sanguíneo • Espectrofotómetro • Tubos de ensayo • Cubeta de 1cc • Vacutainer, campana y aguja • Algodón y alcochol REACTIVOS • R1. FAL tampón. Cloruro de magnesio • R2. FAL sustrato. 4-NFF PROCEDIMIENTO 1. Tomar la muestra de sangre en tubo rojo 2. Preparar el Reactivo de Trabajo mezclando: 4ml de R1 y 1 ml de R2 3. Preincubar el reactivo de trabajo, muestras y controles a la temperatura de reacción. 4. Ajustar a 0 el fotómetro con agua destilada. 5. Pipetear en una cubeta: Desconocido Reactivo de trabajo 1ml Muestra 20ul 6. Mezclar suavemente por inversión. 7. Insertar la cubeta en el compartimiento a 405nm y poner el cronómetro en marcha. 8. Incubar durante 1 minuto y anotar la absorbancia inicial. 9. Repetir las lecturas exactamente a los 1,2 y 3 minutos. 10. Calcular la diferencia entre absorbancias. 11. Calcular el promedio de los resultados para obtener el cambio promedio en absorbancia por minuto (ΔA/min). NORMALIDAD 25ºC • Niños, hasta 480 U/L (8,0 µktal/L) • Adultos, hasta 180 U/L (3,0 µktal/L) 30ºC • Niños, hasta 590 U/L (9,8 µktal/L) • Adultos, hasta 220 U/L (3,7 µktal/L) 37ºC • Niños, hasta 800 U/L (13,3 µktal/L) • Adultos, hasta 270 U/L (4,5 µktal/L) RESULTADOS  Blanco 0.000  Muestra (Absorbancia Inicial, 1er min, 2do min y 3er min)  Factor 2764 Tiempo Muestra Inicial 0,224nm 1er minuto 0,228nm 2do minuto 0,225nm 3er minuto 0,226nm 0,228nm - 0,224nm= 0,004 0,228nm - 0,225nm= 0,003 0,226nm - 0,226nm= 0,001 0,004 + 0,003 + 0,001 = 0,008 / 3 = 0,0026 0,0026 * 2764 = 7,3706 U/l CONCLUSIÓN Para la determinación utilizamos tubo tapa roja para obtener suero sanguíneo debido a que si usamos el de tapa lila que contiene anticoagulante EDTA va a inhibir la actividad enzimática. Lo que se realizó fue una determinación cinética debido a medimos la diferencia de reacción enzimática de la muestra al inicio, 1er, 2do y 3er minuto. Además se la determinó a 405nm y no tuvo color. Para el resultado se calculó la diferencia entre las absorbancias y se las dividió para 3, para obtener el promedio de los minutos. Después se multiplicó para el factor que fue dado 2764. Instrucciones 1 Obtén los resultados de tu sangre de tu médico de cabecera. 2 Encuentra el nivel total de colesterol en tu informe. Para este ejemplo, usaremos un colesterol total de 215 mg/dL. 3 Encuentra el valor del colesterol HDL ("bueno") en tu prueba de sangre. Ente ejemplo, el HDL es de 55 mg/dL. 4 Divide el valor de los triglicéridos (abreviado como "Trig") del informe por 5 para obtener el nivel de lipoproteínas de muy baja densidad (VLDL). Pro ejemplo, si el valor de los triglicéridos es de 250 mg/dL, entonces el de VLDL es 50 mg/dL. 5 Resta los valores VLDL y HDL del total del colesterol para calcular el colesterol LDL ("malo"). En nuestro ejemplo, el colesterol LDL es de 110 mg/dL. 6 Navega por la página web "Cholesterol Level" (nivel de colesterol) y busca los factores de riesgo para la enfermedad coronaria y el ACV de acuerdo a tus niveles de colesterol. Por ejemplo, el nivel de colesterol LDL de 110 mg/dL es casi óptimo y no constituye un riesgo significativo. Informe de laboratorio #1 DETERMINACIÓN DE GLICEMIA ENZIMÁTICA Y GLUCOSURIA MARCO TEÓRICO Investigar: Glicemia Glucosuria DETERMINACIÓN DE GLUCEMIA ENZIMÁTICA MATERIALES • Reactivo 4 AF • Enzima GOD / POD • Estándar • Suero • Tubos de ensayo • Espectrofotómetro • Micropipetas • Cubetas espectrofotométricas PROCEDIMIENTO 1. Preparar el reactivo con 5 ul partes de: 500 p de Agua destilada, más 50 de reactivo 4 AF y 50 p de Fenol, después llenar hasta llegar a las 1000 p. Finalmente incluir 3 p de enzima GOD / POD. 500 p - Agua Destilada 50 p - 4 AF 50 p - Fenol ______ 1000 p + 3 p - GOD / POD 2. Pipetear en 3 tubos de ensayo lo siguiente: Blanco Estándar Muestra Reactivo 1 cc 1 cc 1 cc Estándar - 20 ul - Suero / Plasma - - 20 ul 3. Determinar en el espectrofotómetro, con longitud de onda: 505 nm y en 3 cubetas diferentes de 1 cm de paso de luz, los 3 tubos. 4. Determinar el factor a partir del resultado del estándar y multiplicarlo por la muestra. CÁLCULOS Y RESULTADOS Blanco – 0,000 Estándar – 0,088 Muestra (D) – 0,049 f = 100 / 0,088 f = 1136,36 Glucosa = 0,049 * 1136,36 Glucosa = 55,681 mg%8 El resultado de Glucemia es 55,68 mg% CONCLUSIÓN El resultado fue 55 mg%, esto debería representar una hipoglicemia en el paciente en caso que se haya realizado la determinación el mismo día de la extracción. Pero en realidad este resultado no muestra la glicemia real del paciente debido a que se trabajó con un plasma extraído hace 4 días atrás, y considerando que por cada hora se va el 30% de la glicemia debido a la glucólisis. GLUCOSURIA MATERIALES  Reactivo Benedict  Orina  Tubos de ensayo  Tira reactiva para orina  Baño María  Mechero  Probeta PROCEDIMIENTO 1. Pipetear en un tubo 2 cc de Reactivo de Benedict y 500 ul de orina 2. Aplicar a baño maría y esperar que cambie de color el contenido del tubo 3. Determinar el resultado a partir del color de la sustancia. 4. Insertar la tira en el recipiente con orina 5. Comparar los colores patrones de la caja de la tirilla con el color que se tornó. Observar la Glucosa y la Densidad. VALORES DE REFERENCIA La concentración normal de la orina es de 1.010 a 1.030; en orina de diabéticos es hasta 1.050 de concentración. Resultados de la reacción de Benedict de acuerdo color de la sustancia Resultado Color Cantidad Negativo Azul claro o verdoso - Trazas + Verde precipitado Menor a 100 mg% Glucosuria ++ Verde claro De 100 a 500 mg% Positivo Amarillo precipitado intenso 500 a 1000 mg% Positivo +++ Anaranjado 1400 a 2000 mg% Positivo ++++ Rojizo Mayor a 2000 mg% RESULTADO Orina Color: Amarillo intenso, de 500 a 100 mg% Tira reactiva para orina Glucosa: 100 mg/dl Densidad: 1.030
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