Hematologia Manual

MINISTERIO DE SALUD PÚBLICAHOSPITAL GENERAL DOCENTE DE CALDERÓN “HEMATOLOGÍA MANUAL” PROCESO: APOYO Y DIAGNÓSTICO TERAPÉUTICO SUBPROCESO: LABORATORIO CLINICO Elaborado por: Revisado por: Aprobado por: (f) (f) (f) Nombre: Nombre: Nombre: Cargo: Cargo: Cargo: FECHA: FECHA: FECHA: RESPONSABLES: Responsable de la Supervisión: Líder del Laboratorio. DEFINICIONES: N/A HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . Bio-analistas. ALCANCE: Este procedimiento cubre la realización. Tecnólogos Médicos) que cubren el área de Hematología del HGDC. hospitalización y emergencia del Hospital General Docente de Calderón. Responsable del Monitoreo del Indicador: Responsable de calidad del laboratorio 4. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 1 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 1. OBJETIVO: Establecer un procedimiento adecuado para la estandarización de los pasos a seguir en la realización de las Biometrías Hemáticas de los pacientes de consulta externa. de las pruebas hematológicas que se realizan dentro de la cartera de servicios de Laboratorio Clínico del Hospital General Docente de Calderón 3. 2. validación y reporte. Licenciados en Laboratorio Clínico. Responsable de Calidad Responsable de la Aplicación: Al personal de Laboratorio clínico (Bioquímicos. revisión. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 1 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 5. DESCRIPCIÓN: 5.1 DIAGRAMA DEL PROCEDIMIENTO PRE-ANALITICA MUESTRA ACEPTADA SI NO RECHAZADO LISTA DE TRABAJO MINDRAY 6800 MODO AL-WB MODO OV INGRESO CODIGO MANUAL CARGA RACK RESULTADOS DENTRO DE VALOR DE REFERENCIA Y SI CONFIRMADOS NO CONFIRMACION MANUAL VALIDACION ENTERPRISE HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . Regleta para medir hematocrito 5.2.1. 2..Plastilina . ofrece una información general de la sangre y sus componentes.2.1.2. puede mostrar alteraciones o enfermedades hematológicas (propias de la sangre) o bien una alteración indirecta o reflejo de una enfermedad de algún otro órgano (no hematológicas).3Equipos y reactivos: .1Propósito del examen: El hematocrito se utiliza para detectar. con plastilina.. se lleva a cabo una regla de tres. diagnosticar o monitorizar una serie de trastornos y enfermedades que repercuten sobre la proporción que los eritrocitos representan respecto al volumen sanguíneo. 5.4 Procedimiento: 1. con el extremo ocluido adherido al reborde externo de la plataforma.1 DETERMINACION DE HEMATOCRITO 5..1.Centrifugar por 3 minutos entre 10 000 y 12 000 rpm 5. Debe llenarse aproximadamente 70-80% del capilar. midiendo el volumen total de plasma y eritrocitos o por medio de la regleta.Capilares con heparina . también denominada hemograma es un examen de laboratorio que examina las células que componen la sangre.1.2. HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .2. 5. 4..2 DESARROLLO DEL PROCEDIMIENTO La biometría hemática.Colocar el capilar sobre la plataforma del cabezal de la micro-centrifuga. 5.Micro-centrífuga . sin dejar burbujas de aire.2 Muestra primaria: sangre total con EDTA.Ocluir (tapar) el extremo del capilar que no estuvo en contacto con la sangre. 3. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 1 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 5.-Tomar la muestra en capilares rojos heparinizados .Para leer el resultado. 1.42% Recién nacidos 50% ..2. se sostiene el tubo frente a la escala de manera que el fondo de la columna de eritrocitos.2.50% Mujeres 38% .44% Lactantes (3 meses) 37% . 8.60% 5.El tubo debe de encontrarse completamente en posición vertical.2. 5. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 2 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 6.Para la regleta.Desplazar el tubo a través de la escala hasta que la línea marcada quede al nivel del tope del plasma..1. 9.2 CONTAJE DE GLOBULOS BLANCOS 5.2.. quede exactamente al mismo nivel de la línea horizontal correspondiente al cero.5 Valores de referencia método manual: Hombres 40% . 7. Propósito del examen: La prueba de conteo de glóbulos blancos (GB) mide dos cosas: HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .La línea que pase al nivel del tope de la columna de eritrocitos indicara la fracción del volumen de estos.44% Niños (5 años) 38% .5 Interferencia y limitaciones del método: Muestras coaguladas o en cantidad insuficiente 5.1..2. 5 (a la mitad del tallo). Pipeta de glóbulos blancos (De Thomas) o pipeta automática (de 0 a 100 mL).Los glóbulos blancos (GB) son un componente principal del sistema inmunológico del cuerpo. al colocarse sobre las barras elevadas de la lámina forma una cámara entre el cubreobjetos y la superficie cuadriculada. La altura entre el cubreobjetos y la lámina portaobjetos es de 0. o Una laminilla cubreobjetos ópticamente plana. . eosinófilos y basófilos) y no granulocitos (linfocitos y monocitos). Cada uno de los cuales mide 1 mm2 de superficie.05 mm de lado (0. El cuadrado grande central se divide en 25 cuadrados pequeños y cada uno de ellos en 16 cuadrados.2.2. .0025 mm2 de superficie). Presenta cerca del extremo superior una marca de 11. luego sigue el extremo más largo de la pipeta (tallo) que está dividida en 10 partes. inmediatamente continúa una dilatación (bulbo) que contiene una perla que funciona como mezcladora.2. y cada cuadrado mide 0. La cuenta diferencial mide los porcentajes de cada tipo de leucocito. Se le acopla a su extremo superior 1 tubo de goma y una bombilla para aspirar. que. leucemia. manteniéndolos visibles.. Cada cuadrado pequeño mide 0. 2.3 Equipos y Materiales . FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 3 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 1. Hemocitómetro (Cámara de Neubauer) que consta de los siguientes elementos: o Una lámina portaobjeto gruesa.El número total de glóbulos blancos (leucocitos) y la cuenta diferencial. Los glóbulos blancos están compuestos de granulocitos (neutrófilos. linfoma y trastornos de la médula ósea.2. Piano HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . . Microscopio. Diluyente de glóbulos blancos . Solución de Turk al 1%.1 mm. . que se subdivide a su vez en 16 cuadrados medianos. Cada cuadrícula mide 3 mm de lado y se divide en 9 cuadrados grandes. en el centro se hallan dos superficies cuadriculadas iguales separadas del resto de la lámina por surcos y dos barras transversales algo más elevadas. El recuento del número de leucocitos o glóbulos blancos se expresa por mm3 (milímetro cúbico) 5. La sangre anticoagulada se deposita en un líquido que permite evidenciar los leucocitos.2 mm de lado (0.2 Muestra primaria: sangre total con EDTA 5. El conteo de glóbulos blancos puede indicar en enfermedades infecciosas e inflamatorias. con 2 marcas: 1 (parte final del bulbo) y 0.. mientras que los eritrocitos son hemolizados.04 mm2 de superficie). Introducir la pipeta en el tubo que contenga solución de Turk y absorber hasta la marca de 11 (no debe haber burbujas). . 3. o de lo contrario.1 Resultados: Nº de leucocitos x mm3 = leucocitos contados en 4 campos altura x dilución x área Reemplazando = leucocitos contados en 4 campos 1/10 x 1/20 x 4 = leucocitos contados en 4 campos 4/200 HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . . . Además de los leucocitos contados dentro de cada uno de los cuadrantes. Monte la laminilla de vidrio en la cámara para recuento que debe estar limpia y seca. La lectura se realiza en los campos 1. . . se deben contar todos los leucocitos que se encuentren adheridos en la línea horizontal superior y vertical exterior. se toma 20 mL (0. adheridos a la línea horizontal inferior y vertical interior 5. todos los leucocitos. Agitar la pipeta y descartar las cuatro primeras gotas para luego colocar una gota pequeña de esta solución en la cámara.4. Tapar ambos extremos y proceder a mezclar manualmente o en un rotador automático por 2 ó 3 minutos. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 4 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 5.5 y a limpiar la punta con papel absorbente.4 Procedimiento: .2. Cuando se usa la pipeta automática. .2. Enfocar con objetivo de 10x y contar en 4 cuadrados grandes angulares.2. 7 y 9 como está indicado en la figura. Deje reposar por espacio de 3 minutos para que las células se sedimenten.02 mL) de sangre total con anticoagulante o sangre capilar con anticoagulante y se diluye en un tubo que contenga 380 mL de solución de Turk (aquí tenemos una dilución 1:20).2. . Una vez obtenida la sangre con anticoagulante se procede a aspirar la sangre con la pipeta de glóbulos blancos hasta la marca de 0. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 5 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: = X/1 = Nº leucocitos contados x 50 4/200 5. por lo tanto pueden observarse al realizar el recuento leucocitario y confundirse con los leucocitos. Muestra coagulada o cantidad insuficiente 5.5 Interferencia y limitaciones del método.6 Valores de referencia: Adultos 4000 .7 Corrección de valores para restar eritrocitos nucleados: Los eritroblastos no se destruyen (lisis) en el líquido de dilución.2.2. En tales unidades el cálculo correspondiente al ejemplo que se ha dado sería: 50 x 16 000 = 5300 / mm3 100 + 50 Recuento corregido de glóbulos blancos o leucocitos = 16 000 . de tal manera que se debe emplear la siguiente fórmula: Cálculo: La concentración del número de normoblastos (por litro) es: Número de eritroblastos contados x concentración o número de leucocitos 100 + Nº eritroblastos contados Ejemplo: Si se cuentan 50 eritroblastos y la concentración del número de leucocitos es 16000/mm3 .2.10000 leucocitos / mm3 Niños 4000 – 12000 leucocitos /mm3 Recién nacidos: 10000 – 20000 /mm3 5.2. En unidades tradicionales las concentraciones de eritroblastos y leucocitos se expresan por milímetro cúbico.2.5300 = 10 700 / mm3 HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .2. Plaquetas: Estudiar tanto cualitativa como cuantitativamente. vacuolizaciones.2. hipocromía. linfocitos atípicos. cuerpo y cola. eliptocitos. policromatofilia. etc).2. drepanocitos. eritrobastos.3 Materiales y equipo: .3. Se lo puede hacer en frotis o en gota gruesa.3. Microscopio con objetivo de 40x y 100 x . HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . etomatocitos.3. Visto con objetivo de inmersión. Leucocitos: Observar la madurez de los leucocitos y distinguir neutrofilia. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 6 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: 5.4 Valores de referencia . no debe existir menos de una plaqueta por campo. granulaciones tóxicas. etc. neutropenia. Aceite de inmersión. 5. Leucocitos maduros sin presencia de anormalidades . Eritrocitos: Se estudia su tamaño. forma.2 Muestra requerida: Frotis de sangre periférica coloreado con Wrigth.1 Propósito del examen: Observación detallada de todos los elementos de la sangre con el fin de evaluar la condición hematológica del paciente.3. anisocitosis. 5.5 Investigación de Hemoparásitos Consiste en el examen microscópico del frotis sanguíneo para demostrar la presencia de hemoparásitos.2. Plaquetas distribución y tamaño normal 5. macrocitos. esferocitos. 5.2.3 FROTIS SANGUÍNEO EN SANGRE PERIFERICA 5. Eritrocitos normocrómicos . color y si existen inclusiones o elementos extraños adelante (microcitos.2. esquistocitos.3. ovalocitos. Se debe considerar lo siguiente: Calidad del frotis Debe abarcar 80% de la lámina con cabeza. células diana. debiendo observarse de 3 a 10 plaquetas aproximadamente por 100 glóbulos rojos o varias plaquetas y grupos ocasionales por campo.2. mientras que las delgadas originan una distribución anormal de los elementos. Extensiones gruesas dificultan la visualización e identificación celular. poiquilocitocis. 4.1 Realización y tinción del frotis sanguíneo La práctica del frotis sanguíneo. 5.4. Por ejemplo: Si se tiene 60% de neutrófilos segmentados y el recuento total de leucocitos total es de 20 000.  La sangre no debe ser excesivamente revuelta.2. sobre todo nuevas.Portaobjetos de vidrios limpios y desgrasados (25 x 75 mm). es de gran importancia en hematología ya que el diagnóstico de muchas enfermedades hematológicas puede realizarse con sólo observar las características morfológicas de las células sanguíneas.Alcohol al 70%. A partir de los porcentajes puede incluso calcularse el número real de cada clase de leucocitos por mm3 de sangre (valor absoluto).4. deben ser limpiadas con algodón y alcohol al 70% para eliminar la grasa que viene adherida.4.4.1 Propósito del examen La fórmula leucocitaria tiene por objetivo determinar los porcentajes de las distintas clases de leucocitos normales y anormales en la sangre. es suficiente con 3 a 6 movimientos.2.4.3 Materiales y equipos .2. de manera que éste no debe ser excesivamente grueso ni excesivamente fino.4 FÓRMULA LEUCOCITARIA 5.4 Procedimiento 5. .2. Aceite de inmersión . conociéndose el total de leucocitos. entonces la cifra absoluta de neutrófilos segmentados sería: 60/100 x 20 000 = 12 000 (valor absoluto) 5. Piano (contador) 5. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 7 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: La gota gruesa se la realiza de la siguiente manera:  Utilizando los ángulos de la placa extensora se esparce rápidamente y se extiende uniformemente hasta formar una gota gruesa de 1cm de diámetro. Microscopio con lente 40 x y 100 x .2 Muestra requerida: Frotis coloreado con Wrigth. 5. HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .4.1 Materiales : .4.Algodón . en forma concéntrica (de adentro hacia afuera o viceversa) 5.2. también llamado extendido.2.1. Todas las láminas por usar. De preferencia realizar el homogenizado en una sola dirección.2. 2.4. El secado del frotis es a temperatura ambiente y en posición horizontal. . la extensión obtenida será gruesa y corta. si es inferior a 45º será larga y fina. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 8 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: . Así. se coloca una pequeña gota de sangre (5mL) (aprox. El grosor del frotis sanguíneo puede variar según sea el ángulo que formen entre sí ambos portaobjetos.2 Tinción con colorante Wright: El colorante de Wright va a permitir suministrar un medio para estudiar la sangre y determinar las variaciones y anormalidades de estructura. hasta que la gota de sangre quede bien extendida sobre la superficie del primer portaobjeto. Una vez extraída la sangre con cualquiera de las metodologías.4. Colocar el canto de otro portaobjeto esmerilado sobre la superficie del primer portaobjeto (en la que se encuentra la gota de sangre) formando un ángulo de 45º. Deslizar suavemente y a velocidad moderada el portaobjeto sobre el otro en sentido longitudinal. si es superior a 45º. . forma y tamaño de los eritrocitos. 3 mm de diámetro) sobre un portaobjeto a 2 cm aproximadamente de uno de los extremos. su contenido de HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . 5. 2. . presencia de plaquetas.4. . La parte ideal para visualizar células para la fórmula leucocitaria es en la parte final del cuerpo y comienzos de la cola. La información obtenida de un frotis de sangre periférica depende en gran parte de la calidad del extendido y la coloración. se revisa la calidad de la coloración. con pequeño aumento. Posteriormente se añade solución amortiguadora en partes iguales hasta obtener un brillo metálico. dejándolo por espacio de 4 minutos. la cantidad aproximada de glóbulos blancos y se escoge el sitio para iniciar el recuento. Aquí no se incluyen los elementos inmaduros de sangre roja. Luego se coloca la preparación en un soporte y se cubre con el colorante de Wright. se le dejará secar entre 5 y 10 minutos. . Solución amortiguadora (agua) . Finalmente se lava con agua corriente y se deja secar.2.3 Valores de referencia: LEUCOCITOS NIÑOS (1 A 8 AÑOS) % ADULTOS % NEUTROFILOS 20 – 40 60 – 70 SEGMENTADOS CAYADOS 0–4 2–6 LINFOCITOS 40 – 60 15 – 40 EOSINOFILOS 1-5 1–4 HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . Colorante de Wright . . Frasco gotero.4. Se coloca en el microscopio y. Si es favorable se examina con el objetivo de inmersión.2. dejando 3 minutos adicionales.1Materiales . .4. 5. . se va anotando el número de cada una de las clases de glóbulos blancos observados. 5. A medida que se va contando. .4. recorriendo la lámina de izquierda a derecha o de arriba hacia abajo hasta contar 100 leucocitos incluidos los agranulocitos y granulocitos. .Una vez obtenido el frotis sanguíneo. Se coloca una gota de aceite de inmersión y se enfoca a un aumento de 100x La forma de los glóbulos rojos se examinará detenidamente observando además del color (cantidad de hemoglobina). . Se determina luego los porcentajes de cada uno de ellos para luego comparar con los porcentajes normales. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 9 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: hemoglobina y sus propiedades de coloración. su agrupación y distribución. 6.2.5 VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN 5.1 Propósito del examen: Evaluar el número de plaquetas presentes en la sangre a través de la observación de un frotis coloreado. Se lee la columna de plasma al cabo de una hora de reposo.1 Propósito del examen: La velocidad de sedimentación mide la velocidad de sedimentación de los glóbulos rojos en el plasma.20 mm/hora 5.2 Procedimiento: El tubo debe ser llenado.2.2.3 Resultados: Medir los milímetros descendidos de glóbulos rojos mediante la columna de plasma por encima del paquete globular 5.4 Valores de referencia : 0 . sin embargo.2.5.5.5.2.2.5. 5.2 Muestra requerida: Frotis teñido con Wrigth 5.2.3 Materiales y equipos .6 CONTAJE DE PLAQUETAS (METODO INDIRECTO) 5.2. La velocidad de sedimentación es un examen hematológico que no está incluido en el desarrollo de un hemograma.6. 5. este método mide la tendencia de los eritrocitos a la sedimentación al colocar sangre anticoagulada en un tubo pequeño.6. así como en los procesos inactivos o estrictamente locales. El método de Wintrobe al igual que el método de Westerngreen. es una prueba muy importante por su gran sensibilidad. pues resulta normal en las enfermedades funcionales. Microscopio con lente de 40x y 100 x HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .2. colocado de manera vertical y encender el cronómetro con el tiempo de 1 hora 5. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 10 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: BASOFILOS 0–1 0–1 MONOCITOS 2-8 2–8 5. Porta objetos . 5.7. En el tubo que contiene las gotas de azul de creil brillante deposite 2 gotas de sangre . Piano . Aceite de inmersión 5.2. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 11 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: .2. Este colorante se aplica a una extención de sangre y a continuación se observa con el microscopio cierto número de eritrocitos.2.7. Solución de azul cresil brillante .7. Colocar la placa coloreada sobre la platina del microscopio . Microscopio 5. Calcular el número de plaquetas de la siguiente forma: o Número de plaquetas observadas x número de glóbulos rojos x 1000 ó o Promedio de plaquetas en 10 campos por 20000 5. o la proporción de glóbulos rojos que integran los reticulocitos.7 RETICULOCITOS 5. Observar con el objetivo de 40 x .2. Pipetas pasteur .3 Materiales y equipos . Mezclar sacudiendo suavemente el tubo HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . Colocar aceite de inmersión . Papel filtro .2. Con este examen se calcula el número de reticulocitos por litro de sangre. Muestra requerida: Sangre total con EDTA 5. Contar las plaquetas en 10 campos situados entre el cuerpo y la cola del frotis (los campos deben tener aproximadamente 100 globulos rojos) .5 Valores de referencia: 150000 a 450000 plaquetas x mm3 5. Tubo de ensayo pequeño . Depositar en un tubo de ensayo 2 gotas de la solución de azul de cresil brillante .6.2. Con una pipeta pasteur aspire la muestra de sangre . Observar con el objetivo de 100 x .2.6.2.4 Procedimiento .1 Propósito del examen: Los reticulocitos contienen gránulos pequeños que se pueden teñir con azul de cresil brillante.7.4 Procedimiento . Los eritrocitos se tiñen de un color azul pálido .2. Los reticulocitos son glóbulos rojos en cuyo interior se observan pequeños gránulos que se tiñen de color violeta obscuro. . el porcentaje correspondiente se calculará multiplicando n x o.5 % 6.0 VALORES DE PANICO Los siguientes valores de pánico deben ser reportados inmediatamente al servicio de origen y ser reportados en el Registro de Valores Críticos que se encuentran en la carpeta compartida del laboratorio clínico PARAMETRO VALOR DE PANICO GLOBULOS BLANCOS Menor a 2. Examine el frotis con el objetivo 100 x.5 a 2.0 10^3ul HEMATOCRITO Menor a 20% Mayor a 60% En RN mayor a 65% HEMOGLOBINA Menor a 7 g/dl Mayor a 20 g/dl En RN mayor a 24g/dl PLAQUETAS Menor a 4. 5. . Examine por lo menos 100 eritrocitos con el objetivo 100 x. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 12 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: . Observe la porción cercana al extremo de la extención. así si se han observado 500 eritrocitos en la extención sanguínea y n de ellos son reticulocitos. Aspire una gota de la mezcla .0 % Niños y adultos 0.0 a 6. Tome el tubo y agítelo de nuevo con suavidad . en consencuencia el porcentaje de reticulocitos será 25 x 0.5 Valores de referencia Recien nacidos 2. y forman una red (retículo).0 10^3ul Mayor a 37.2. .7.2= 5%. cuente cuidadosamente la cantidad total de glóbulos rojos y el número total de reticulocitos que hay entre ellos.0 10^3ul HGDC-CAL-FORM-PROC V001 . 25 son reticulocitos. en que los eritrocitos suelen estar muy bien separados. Dejar reposar 15 minutos . En el sistema tradicional la cantidad de reticulocitos se indica mediante un porcentaje. Ejemplo de 500 eritrocitos estudiados. Deposite esta gota en un portaobjetos y realice una extención . área de hematología 9. FECHA APROBACIÓN: “HEMATOLOGIA MANUAL ” VERSIÓN: PÁGINA 13 DE 19 PROCEDIMIENTO CÓDIGO: Mayor a 1000.0 CONTROL DE CAMBIOS FECHA DESCRIPCIÓN DEL SECCIÓN QUE VERSIÓN CAMBIO CAMBIA N/A Emisión inicial 1 HGDC-CAL-FORM-PROC V001 .0 INDICADORES N/A 7.0 REFERENCIAS: OPS. Manual de Técnicas básicas para un laboratorio de salud. 8.0 10^3 ul 6.0 DISTRIBUCIÓN Al personal técnico de laboratorio.