Uma boa preparação histológica depende da fixação completa e correta dotecido que se pretede estudar, de modo que deve ser realizada com atenção a alguns critérios. Deve-se estar atento ao intervalo mínimo entre a coleta a e sua fixação, para que não haja comprometimento da qualidade da amostra, e o volume do fixador tem de ser no mínimo 10 vezes maior que o volume da amostra. Desta forma, sempre que possível, a fixação deve ocorrer na própria sala de cirurgia, sala de autópsia, ou onde quer que o material seja colhido, respeitando-se as proporções de volume. (SILVEIRA) Os fixadores químicos têm por função básica manter a integridade dos tecidos após a morte, momento em que há interrupção da corrente sanguínea, evitando qualquer alteração da estrutura celular. Portanto, para atingir essa finalidade deve parar ou inibir a autólise, impedir a proliferação bacteriana, preservar e endurecer os tecidos, com o intuito de favorecer as etapas seguintes da técnica histológica, coagular e tornar difusíveis substâncias insolúveis, além de facilitar o processo de coloração (SILVEIRA). O processo corre da periferia para o centro, ou seja, as regiões mais superficiais são fixadas mais cedo que as centrais. O tempo de fixação irá depender do fixador e da temperatura a que é submetido, podendo variar de 4 a 72 h. Logo, a escolha do tipo de fixador exercerá influencia na técnica a ser aplicada. A seleção, portanto, deve se basear em alguns aspectos, como a velocidade de penetração nos tecidos, a finalidade do exame, o custo-benefício, e o não prejuizo à saúde (SILVEIRA). Dentro da gama de agentes fixadores disponíveis há o ácido pícrico, normalmente empregado associado ao formol e ácido acético. Muito embora tenha uma rápida ação fixadora, apresenta pequena penetração quando isolado e leve efeito descalcificante, podendo inclusive ser utilizado como agente descalcificante de ossos de crescimento primário, além de provocar edema das fibras colágenas. Apresenta uma peculiar ação sobre as proteínas: é um fixador coagulante, formando picratos de proteína, o que provoca sua precipitação (SILVEIRA). Trata-se de um dos produtos químicos mais perigosos, havendo um alto risco de explosão, caso se encontre num local seco. Deve-se manter umedecido a qualquer custo, de preferência com um teor de água acima de 10%. É também, inflamável, incompatível com oxidantes fortes, bases, com a maioria dos metais comuns, amónia e agentes redutores fortes, sendo sensível a choques, atrito e calor. Deve-se manejar com um cuidado extra, pois também se verificam danos ao ser humano, podendo causar irritações na pele, olhos e vias respiratórias, erupções, náuseas, vomito, diarreia, e a sua inalação pode causar danos aos pulmões, uma exposição crónica pode causar danos hepáticos ou renais, podendo levar á morte (OLIVEIRA). Na fixação por solução de Bouin, utiliza-se um preparado à base de solução saturada de ácido pícrico, formalina 30-40% e e ácido acético glacial. Por tratar-se de uma mistura, suas propriedades derivam das características de seus componentes. O ácido pícrico quando decomposto precipita e aglutina as proteínas formando picratos de proteínas. Por outro lado, o ácido acético precipita proteínas nucleares, mas não as ...... além de trato gastrointestinal e glândulas endócrinas e até mesmo de testículos (FEIJÓ..250 mL Ácido acético........... 2013)........1. saturada.50 mL (Caputo.2010).. sendo indicado na fxação de cromossomos.... até que o alcool não apresente mais coloração amarelada (MAIA.. 2010).... RECCOPIMENTEL... que permite boa coloração (CARAMASCHI.. de ácido pÌcrico .. saturada..100 mL B) Solução fixadora de Bouin: Solução aquosa. 2004) O processo de fixação com essa solução leva em torno de 4 a 12h (OLIVEIRA)........ os tecidos devem ser lavados em alcool a 70% durante seis horas... Manso.................. 1987)....... no mínimo.. glacial.....( ABRAHÃO et al... rim e fígado (SILVEIRA).. BRAGA...... uma vez que ácido pícrico residual pode interferir na etapa de coloração..........2 g Água destilada. É também muito utilizado para o processamento de amostras de medula óssea (SCORSATO............... uma vez que solução de Bouin permite boa fixação desse tecido para avaliação histológica da espermatogênese (REIS.... 2010) ..............750 mL Formalina (37-40%)...... É considerado um excelente fixador para estudos histológicos gerais ( CARVALHO..... Gitirana..... podendo chegar a 24 e 48 horas.....2012). Após a fixação..................1979)...... 2011). a depender do volume da peça (ARENAS. Vale destacar também que o Bouin é usado para estudo do glicogênio (SILVEIRA) Soluções: A) Solução aquosa......... de ácido pícrico: Ácido pícrico.PITREZ. TELLES...citoplasmáticas e o formaldeído altera a estrutura das proteínas............... É um fixador muito penetrante.. Estudo comparativo com diversos fixadores para aplicação em microscopia eletrônica de transmissão. F. G. v.:< http://docslide.M.2. Hernandes F. GITIRANA.html> Acesso em.. 3.G. Adolfo Lutz.mx/descargas/ensenanza/portal_recursos_linea/apuntes/3_tecnica _histologica. Cap. Ed.br/ documents/acido-picrico-trabalho-final. et al.. 421p. Técnica histológica. CARVALHO. 2. In: MOLINARO. E. José Pedro Moreirão Cerca Monteiro de. CARAMASCHI. 90-188. L. Rev. OLIVEIRA .M. MAIA. S. – São Paulo: Atheneu. ed. 590 p. L. A célula. 2013. Técnicas histológicas.REFERÊNCIA Abrahão. p. R. 2. 2010. Ulisses. EDIPUCRS. César Eduardo Montalvo. Rio de Janeiro: Fiocuz. AMENDOIEIRA.. ed. Shirlei M. 1987. P. Disponivel em. Feijó A. G.: 19 fev 2016 . & Pitrez P. 2010.246 p. P.. SP: Manole.pdf> Acesso em: 20 fev 2016 CAPUTO. 63(2):248-54. Vitorino.S. Barueri.com. Disponível em :< http://histologiaunam. CAPUTO. RECCO-PIMENTEL. Braga L.12p. A. Manual de técnicas para a preparação de coleções zoológicas. Porto Alegre. MANSO. Inst. Ácido Pícrico Métodos e Técnicas em Citologia e Fisiologia. Animais na Pesquisa e no Ensino: aspectos éticos e técnicos. D. 2010.B. F.M. Conceitos e Métodos para a Formação de Profissionais em Laboratórios de Saúde.G.C. 2. 1979. Técnica histológica.. Sociedade Brasileira de Zoologia.. 2004 ARENAS. L. 2011 SILVEIRA.ufsm. Lab.pdf> Acesso em: 17 fev 2016 . Tese (Doutorado em Medicina) Faculdade de Medicina. J.E.Orientação para práticas de laboratório.br/labhisto/trabalhos/t%DAcnica%20de%20histologia. Sergio Oliveira. J. Minas Gerais. Bras.. 2012 Scorsato. Fatores que interferem na qualidade do DNA extraído de amostras biológicas armazenadas em blocos de parafina. Estudo comparativo entre diferentes processamentos histológicos na interpretação de biopsias testiculares.Q. Disponível em:< http://w3.A.REIS. Telles. 93 p. A.P. Patol. Universidade Federal de Minas Gerais. Med. 2012. UNIVERSIDADE TIRADENTES BIOMEDICINA AFONSO CELSO SILVA DÓREA FABRÍCIA SANTOS DE SOUZA HEVELIN SANTOS PIRES KRISLAINY SILVA SANTOS LAVÍNIA DE ARAGÃO PRADO LIMA FIXADOR DE BOUIN . ministrada pelo Prof.º Décio Fragata.Aracaju 2016 AFONSO CELSO SILVA DÓREA FABRÍCIA SANTOS DE SOUZA HEVELIN SANTOS PIRES KRISLAINY SILVA SANTOS LAVÍNIA DE ARAGÃO PRADO LIMA FIXADOR DE BOUIN Trabalho apresentado como requisito parcial de avaliação da disciplina de Anatomia Patológica. no 1º Semestre de 2016 . Aracaju Fevereiro 2016 .