Fisiología (practicas de laboratorio)

PRÁCTICAS DE LABORATORIO41 70 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 3 FONOCARDIOGRAFÍA I. INTRODUCCIÓN El sistema cardiovascular humano está compuesto por el corazón y los vasos sanguíneos en un arreglo de circulación doble: la circulación sistémica y la circulación pulmonar. Estas dos circulaciones están acopladas en serie. El patrón circulatorio se representa en la figura 1. La función primaria del corazón es recibir sangre desde las venas pulmonares y bombearla a las arterias sistémicas, y recibir la sangre de las venas sistémicas y bombearla a las arterias pulmonares. La secuencia de eventos mecánicos y eléctricos del corazón asociados con la recepción de sangre desde el sistema venoso y su bombeo hacia el sistema arterial durante un latido cardiaco es conocida como el ciclo cardiaco. Una analogía mecánica simplista del corazón es considerarlo como una bomba doble. Los lados derecho e izquierdo están separados, pero bombean al unísono para mover la sangre a través del sistema circulatorio. El flujo normal de sangre a través del corazón y los vasos sanguíneos es unidireccional con la siguiente secuencia: vasos vasos Ventrículo capilares aurícula ⇒ sistémicos ⇒ ⇒ venosos ⇒ izquierdo sistémicos derecha arteriales sistémicos CIRCULACIÓN PULMONAR Arteriola Pulmones Vénula Vena Arteria Arteria pulmonar Ventriculo derecho Vena cava Cerebro Piel Vena Riñón Músculo Venas pulmonares Ventriculo izquierdo Aorta ⇑ ⇓ aurícula ⇐ vasos ⇐ capilares ⇐ vasos ⇐ Ventrículo venosos pulmonares arteriales izquierda derecho pulmonares pulmonares La sangre que fluye a través del lado izquierdo del corazón se mantiene separada de la sangre que fluye a través del lado derecho por los septa (paredes) entre las aurículas y ventrículos. El flujo unidireccional de sangre a través de las cámaras en cada lado del corazón es asegurado por las válvulas auriculoventriculares y semilunares (fig. 2, p. 62). En el lado izquierdo del corazón, la válvula auriculoventricular es llamada válvula mitral y la válvula semilunar es llamada válvula aórtica. Arteria Vénula Arteriola CIRCULACIÓN SISTÉMICA Fig. 1. Patrón circulatorio. FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO , 2009-2010) 71 Válvula semilunar pulmonar Aurícula derecha Válvula semilunar aórtica Aurícula izquierda Válvula mitral Ventrículo izquierdo Nódulo sinusual Nódulo A-V Haz A-V Rama izquierda del haz Rama derecha del haz Válvula tricúspide Ventrículo derecho Vías internodales Fig. 2. Válvulas cardiacas. En el lado derecho del corazón la válvula auriculoventricular es llamada válvula tricúspide y la válvula semilunar es llamada válvula pulmonar. Durante el ciclo cardiaco las válvulas semilunares (pulmonar y aórtica) se abren y cierran casi simultáneamente, del mismo modo que las válvulas auriculoventriculares (tricúspide y mitral). Esta es la acción de "doble bomba" del corazón. Cada latido cardiaco comienza con una señal eléctrica generada por el nódulo sinoauricular (SA), comúnmente llamado el marcapaso fisiológico. Una vez que la señal se ha propagado a través del músculo auricular, las aurículas responden contrayéndose (sístole auricular). En este momento los ventrículos están relajados (diástole ventricular) las válvulas auriculoventriculares están abiertas y las semilunares cerradas. Los ventrículos se están llenando con la sangre preparándose para la sistole ventricular. El nódulo auriculoventricular (AV) recoge la señal del marcapaso y después de un retraso corto, lo cual lleva a la aurícula a completar la sístole y entrar a la diástole, manda la señal hacia abajo, al sistema de conducción ventricular (fig. 3), lo que estimula a los ventrículos a contraerse (sístole ventricular). Cuando los ventrículos se contraen, la presión ventricular aumenta por encima de la presión auricular y las válvulas auriculoventriculares se cierran. La presión ventricular continúa aumentando y, cuando excede la presión arterial, las válvulas semilunares se abren y la sangre es rápidamente eyectada hacia el tronco pulmonar y la aorta. Los ventrículos completan la sístole y entran a la diástole (fig. 4). Fig. 3. El nódulo sinusal y el sistema de Purkinje del corazón. Se muestran también el nódulo A-V, las vías internodales auriculares y las ramas ventriculares del haz. Final de la diástole Sístole auricular Contracción ventricular isovolumétrica Eyeccion ventricular Relajación ventricular isovolumétrica Fig. 4. Flujo de sangre en el corazón y grandes vasos durante el ciclo cardiaco. Las porciones del corazón que se contraen en cada fase están resaltadas en negro. AD y AI = aurículas derecha e izquierda. VD y VI = ventrículos derecho e izquierdo. .72 PRÁCTICAS DE LABORATORIO ventricular y aórtica. La presión mayor del lado izquierdo del corazon causa que las válvulas aortica y mitral se cierren más fuerte y rápido. para el lado izquierdo del corazón. También incluye un gráfico de la presión 1 Sístole ventricular Presión (mmHg) Ciclo cardiaco Diástole ventricular Presionaórtica Presion ventricular Presion auricular Válvulas auriculoventriculares Válvulas semilunares Abiertas Cerradas Cerradas Abiertas Abiertas Cerradas Cerradas Abiertas Sonidos cardiacos Derivación II ECG Tiempo (segundos) Nota: Intervalo 1 = Contracción isovolumétrica. Fig. así las válvulas en el lado izquierdo crean la mayor parte de la intensidad de los sonidos que se escuchan con el estetoscopio. La figura 5 muestra la relación temporal entre los sonidos cardiacos y la señal eléctrica del electrocardiograma (ECG). En este momento de actividad eléctrica las aurículas y los ventrículos están relajados y esperando a que el marcapaso inicie el próximo ciclo cardiaco. Cuando la presión ventricular cae por debajo de la presión auricular. Las ondas de presión para el lado derecho (no mostradas) tienen una forma similar. Esto es porque la presión que se genera en las cámaras del lado izquierdo del corazón es mucho mayor que la del lado derecho. Intervalo 2 = Relajación isovolumétrica. Los cuatro principales sonidos cardiacos están asociados con la apertura y cierre de las válvulas y el flujo de Al inicio de la diástole ventricular la presión intracavitaria cae por debajo de la presión arterial y las válvulas semilunares se cierran. pero de menor amplitud. Eventos del ciclo cardiaco. 5. las válvulas auriculoventriculares se abren y comienza nuevamente el llenado ventricular. por existir gradiente de presiones entre la aurícula y ventrículo izquierdo a favor de la primera. mixoma auricular izquierdo y bloqueo completo de rama izquierda. El desdoblamiento invertido de S1. la válvula permanece abierta durante toda la diástole. 1. El desdoblamiento en 10 a 30 ms de los dos componentes de tono alto de S1 es un fenómeno normal. línea media clavicular. 2. Ello también se aprecia cuando la válvula mitral está muy calcificada y esta alteración no permite gran movilidad de las valvas. La intensidad del primer tono cardiaco depende de: 1) la posición de las valvas mitrales al comienzo de la sístole ventricular (o al final de la diástole). borde esternal izquierdo. El segundo ruido dura unos 0. lo cual favorece el apagamiento del primer ruido ya que el viaje valvular es pequeño y no permite que dicho movimiento adquiera velocidad importante. La intensidad del primer ruido depende fundamentalmente de la posición que guarden las valvas de la mitral al final de la diástole. cuando el cierre valvular se lleva a cabo desde una apertura máxima.12 seg. y 4) la presencia o ausencia de enfermedades estructurales en la . es suave cuando la frecuencia cardiaca es baja porque los ventrículos se llenan por completo con sangre y las valvas de las válvulas AV flotan al unísono antes de la sístole. Normalmente se auscultan los dos componentes del segundo ruido: el aórtico (A2) tiene Fig. puede observarse en pacientes con estenosis mitral grave. el foco trícupideo en la base del apéndice cifoides. con el consiguiente retraso en el inicio del ascenso de la presión en el ventrículo derecho. el llenado ventricular al final de la diástole coloca a las valvas de la mitral casi en posición de cierre. donde el componente mitral sigue al componente tricuspídeo. El segundo ruido se ausculta mejor en el foco pulmonar. tricuspídeo. ello acontece especialmente cuando el segmento PR del ECG es corto o cuando.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Este ruido se ausculta mejor en el ápex y preferentemente en decúbito lateral izquierdo (posición de Pachón). con una frecuencia de 50 Hz. este sonido es el "dub"de la onomatopeya "lub-dub". cuando el segmento PR del ECG es prolongado (bloqueo auriculoventricular de primer grado). el foco aórtico en el 2o espacio intercostal. Este sonido es el "lub" del característico "lub-dub" que puede ser escuchado en cada latido cardiaco. Estos sonidos pueden ser escuchados colocando un estetoscopio en los focos de auscultación (mitral. aórtico y pulmonar) en la superficie anterior del torax (fig. El segundo sonido cardiaco (S2) ocurre al inicio de la diástole ventricular (relajación del músculo ventricular) y es causado por el cierre de las válvulas semilunares y la apertura de las válvulas auriculoventriculares. el viaje de las valvas adquiere también una máxima aceleración y el S1 es intenso. es intenso y agudo cuando se eleva la presión diastólica de la aorta o de la arteria pulmonar. lo que hace que las valvas respectivas se cierren bruscamente al final de la sístole. válvula mitral. 6). tal y como sucede en la estenosis mitral. aire o líquido entre el corazón y el estetoscopio. Por el contrario. El primer ruido dura alrededor de 0. así. Un desdoblamiento mayor de este tono se suele deber a un bloqueo completo de rama derecha.15 seg y tiene una frecuencia de 25 a 45 Hz. línea paraesternal derecha y el foco pulmonar en el 2o espacio intercostal. 2) la velocidad con que aumenta la presión ventricular izquierda. Áreas torácicas donde se escucha mejor cada ruido valvular. 6. 2009-2010) 73 sangre dentro del corazón durante el ciclo cardiaco. El primer sonido cardiaco (S1) ocurre durante la sístole ventricular y es causado por el cierre de las válvulas auriculoventriulares y la apertura de las válvulas semilunares. El foco mitral se encuentra en el 5o espacio intercostal izquierdo. línea paraesternal izquierda. El primer componente de S1 se atribuye al cierre de la válvula mitral y el segundo al cierre de la válvula tricúspide. 3) la cantidad de tejido. El S3 izquierdo se oye mejor con la campana del estetoscopio en la punta del ventrículo izquierdo durante la espiración y con el paciente en decúbito lateral izquierdo. que se escucha primero. origina lo que se conoce como desdoblamiento invertido (paradójico) de S2. Este tono falta en los pacientes con fibrilación auricular. hipertensión sistólica. El S3 derecho se oye mejor en el borde esternal izquierdo o justo por debajo del apéndice cifoides y habitualmente aumenta durante la inspiración. Cuando el cortocircuito es importante es frecuente auscultar tercer ruido originado por el ventrículo derecho. a un gran cortocircuito aorta-arteria pulmonar. puede deberse a una grave obstrucción del flujo aórtico. por ejemplo la comunicación interauricular. cardiopatía isquémica o miocardiopatía con insuficiencia ventricular izquierda. 0. Las causas más frecuentes de desdoblamiento invertido de S2 son el bloqueo de rama izquierda y la excitación retrasada del ventrículo izquierdo por un latido ectópico del ventrículo derecho. El cuarto sonido cardiaco (S4) es un ruido de baja frecuencia que ocurre al final de la diástole ventricular. prolongación de la contracción ventricular derecha debido al aumento de la postcarga del ventrículo derecho (embolia o estenosis pulmonar). El tercer sonido cardiaco (S3) es causado por la turbulencia asociada con el llenado rápido de los ventrículos poco tiempo después de la apertura de las válvulas auriculoventriculares.74 PRÁCTICAS DE LABORATORIO mayor intensidad que el pulmonar (P2) debido a que las sigmoideas aórticas se cierran a una presión mucho mayor que con la que lo hace la válvula pulmonar. regurgitación ventriculoauricular u otros procesos en los que existe un incremento de la velocidad o del volumen de llenado ventricular. En tales circunstancias. retraso del cierre de la válvula pulmonar por sobrecarga de volumen del ventrículo derecho asociada a insuficiencia ventricular. en los individuos de más de 40 años. el desdoblamiento es máximo durante la espiración y disminuye en la inspiración con el retraso normal del cierre de la válvula pulmonar. la comunicación interventricular (CIV) o la insuficiencia mitral importantes que causan hipervolemia a través de la válvula mitral y S3 patológico del ventrículo izquierdo. retrasándose el cierre de la válvula pulmonar. cuando termina el llenado rápido. El desdoblamiento que persiste durante la espiración (se oye mejor en el foco pulmonar o en el reborde esternal izquierdo) suele ser anormal cuando el paciente está de pie. en la que a la sangre venosa sistémica que llega a la aurícula derecha se le suma una cantidad adicional de sangre que pasa a través de la comunicación anormal y causa hipervolemia. Este tono es normal en los niños de edad escolar. La prolongación de la sístole ventricular izquierda. S3 suele indicar una descompensación ventricular. cuando el incremento del flujo al ventrículo derecho aumenta su volumen sistólico y el tiempo de expulsión. Otros ejemplos podrían ser la persistencia del conducto arterioso. que determina una inversión del desdoblamiento de S2. 4. y pulmonar (P2) se suele producir durante la inspiración. La existencia del tercer ruido suele ser considerada patológica y puede ser causada fundamentalmente por dos situaciones: una es la insuficiencia cardiaca (ritmo de galope) que suele desaparecer con el tratamiento de la misma y otra está constituida por todas aquellas alteraciones en las que el flujo a través de alguna de las válvulas auriculoventriculares está aumentado en forma anormal.16 segundos después de A2. Sin embargo. que hace que P2 preceda a A2. dura una décima de segundo. El tercer tono cardiaco es un ruido de baja frecuencia producido en el ventrículo. es causado por la turbulencia asociada con el paso de la sangre desde la aurícula hacia los ventrículos durante la sístole auricular y puede oírse mejor con la campana del estetoscopio. latidos ectópicos del ventrículo izquierdo. Un retraso en el cierre de la válvula aórtica. Este desdoblamiento puede deberse a diversas causas: retraso en la activación del ventrículo derecho (bloqueo de rama derecha). . El desdoblamiento de S2 en dos componentes claramente distintos: aórtico (A2). Este sonido se escucha inmediatamente antes que los ventrículos empiecen a contraerse y forza a la válvula auriculoventricular a cerrarse.14 a 0. adolescentes y en los pacientes con un gasto cardíaco elevado. S4 se produce cuando la disminución de la 3. ed. El cuarto sonido es a menudo también de baja amplitud que puede no ser detectado. Función de bomba del corazón: El ciclo cardiaco. Válvulas cardiacas y tonos cardiacos.. p. Exploración física del aparato cardiovascular.. la formación de remolinos y la cavitación (formación de burbujas a consecuencia de disminuciones bruscas de la presión). esto lleva a un flujo retrógrado y aparece un soplo sistólico. En: Kremer J. ed. p. Lecturas recomedadas 1. Madrid: McGraw-Hill Interamericana de España. El corazón considerado como bomba dinámica del flujo sanguíneo y linfático. miocardiopatía hipertrófica. Pflanzer R. 613-643. 2003.. Tresguerres J. El tercer sonido sigue cercanamente al segundo y es de menor amplitud (apagado). 37-59. En otras ocasiones la turbulencia del flujo sanguíneo se debe al aumento de la velocidad circulatoria por otras causas (anemia. por lo que la auscultación de un cuarto ruido casi siempre significa la existencia de una enfermedad cardiaca. dinámica de las valvulopatías y cardiopatías congénitas. Biopac Student Laboratory Manual. Cuando se ausculta. 6. 2002. ed. 5a. 5. producidas por un flujo turbulento. eds. En: Guyton A.. 2009-2010) 75 elasticidad ventricular aumenta la resistencia al llenado del ventrículo y existe a menudo en los pacientes con hipertensión arterial. et al. Fauci A. 3. si la válvula aórtica no cierra por completo. Tratado de fisiología médica. et al. El flujo sanguíneo puede hacerse turbulento en presencia de estenosis o insuficiencias valvulares o bien por la presencia de comunicaciones intracavitarias (comunicacion interauricular o interventricular) o vasculares anormales (soplos orgánicos).U. et al. se aprecia como un ritmo de tres tiempos que desdobla el primer ruido ya que el cuarto ruido es presistólico. en esta práctica la medición de los sonidos cardiacos se refiere sólo al primer y segundo sonido cardiaco. Por ejemplo. Por estas razones. estenosis aórtica. Taner G. 1a. coronariopatía y regurgitación mitral aguda. En: Rhoades R. Hall J. et al. Un soplo cardiaco es un fenómeno acústico producido por las vibraciones de la corriente sanguínea y de las estructuras adyacentes (cardiacas y de los grandes vasos). eds. El primer y segundo sonidos cardiacos son definidos y distinguibles fácilmente por un oído sin adiestramiento previo. Lección 17 (sonidos cardiacos). embarazo.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . eds. p. ed. Brown. produciendo un registro de los mismos llamado fo- nocardiograma y simultáneamente se registrará el electrocardiograma para la derivación II. En: Guadalajara J. México: Editorial El Manual Moderno. Guadalajara J. p. ed. 10a. Fisiología humana. El cuarto tono se suele acompañar de una distensión presistólica palpable y visible del ventrículo izquierdo. Principios de medicina interna. 2.A. p. Fisiología médica. 2000. ed. 1999. 19a. Nota. 1482-1487. Guyton A. eds. El corazón como bomba. et al. S. Historia clínica (auscultación). et al. et al. 15a. 1997. Los soplos pueden ser escuchados durante la sístole ventricular (soplo sistólico) o durante la diástole ventricular (soplo diastólico). 7. En: Ganong W. Su intensidad es máxima en la punta del ventrículo izquierdo con el paciente en posición de decúbito lateral izquierdo y se acentúa con el ejercicio isotónico e isométrico ligero en posición supina. si una válvula mitral falla en cerrarse completamente. 4.A. México: McGraw-Hill Interamericana. lo que hace difícil su distinción. Por otro lado. Ganong W. En esta lección se evaluarán sonidos del ciclo cardiaco. p. En: Tresguerres J. Cardiología. Fisiología médica. En: Braunwald E. 299-319. 473-491. et al. México: McGraw-Hill Interaméricana. La mayoría de los pacientes con un infarto de miocardio agudo y ritmo sinusal tiene un S4 audible. S. 2004. 2a. ed. México: Méndez Editores. 295-304. p. . Rhoades R. ed. Otros sonidos que pueden percibirse al realizar la auscultación cardiaca son los soplos. De esta forma se podrán comparar y correlacionar los eventos eléctricos y los eventos mecánicos del ciclo cardiaco. etcétera) sin que el corazón tenga enfermedad (soplos anorgánicos o inocentes). 2001. Barcelona: Masson-Little. eds. aparecerá un soplo que se escuchará durante la diástole ventricular.. California: Biopac Systems Inc. 1-24.. hipertiroidismo. Durante cada maniobra se colocará la campana del estetoscopio sobre la piel del foco seleccionado. MANIOBRAS EXPERIMENTALES Preparación del sistema del registro I) COLOCACIÓN DE LOS SISTEMAS DE REGISTRO a) Foco mitral. • Conectar el cable del transductor del estetoscopio a la unidad BIOPAC MP30 al CH-3. d) Foco pulmonar. se le colocará la campana del estetoscopio en el foco aórtico y se procederá a registrar durante 15-20 segundos. tricuspídeo. aparecerá en la pantalla el registro del ECG y se deberá golpear ligeramente el diafragma del estetoscopio en dos ocasiones. b) Foco tricuspídeo. 3. Registro electrocardiográfico: • Colocar tres electrodos de la siguiente manera: coloque uno en la piel de la cara anterior del antebrazo derecho justo encima de la muñeca. c) Foco aórtico. Sujeto en reposo III. Escuchar los sonidos del corazón humano y describirlos cualitativamente en términos de intensidad o ruido. pulmonar). declive y duración. la guía blanca al electrodo colocado a la muñeca derecha y la guía negra al electrodo colocado en el tobillo derecho que servirá como tierra del sistema. ENCIENDA LA UNIDAD DE ADQUISICION DE DATOS MP30 II) . uno en la piel del borde interno del tobillo derecho y uno en la piel del borde interno del tobillo izquierdo. III) CALIBRACIÓN DEL SISTEMA Tras haber activado en forma secuencial el botón de "Calibración" y "OK". se le colocará la campana del estetoscopio en el foco tricuspídeo y se procederá a registrar durante 15-20 segundos. • Conectar el grupo de cables-electrodo a la unidad BIOPAC MP30 al CH-4. en reposo y relajado. aórtico. El sujeto de estudio debe estar relajado durante aproximadamente 8-10 segundos. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. en reposo y relajado. se le colocará la campana del estetoscopio en el foco pulmonar y se procederá a registrar durante 15-20 segundos. se le colocará la campana del estetoscopio en el foco mitral y se procederá a registrar durante 10 segundos mientras que el sujeto realiza una inspiración profunda y sostiene la respiración. en reposo y relajado. debiéndola sostener con una presión moderada y constante durante el tiempo que dure el registro. Correlacionar los sonidos del corazón humano con la apertura y cierre de las válvulas cardiacas durante el ciclo cardiaco y con la sístole y la diástole de los ventrículos.76 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Inicie el programa BIOPAC y elija la lección 17 (L17-HS1) II. Ahora se procederá a la adquisición de los datos durante las siguientes maniobras experimentales: 1. • Colocar las guías de los cables-electrodo en DII: conectar la guía roja al electrodo colocado en el tobillo izquierdo. Fonocardiógrafo: • Localizar y marcar los cuatro focos auscultatorios (mitral. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. se le colocará la campana del estetoscopio en el foco mitral y se procederá a registrar durante 15-20 segundos. Sujeto en inspiración y espiración profundas a) El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. 2. 2. en reposo y relajado. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. en reposo y relajado. Determinar la naturaleza de los cambios en las relaciones entre eventos eléctricos y mecánicos del ciclo cardiaco cuando hay un aumento en el ritmo cardiaco. OBJETIVOS EXPERIMENTALES 1. manteniéndose la campana del estetoscopio en el foco mitral y se procederá a registrar durante 10 segundos mientras que el sujeto realiza una espiración forzada. el sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. se obtendrán los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. ej. duración (∆T) y frecuencia de pulso (BPM) del segmento del registro seleccionado mediante el cursor. IV. . ANÁLISIS DE DATOS Tras haber estipulado en las "cajas de medición" tanto el número de canal como el tipo de medición. 20-30 sentadillas). 3. se le colocará la campana del estetoscopio en el foco mitral y se procederá a registrar durante los 10 segundos mientras que el sujeto realiza la maniobra de Valsalva (espiración forzada con glotis cerrada). en reposo y relajado. en reposo y relajado. Sujeto después del ejercicio Posterior ha haber realizado ejercicio moderado (p.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . se le colocará la campana del estetoscopio en el foco mitral y se procederá a registrar durante 60 segundos. 4. 2009-2010) 77 b) El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. esto es. amplitud (p-p). en reposo y relajado. Sujeto realizando maniobra de Valsalva El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. Sexo: Masc. pendiente y duración relativa al primer sonido. Descripción de los sonidos cardiacos. CH3 CH3 CH3 Reposo Inspiración Espiración Después de ejercicio ∆T 2o sonido al siguiente 1er sonido CH3 p-p primer sonido p-p segundo sonido CH3 CH3 B. Aórtico: Pulmonar: Tricuspide: Mitral: .( )/Fem. Cálculos y datos Fecha:____________________________ Perfil del sujeto: Nombre del sujeto de estudio ________________________________________________________________________ Estatura_____________.78 PRÁCTICAS DE LABORATORIO FONOCARDIOGRAMA INFORME Nombre del estudiante____________________________________________________________________________ Sección de Laboratorio__________________________ I. Medición de los sonidos cardiacos. No. Describa el primer sonido cardiaco y luego describa los otros sonidos en términos de intensidad. Edad____________. Tabla 1. Peso___________. Complétela con los datos de cada segmento y complete los cálculos requeridos Parámetro BPM ∆T onda R al 1er sonido ∆T onda R para el 2o sonido CH.( ) A. Anote los cambios observados entre el reposo y despueés del ejercicio en los siguientes parámetros Después del ejercicio Valor medido BPM ∆T onda R al primer sonido ∆T onda R al segundo sonido ∆T segundo sonido al próximo p-p primer sonido p-p segundo sonido Aumentó Disminuyó No cambió 3. Preguntas 1. Defina "ciclo cardiaco": . Defina "soplo sistólico" y dé un ejemplo de su causa: 6.: ¿qué representa cada una de las mediciones de la tabla? BPM ___________________________________________________________________________________________ ∆T onda R dal primer sonido ________________________________________________________________________ ∆T onda R al segundo sonido ______________________________________________________________________ ∆T segundo sonido al siguiente 1er sonido______________________________________________________________ p-p primer sonido ___________________________________________________________________________________ p-p segundo sonido _______________________________________________________________________________ 2. ¿La eyección ventricular ocurre durante la despolarización ventricular o durante la repolarización ventricular? ¡Explique su respuesta! 5. 2008-2009) 79 II. Defina "soplo diastólico" y dé un ejemplo de su causa: 7.¿Cuál de los cuatro sonidos cardiacos es más intenso? ¿Explique por qué?: 4.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . En relación con los eventos eléctricos y mecánicos del ciclo cardiaco. Actividad eléctrica Actividad mecánica Sístole Diástole Sístole Fig. la onda T (repolarización ventricular) ini- cia antes que la relajación (diástole) ventricular. normalmente la actividad mecánica ventricular inicia simultáneamente con el pico de la onda R y termina al final de la onda T. 1. la activación eléctrica de los ventrículos representada por el complejo QRS precede la contracción ventricular. Ya que cada ciclo cardiaco contiene un periodo de sístole ventricular seguido inmediatamente por un periodo de diástole ventricular. . 1). el llamado ciclo cardiaco. La contracción de los ventrículos (sístole ventricular) empuja un volumen de sangre (el volumen sistólico) hacia las arterias. inicia la actividad mecánica del corazón (contracción y relajación de los ventrículos y aurículas).80 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 4 FOTOPLETISMOGRAFÍA I. La actividad eléctrica de las células cardiacas registrada de manera global en el electrocardiograma (ECG). Para ello. la duración de un ciclo cardiaco o pulso cardiaco puede ser medido como el tiempo entre sucesivas ondas R (fig. el corazón tiene una secuencia rítmica de eventos mecánicos. Por lo tanto. las ondas ECG preceden los eventos mecánicos correspondientes del ciclo cardiaco. Desde el ventrículo izquierdo la sangre va a la aorta y de allí al resto del cuerpo. Relación entre eventos eléctricos y eventos mecánicos del ciclo cardiaco. Cada volumen de sangre "bombeado" facilita el flujo sanguíneo del segmento vecino corriente abajo. Por tanto. Por ejemplo. INTRODUCCIÓN La función primaria del corazón es bombear la sangre al cuerpo. FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . así. Cambios del perfil de la presión del pulso a medida que la onda viaja hacia los vasos de menor calibre. La onda de presión expande las paredes arteriales conforme avanza y esta expansión es palpable en forma de pulso. Si no fuera por la distensibilidad del sistema arterial. 2. las arterias se vuelven más rígidas y la onda de pulso se mueve con más rapidez. el flujo sanguíneo tisular es fundamentalmente continuo con muy escasas oscilaciones. sino que también establece una onda de presión que se propaga a lo largo de las arterias. Fig. Conforme aumenta la edad. Fig. 3. menor será la velocidad. que es independiente y mucho mayor que la velocidad del flujo sanguíneo (fig. La velocidad a la que se propaga esta onda. a edades avanzadas. la capacitancia del árbol arterial reduce la pulsatilidad del flujo sanguineo hasta su desaparición a nivel de los capilares (fig. el pulso se percibe en la arteria radial. manteniendo la presión relativamente elevada y el flujo sanguíneo a pesar de la ausencia del bombeo cardiaco. Por consiguiente. En general. es de unos 4 m/seg en la aorta. 0. lo que explica la lenta transmisión de la onda de pulso en la aorta y la transmisión mucho más rápida en las arterias distales pequeñas. Sin embargo.1 seg después de la expulsión sistólica máxima en la aorta. tienen una escasa capacitancia. además. la sangre fluiría por los tejidos sólo durante la sístole ventricular y no durante la diástole. 2). el retroceso elástico de las arterias las ayuda a continuar "empujando" la sangre a lo largo del resto del sistema vascular durante la diástole. luego.3). cuanto mayor sea la capacitancia de cada segmento vascular. en condiciones normales. Velocidad de la sangre y velocidad de la onda de pulso. en la muñeca. 8 m/seg en las arterias grandes y 16 m/seg en las arterias pequeñas de los adultos jóvenes. la presión del pulso se eleva en ocasiones hasta dos veces su valor normal porque las arterias rígidas. 2009-2010) 81 La aorta y las otras arterias grandes tienen fibras elásticas en la capa media de sus paredes. La sangre que se impulsa hacia la aorta durante la sís- tole no sólo mueve la sangre que hay en los vasos. . mucho menos distensibles. las cuales les permiten expandirse ligeramente para recibir el volumen de sangre eyectada durante la sístole ventricular. a causa de la arteriosclerosis. etcétera) el pulso es amplio. Es importante mencionar que existe una diferencia entre la presión sistólica (120 mmHg) y la diastólica (80 mmHg). Fig. circulando la sangre durante 0. Multiplicar la masa por 50 y duplicar la velocidad equivale a multiplicar la energía cinética por 200 y agregar varios joules al trabajo cardiaco por sístole. En cada sístole. cada eyección dura alrededor de 0. el caudal llega a hacerse relativamente constante en la mayor parte del circuito. El volumen sistólico atraviesa la resistencia periférica durante un ciclo cardiaco (estimado en 0. pues debería mantener el mismo volumen que normalmente circula en un minuto en menos de la mitad del tiempo (0. el pulso tendrá poca amplitud (pulso filiforme). insuficiencia aórtica. Sólo por esta causa el trabajo cardiaco se vería casi triplicado. Si los vasos fuesen rígidos. el caudal se mantendría intermitente en todo el circuito. 5 Presión del pulso (mmHg) = Presión sistólica– presión diastólica.5 seg de aporte nulo. El trabajo necesario para mantener el volumen minuto aumentaría por dos mecanismos: 1.0 Fig. . Esta presión diferencial es la que determina la amplitud del pulso ya que cuando es grande (síndrome hipercinético. Papel de la elasticidad arterial en el ahorro de energía durante el periodo eyectivo. Pero si el mismo volumen tuviese que atravesar la misma resistencia en sólo 0. el caudal en ese lapso debería de aumentar proporcionalmente y la presión arterial debería sobrepasar los 250 torr.82 PRÁCTICAS DE LABORATORIO El ingreso de sangre en las arterias es intermitente. la cual se denomina presión del pulso (fig.3 seg y deteniéndose durante el resto del ciclo. 50 a 70 veces mayor que la del volumen sistólico. insuficiencia cardiaca). 2. 4).0 3. Sin embargo. esto genera la onda del pulso (fig. Gracias a la elasticidad de los vasos el trabajo eyectivo se acumula como energía potencial elástica en las principales arterias y se emplea en la circulación sanguínea continua durante todo el ciclo cardiaco. La presión del pulso declina con rapidez y alcanza cerca de 5 mm de Hg en los extremos terminales de las arteriolas. La velocidad de la sangre aumentaría durante ese lapso a más del doble de lo normal. 5) o presión diferencial (40 mmHg). Presión de pulso 130 0.3 seg y va seguida de 0. choque cardiogénico.3 seg.8 segundos Sistólica Presión arterial media 80 Diastólica 60 Tiempo (segundos) 1.3 seg de cada 0. 4. el ventrículo izquierdo debería poner en movimiento toda la sangre detenida en el circuito sistémico suministrándole energía cinética a una masa del orden de 5 kg.8 seg) para lo cual la presión arterial debe ser del orden de 100 torr.0 2. mientras que cuando es pequeña (estenosis aórtica.8 seg). Presión arterial media (mmHg) = 1/3 presión de pulso + presión diastólica. La parte descendente. En la circulación intacta. presente en la rama ascendente. . desde puntos de ramificación y desde puntos de ahusamiento de vasos en pequeños vasos de resistencia. Así. el carotídeo). Perfil de la presión del pulso registrada en la aorta ascendente. las ondas del pulso se reflejan hacia atrás hacia la aorta central y estas ondas de presión que retornan interactúan con las ondas que se aproximan. justo antes de alcanzarse la presión máxima. sincrónica con el cierre de la válvula aórtica. se produce en el momento del pico del flujo aórtico. En consecuencia. de modo que. I Pulsos de presión (mmHg) 15 II 10 5 III IV V 50 Cayado 10 20 30 40 Distancias en la aorta (cm) Fig. equivale a la presión diastólica más la tercera parte de la presión del pulso. La muesca anacrota. la presión media es algo menor que el valor del punto medio entre las presiones sistólica y diastólica. como una aproximación.. la distensibilidad arterial disminuye.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 6) central se caracteriza por una elevación bastante rápida que forma un pico algo redondeado. en lugar del aumento observado. por lo tanto. Conforme la onda del pulso se transmite periféricamente. 6. 2009-2010) 83 La fuerza del pulso depende de la presión del pulso y tiene poca relación con la presión arterial media. el ascenso inicial se vuelve más suave. Pulsos de presión registrados a lo largo de la aorta de un perro desde el cayado hasta la arteria femoral con la distancia en centímetros. Fig. hay un movimiento progresivo del pico (fig. 7) hacia el comienzo del pulso de presión (una reducción del tiempo hasta la presión pico). aunque puede presentar algunas variaciones. Sin estos fenómenos. la muesca anacrota se torna menos marcada y la incisura se sustituye por una escotadura dicrota más suave. los picos de las ondas de presión tienden a viajar más rápido que los puntos más bajos (diastólicos) de presión. menos empinada. Como la sístole es más corta que la diástole. a medida que la forma de la onda se desplaza periféricamente. ej. radial) suele proporcionar menos información sobre las alteraciones de la expulsión del ventrículo izquierdo o sobre la función de la válvula aórtica que el examen de un pulso más central (p. La presión del pulso es susceptible de registro y es similar en términos generales en los diferentes sitios donde se tome. En el panel inferior se indican los primeros cinco componentes armónicos de estas ondas. 7. el pulso aórtico (fig. las fuerzas viscosas en las paredes de los vasos sanguíneos y la sangre tenderían a producir una disminución de la onda de pulso de presión que viaja.. la escotadura dicrota desaparece y se desarrolla una onda secundaria en la rama descendente. está interrumpida por una aguda deflexión hacia abajo. la palpación del pulso arterial periférico (p. La presión del pulso aumenta. A medida que la presión aumenta. ej. denominada incisura. La presión arterial a lo largo del ciclo cardiaco es la fuerza principal para mantener el flujo sanguíneo. esta última se refiere a la presión promedio durante todo el ciclo cardiaco. toda la relación presión-volumen tiene mayor pendiente (distensibilidad disminuida). un volumen sistólico mayor puede aumentar la presión del pulso (fig. Cuando la distensibilidad aórtica disminuye. 8. 8 C). el mismo volumen sistólico que se muestra en 1 da como resultado una presión del pulso mayor (3) porque la aorta está operando en una parte más empinada de su curva de presión-volumen. 8A). aunque la presión arterial media permanezca constante. y en estas condiciones el mismo volumen sistólico (normal) puede A 250 200 Presión (mmHg) B C 200 200 150 100 1 50 2 vs vs 100 3 100 4 vs vs Volumen Volumen Volumen Fig. Relaciones presión-volumen de la aorta en los seres humanos (líneas curvas en cada panel) VS volumen sistólico. la arteria puede ser estirada hacia una parte más rígida de su curva de presiónvolumen (distensibilidad reducida) y en estas condiciones el mismo volumen sistólico puede causar una presión del pulso más grande con un aumento proporcionalmente mayor de la presión sistólica que de la presión diastólica (fig. como se demuestra en la aorta de un individuo normal de edad mediana. a la inversa. En la mayoría de los casos de hipertensión. C. El aumento del volumen sistólico a la aorta aumenta la presión del pulso arterial (1 y 2). aunque el aumento de la resistencia vascular periférica con el mismo volumen minuto produce presiones media y diastólica más altas. curva 3). Estos factores son el volumen sistólico. Cuando la presión arterial aumenta. A. 8 A y 9-curva 2). En la curva 4 de la figura 9 también se muestran los efectos de una hipertensión crónica. el mismo volumen sistólico de B causa una presión del pulso mayor (4). 9. Una disminución aislada de la distensibilidad aórtica producida de forma experimental genera un aumento de la presión pico y una mayor presión del pulso (fig. el volumen minuto permanece normal y la tasa de caída de la presión (desagüe diastólico) puede no cambiar de un modo apreciable. como sucede con la edad. B. Si la presión arterial media en el mismo sujeto aumenta en forma aguda y pronunciada. la distensibilidad aórtica (o capacitancia) y el flujo diastólico o "desagüe" desde la aorta. Si la hipertensión es suficiente- Varios factores afectan de manera significativa la magnitud de la presión del pulso medida en un estado circulatorio dado (además del sitio donde se mide la presión).84 PRÁCTICAS DE LABORATORIO dar como resultado una presión del pulso aumentada (fig. 8B). . El volumen sistólico evidentemente puede afectar la presión del pulso y. Si la frecuencia cardiaca disminuye mientras el volumen minuto permanece relativamente constante (como puede ocurrir en caso de una bradicardia) el volumen sistólico aumenta y la presión del pulso se incrementa (fig. La relación presión-volumen normal en A y B está indicada por la curva punteada y la observada en algunos ancianos con distensibilidad aórtica disminuida está indicada por la curva entera. si la frecuencia cardiaca aumenta (por medio de un marcapaso eléctrico) y el volumen minuto no se modifica (que es la respuesta habitual en la circulación normal). el volumen sistólico y la presión del pulso disminuyen. Cuando la onda de presión es transmitida a la periferia. etcétera. Se ha obtenido una cantidad considerable de datos sobre el flujo sanguíneo en las extremidades mediante pletismografía (fig. 9. por medio de técnicas de desplazamiento de volumen. El latido 1 es normal. Fig. La velocidad de viaje de la onda de presión desde el corazón a la periferia puede ser afectada por muchos factores no relacionados. . por ejemplo. y los diámetros de las arterias sistémicas y arteriolas. El latido 4 indica el efecto del aumento de la presión arterial media. que reflejan los cambios en la cantidad de sangre y el líquido intersticial Fig. curva 4). La aorta tiene el flujo sanguíneo más rápido del cuerpo (aproximadamente 50 cm/seg). El flujo sanguíneo es más lento que la transmisión de la onda de presión. Por ejemplo. Pletismografía. incluyendo la capacidad del corazón para contraerse fuertemente. 9. la presión sanguínea. (p. la velocidad de viaje de la onda de presión se correlaciona con la influencia simpática y la presión sanguínea sistólica. Factores que afectan la presión del pulso arterial y la forma de la onda arterial. la regulación de la temperatura involucra el control del flujo sanguíneo a la piel. Los cambios en el volumen sanguíneo de los órganos pueden ser resultado de la acción del sistema nervioso autonómico sobre el sistema cardiovascular por factores ambientales (como la temperatura). 9. El latido 5 indica las consecuencias de una insuficiencia aórtica. curva 5). Los tejidos y órganos cambian de volumen a medida que los vasos sanguíneos se dilatan o se contraen y a medida que los pulsos de sangre pasan a lo largo de los vasos sanguíneos durante cada ciclo cardiaco. 10). Los cambios en el volumen del antebrazo. El estudio de los cambios del volumen sanguíneo dentro de un órgano. las emociones. la presión del pulso puede ser afectada de manera significativa por un desagüe diastólico anormalmente rápido. ej. Por último. así como la que regurgitó a través de la válvula aórtica durante la diástole previa) y la presión diastólica cae rápidamente en la aorta por la combinación de una afluencia normal hacia la circulación periférica y el rápido llenado retrógrado del ventrículo izquierdo desde la aorta (fig. 2009-2010) 85 mente severa como para colocar a la aorta en una parte más empinada de su relación de presión-volumen. cuando se necesita conservar calor. la elasticidad relativa de las arterias. Por ejemplo. la punta de los dedos) hay un pulso de aumento del volumen sanguíneo. Esto puede ocurrir en el caso de la insuficiencia aórtica. el antebrazo se sella en una cámara llena de agua (pletismógrafo). donde la presión del pulso puede aumentar porque el volumen sistólico está muy aumentado (el ventrículo debe eyectar la cantidad de sangre que lo llenó desde la aurícula izquierda. El latido 3 ilustra los efectos de una distensibilidad aórtica disminuida. el flujo sanguíneo a la piel se minimiza y cuando se genera un exceso de calor ocurre lo opuesto. 10.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Estos factores cambian en respuestas a las posiciones corporales. es conocido como pletismografía. por la actividad metabólica de un órgano y por otros factores. El latido 2 muestra los efectos de un volumen sistólico aumentado. la actividad del sistema nervioso simpático. la presión del pulso también puede aumentar (fig. 86 PRÁCTICAS DE LABORATORIO que contiene. 185-195. Pflanzer R. Principios de medicina interna. 2003. ed. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana. 3. • Colocar las guías de los cables-electrodo DII: conectar la guía roja al electrodo colocado en el tobillo izquierdo. Familiarizarse con los principios de la pletismografía y su utilidad en la evaluación cualitativa de los cambios periféricos en el volumen sanguíneo. et al. Mecánica circulatoria. Un tipo de registro pletismográfico es el fotopletismograma. Hall J. ed. Exploración física del aparato cardiovascular. El transductor fotoeléctrico convierte la luz reflejada en una señal eléctrica la cual puede ser procesada y mostrada por el registrador. • Conectar el set de cables-electrodo a la unidad BIOPAC MP30 al CH-1. ed. 3a.U. En: Guadalajara J. Cuando se ocluye el drenaje venoso del antebrazo. . 2004. p. mayor será la absorción y viceversa. desplazan el agua y este desplazamiento se mide en un registrador de volumen. el cual utiliza un dispositivo que opera convirtiendo energía luminosa a energía eléctrica y éste es llamado transductor fotoeléctrico. México: Editorial El Manual Moderno. ed. et al. eds. eds. tal como se verá en la presente práctica. 7. Lección 7 (pulso y ECG). 5. México: McGraw-Hill Interaméricana. Fauci A. 1482-1487. ed. 2002. 1-19. Biopac Student Laboratory Manual. ed. et al. 2. p. En: Frumento A. Hemodinámica. la guía blanca al electrodo colocado a la muñeca derecha y la guía negra al electrodo colocado en el tobillo derecho que servirá como tierra del sistema. et al. 2a. Fisiología médica. Ganong W. eds. Frumento A. ed. Biofísica. ed. Tratado de fisiología médica. mientras mayor sea el volumen. Guadalajara J. et al. 613-643. 1995. Distensibilidad vascular y funcionamiento del sistema arterial y venoso. 6. el índice de incremento en el volumen del antebrazo depende del flujo sanguíneo arterial (pletismografía por oclusión venosa). 19a. Madrid:Mosby/Doyma Libros. p. En: Kremer J. En: Tresguerres J.. • Conectar el cable del transductor de pulso a la unidad BIOPAC MP30 al CH-2.. 8. México: Méndez Editores. Pletismógrafo: • Colocación del sensor: tras haber limpiado la ventana del sensor. S. MANIOBRAS EXPERIMENTALES Lecturas recomendadas 1. coloque el transductor de manera tal que dicho sensor esté en la yema del dedo índice de la mano izquierda... Ilustrar la actividad eléctrica asociada con la actividad cardiaca normal y cómo se relaciona al flujo de sangre a través del cuerpo. 2001. III. OBJETIVOS EXPERIMENTALES 1. 12a. et al. Determinar la velocidad aproximada de la onda de pulso de presión que viaja entre el corazón y los dedos. 2.. 5a. West J. El transductor fotoeléctrico funciona iluminado por el brillo de un rayo de luz a través de la piel y midiendo la cantidad de luz reflejada. et al. 4. p. Cardiología. 1999. En: West J. 10a. 179-207. 3. et al. California: Biopac Systems Inc. 15-23. El corazón considerado como bomba. 15a. p. eds. Tresguerres J. p. Guyton A. Envuelva la cinta de velcrom alrededor del dedo de tal manera que el transductor encaje perfectamente. 175-199. p. Madrid: McGrawHill Interamericana de España. II. En: Ganong W. México: McGraw-Hill Interamericana. Dinámica del flujo sanguíneo y linfático. pero que no detenga la circulación. uno en la piel del borde interno del tobillo derecho y uno en la piel del borde interno del tobillo izquierdo. La sangre absorbe la luz de una manera proporcional al volumen sanguíneo. Preparación del sistema del registro i) COLOCACIÓN DE LOS SISTEMAS DE REGISTRO Registro electrocardiográfico: • Colocar tres electrodos de la siguiente manera: coloque uno en la piel de la cara anterior del antebrazo derecho justo encima de la muñeca. eds. Bases fisiológicas de la práctica médica. Fisiología humana. ed. Dinámica de la circulación periférica. 1997.A. En: Braunwald E. 4. Fisiología de la circulación. ed. Observar y registrar los cambios en los volúmenes sanguíneos periféricos y el pulso de presión bajo una variedad de condiciones experimentales y fisiológicas. En: Guyton A. et al. 2000: p. 540553. y con el brazo "colgando" durante los 60 segundos que dura el registro. duración y frecuencia de pulso) del segmento del registro seleccionado mediante el cursor. con el brazo elevado y extendido por encima de la cabeza durante los 60 segundos que dura el registro. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. relajado. relajado. y sumergiendo la mano que no se está registrando en un balde plástico lleno de agua fría o tibia durante los 30 segundos que dura el registro. ANÁLISIS DE DATOS Tras haber estipulado en las "cajas de medición" tanto el número de canal como el tipo de medición (amplitud. . El sujeto de estudio debe estar relajado durante aproximadamente 8-10 segundos. simultáneamente con las maniobras experimentales. durante los 40 segundos que dura el registro. 2009-2010) 87 ii) CALIBRACIÓN DEL SISTEMA Tras haber activado en forma secuencial el botón de "Calibración" y "OK".FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Ahora se procederá a la adquisición de los datos durante las siguientes maniobras experimentales: 1. 4. se obtendrán los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. Sujeto en reposo con el brazo arriba El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. Sujeto en reposo con variaciones de la temperatura del brazo El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. 2. SUJETO EN REPOSO IV. Sujeto en reposo con el brazo abajo El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. relajado y con los antebrazos apoyados en los descanzabrazos de la silla. 3. El pulso del sujeto de estudio será percibido subjetivamente por cualquiera de los alumnos participantes en la práctica mediante el sentido del tacto. relajado. aparecerá en la pantalla el registro del ECG y del pulso a una escala pequeña. Complétela con los datos de cada segmento de registro.( ) Tabla 1.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Cálculos y datos Fecha:____________________________ Perfil del sujeto: Nombre del sujeto de estudio ________________________________________________________________________ Estatura_____________. Medición Amplitud QRS Amplitud relativa del pulso (mV) Brazo en reposo Temperatura Brazo arriba A.__________________cm/seg. Edad____________. Velocidad. Cálculo de la velocidad del pulso: Distancia entre el esternón y el hombro del sujeto____________________cm. Peso___________. Datos segmento 3 Tiempo entre la onda R y el pico del pulso______________________seg. Distancia total______________cm. Datos segmento 1 Tiempo entre la onda R y el pico del puslo._____________________seg. Condición Brazo relajado Medición Intervalo R-R Ritmo cardiaco Intervalo pulso Ritmo pulso Intervalo R-R Ritmo cardiaco Intervalo pulso Ritmo pulso Intervalo R-R Ritmo cardiaco Intervalo pulso Ritmo pulso Intervalo R-R Ritmo cardiaco Intervalo pulso Ritmo pulso Intervalo R-R Ritmo cardiaco Intervalo pulso Ritmo pulso Canal ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM ∆T BPM CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 CH1 Ciclo 1 Ciclo 2 Ciclo 3 Media Cambio de temperatura Brazo arriba Brazo abajo Ejercicio Tabla 2. 2008-2009) 88 FOTOPLETISMOGRAFÍA INFORME Nombre del estudiante____________________________________________________________________________ Sección de Laboratorio__________________________ I. Velocidad__________________cm/seg. Sexo: Masc.( )/Fem. Distancia entre la punta del dedo y el hombro del sujeto_______________cm. . Complétela con los datos de tres ciclos de cada uno de los segmentos y calcule los promedios. sístole y diástole ventricular) son discernibles en el trazado del pulso? . De acuerdo a los datos de la tabla 2: ¿Cambió la amplitud del complejo QRS con la amplitud del pulso? ¿Por qué? 3. ¿cómo podría explicar la diferencia de velocidad. De acuerdo a los datos de la Sección A de este informe. si es qué existe alguna? 5. Preguntas 1. Describa un mecanismo que cause cambios en el volumen sanguíneo en la punta de los dedos. De acuerdo a los datos de la tabla 1: ¿Son los valores de ritmo cardiaco y ritmo de pulso similares para cada condición? ¿Por qué? 2.89 PRÁCTICAS DE LABORATORIO II. ¿Cuáles componentes del ciclo cardiaco (sístole y diástole auricular. 4. Los cambios de la presión arterial que acompañan la maniobra de Valsalva inician varios reflejos cardiovasculares con origen en barorreceptores. INTRODUCCIÓN El sistema cardiovascular está constituido por una bomba doble (el corazón) acoplada a una serie de conductos (arterias y venas). . La maniobra de Valsalva representa una espiracion forzada con la glotis cerrada. Puede llevarse a cabo voluntariamente (p. La apertura de la glotis al final de la maniobra de Valsalva hace que disminuya la presión intratorácica y que aumente de manera rápida el retorno venoso sistémico y por consiguiente el gasto cardiaco. Unidad de adquisición de datos MP30 o MP35. Juego de cables de electrodo BIOPAC (SS2L). La función principal del sistema cardiovascular es la de mantener la perfusión adecuada con sangre de los tejidos y por este medio de asegurar el suministro de oxígeno y nutrientes a los tejidos. pero aumenta la presión al interior de estas venas. Programa BIOPAC Student Lab v3.7 o más. los cuales a su vez forman dos circuitos conectados en serie. El aumento de la presión intratorácica durante la maniobra de Valsalva comprime las estructuras internas del tórax.90 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 5 MANIOBRA DE VASALVA I. 4.0/2000 o Macintosh (mínimo 68020).0.ej . El programa BIOPAC requiere de un mínimo de 4 MB libres 9. Sistema de computación: PC con Windows ´95/´98/ NT 4. Paño abrasivo. 5.2 mm Hg) hasta valores positivos tan grandes como 100 mm Hg (cuando se toca la trompeta) o 400 mm Hg (paroxismos de tos). la actividad del corazón y el tono del músculo liso vascular son controlados por mecanismos nerviosos de acción rápida y mecanismos hormonales de acción lenta. El aumento de la presión intratoracica comprime hasta la oclusión las venas intratorácicas y disminuye el retorno venoso sistémico. Para cumplir con esta importante función.durante el levantamiento de objetos pesados) o puede acompañar varios reflejos como el de defecación o tos. hacia los tejidos extratorácicos. El aumento de la presión al interior de las arterias hace que su sangre sea desplazada de manera anterograda. 10. 6. Alcohol y un paño (para limpiar las piezas de audición del estetoscopio y el diafragma del estetoscopio). La maniobra de Valsalva produce un aumento de la presión intratorácica (la cual es normalmente de ~ . Estetoscopio BIOPAC (SS30L). La compresión del corazón actúa como una fuerza adicional de propulsión de la sangre. 3. 8. los cuales pueden detectarse monitoreando la frecuencia cardiaca del sujeto examinado y midiendo su presión arterial. MATERIAL 1. Mango de presión arterial BIOPAC (SS19L). 7. Gel de electrodo. El aumento de la presión al interior de las venas no genera flujo retrogrado debido a la presencia de las válvulas en el trayecto de las venas extratorácicas. II. Los pacientes sometidos a maniobras diagnósticas como la angiografía coronaria. La presión intratorácica elevada se transmite también directamente a los vasos sanguíneos intratoracicos. la cual se suma a la fuerza de contracción del corazón. Electrodos desechables de vinilo BIOPAC (EL503). son entrenados de toser a demanda para poder mantener un gasto cardiaco mínimo en caso de ocurrencia de episodios de fibrilación ventricular. 2. el pulmonar y el sistémico. 2 12. Coloque el estetoscopio debajo del margen inferior del manguito. Si la calibración no es satisfactoria. 10. Cheque los datos de calibración. b. 3). en la zona de proyección de la arteria braquial (fig. Golpee la membrana del estetoscopio dos veces. 5. 3 . 13. Espere hasta que el registro de calibración se detenga. Inicie el programa Biopac Student Lab. Asegúrese de que la unidad MP30 esté apagada. 2. Transformador BIOPAC (AC100A). Calibración del estetoscopio: a. Fig. Desinfle el manguito hasta 40 mm Hg y después apriete OK. c. Enchufe el equipo según el siguiente esquema (fig. 12. 3. Estetoscopio (SS30L)-CH 3. 6. b. MÉTODO 1. 11. 8. Cable serial BIOPAC (CBLSERA). 2009-2010) 91 11. 9. 1 Fig. Encienda la unidad MP30. Coloque los electrodos de registro (SS2L) para la derivación II del ECG . Calibración del transductor de presión: a. Apriete Calibrado. Juego de cables de electrodo (SS2L)-CH4. Mango de presión sanguínea (SS19L)-CH 1. Infle el manguito a 100 mm Hg y después apriete OK.5-2 pulgadas por encima de la fosa antecubital (figura 3). Fig. Escriba el nombre del archivo y apriete OK. III. b.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . repítala (Rehaga). 1): a. Escoja la lección 16 (L16-BP-1). Encienda la computadora. 4. Normalmente la pantalla de calibración debería de tener un aspecto similar al de la figura 2. c. Coloque el manguito del baumanómetro (SS19L) sobre el brazo del paciente de tal manera que la marca "Arteria" este sobre la arteria braquial y que la orilla más baja del mango esté a 1. 7. Posicione el brazo del paciente a la altura del corazón. 4 . 18. 20. Introduzca un marco (apriete F9) cuando escuche los primeros tonos de Korotkoff. 23. 19. repita el registro. 24. Si es similar al presentado en la figura 4 pase al análisis de los datos. Apriete OK. Cheque el registro obtenido. 22. Repita los pasos 15 a 20 dos veces. 26. Pida al sujeto que inspire profundamente y que ejecute después una espiración forzada con la glotis cerrada durante 40 a 50 segundos. Apriete Suspend. mientras que los periodos 3 y 5 (Final de la maniobra Valsalva y Recuperación completa). Suelte la presión del manguito a una velocidad de 2-3 mm Hg/segundo. Si no. Apriete el botón Registro. Permita al sujeto que respire normalmente. IV. 25. 15.92 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 14. Repita los pasos 15 a 20. Determine el valor de la frecuencia cardiaca utilizando el registro ECG durante los 5 periodos indicados en la figura 4. 21. Infle el mango del baumanómetro hasta 160 mm Hg. Obsérvese que los periodos 2 y 4 (Inicio de la maniobra Valsalva e Inicio de la recuperación) corresponden a disminuciones de la frecuencia cardiaca. ANÁLISIS 1. 16. Introduzca otro marco cuando desaparecen los tonos de Korotkoff. Periodo 1 Control Periodo 2 Inicio maniobra Valsalva Periodo 3 Final maniobra Valsalva Periodo 4 Inicio recuperación Periodo 5 Recuperación completa Fig. 17. corresponden a aumentos de la frecuencia cardiaca. 3. Llene la siguiente tabla con los datos obtenidos. Presión arterial (mm Hg) Periodo 2 (Inicio Valsalva) Periodo 3 (Final Valsalva) Periodo 4 (Inicio recuperación) Periodo 5 (Final recuperación V. ¿Cuál de las siguientes es la explicación correcta para este evento?: a. El aumento del retorno venoso inhibe los receptores de distensión auriculares. 2. La compresión externa del nodo seno-auricular inhibe su actividad marcapaso. Al inicio de la maniobra de Valsalva (periodo 2 en la grafica 1 y en la tabla 1). Determine el valor de la presión arterial durante los 4 periodos analizados: control. Las neuronas que controlan la espiración forzada estimulan directamente el centro cardioinhibidor bulbar. la presión arterial y estimula los barorreceptores arteriales. Periodo 1 (Control) Frecuencia cardiaca/min. 2009-2010) 93 2. El aumento de la presión arterial estimula los barorreceptores arteriales. EVALUACIÓN DE LA PRÁCTICA ¡Conteste las siguientes preguntas relacionadas con el experimento anterior! 1. e. d. La disminución sostenida del retorno venoso sistémico disminuye la presión arterial e inhibe los barorreceptores arteriales. Durante la parte final de la maniobra de Valsalva (periodo 3 en la grafica 1 y en la tabla 1) se puede observar un periodo de aumento de la frecuencia cardiaca. El aumento del retorno venoso distiende la aurícula derecha y activa el reflejo de Bainbridge. b. c. recuperación temprana y recuperación tardía. e. El aumento del retorno venoso aumenta el gasto cardiaco. c. . b. d. El aumento de la presión intratorácica estimula mecánicamente el nódulo senoauricular. La disminución del gasto cardiaco que acompaña la maniobra de Valsalva estimula los quimiorreceptores aórticos. el aumento de la presión intratorácica se acompaña de un breve periodo de disminución de la frecuencia cardiaca.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . El aumento de la presión intratorácica activa directamente los quimiorreceptores aórticos. ¿Cuál de las siguientes es la explicación correcta para este evento?: a. durante la maniobra de Valsalva. c. La disminución de la frecuencia cardiaca. ed. . c.410-411. b. 332-333. b. El aumento del volumen latido.94 P RÁCTICAS DE LABORATORIO 3. Stuart Ira Fox. La disminución de la contractilidad cardiaca. Fisiología humana. esto se debe a que: a. d. 2005. La presión intratorácica aumentada reduce el retorno venoso. p. ↓ ↓ ↑ ↓ ↑ Gasto cardiaco ↑ ↓ ↑ ↓ ↑ Tono vagal cardiaco ↓ ↑ ↓ ↓ ↑ Actividad barorreceptores arteriales ↓ ↓ ↑ ↓ ↑ 5. d. c. Fisiología humana. En la gráfica se observa que al inicio de la maniobra de Valsalva (periodo 2 de la tabla) hay un aumento de la presión arterial. pero existe un incremento de la presión arterial (ver tabla 1). Pocock G y Richards Ch. Physiology. 5th ed. 2003. La disminución del retorno venoso sistémico. La presión intratorácica aumentada se transmite al corazón y aorta. Una vez finalizada la maniobra de Valsalva la apertura de la glotis permite que disminuya la presión intratorácica. p. 2003. Lecturas recomendadas 1. La presión intratorácica aumentada disminuye el gasto cardiaco. e. Berne R. Levy M. 2005. Koeppen B. b. Se activan los barorreceptores aórticos. 3. Stanton B. ed. La dilatación de las arteriolas periféricas. 4. Elsevier Mosby. 2a. Masson. p. 2. e. La bradicardia que aparece después de interrumpir la maniobra de Valsalva (periodo 4 de la grafica 1 y de la tabla 1) se asocia con una de las siguientes combinaciones de cambios: Retorno venoso a. 7a. e. d. Este último evento se explica por: a. La frecuencia cardiaca disminuye al aumentar la presión intratorácica. 448. McGraw-Hill Interamericana. 3.6 REFLEJO DE INMERSIÓN FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 6. Cabe mencionar que los niños sobreviven más tiempo que los adultos en condiciones de hipoxia . 2. Los principales cambios inducidos por el reflejo de inmersión son: 1. Disminucion de la frecuencia cardiaca (bradicardia). La vasoconstricción periférica. se puede producir una ligera bradicardia cuando se detiene de manera voluntaria la respiración. que disminuye el flujo sanguíneo en las extremidades. Unidad de adquisición de datos BIOPAC MP30/ MP35. Programa BIOPAC Pro instalado. III. 4. Grabar los cambios en la frecuencia cardiaca que ocurren cuando un sujeto sumerge su cara en agua fría. 2009-2010) 95 I. Recipiente con agua y hielo. donde se realizan conexiones de las vías aferentes con los núcleos motores del nervio vago y los centros vasoconstrictores del tallo cerebral. . El desplazamiento de la sangre de las extremidades hacia la cavidad torácica para evitar el colapso de los pulmones bajo las altas presiones durante la sumersión a grandes profundidades. 3. II. ’98 ó superior. Como resultado se producen bradicardia y va- soconstricción periférica. La magnitud del reflejo de inmersion es mayor cuando la temperatura del agua utilizada para el experimento es mas reducida. 2. Debido al reflejo de inmersión una persona. Electrodos de registro desechables BIOPAC (EL503). la cual fue comprobada en 20 % de los sujetos estudiados. Termómetro. que se puede observar en todos los mamíferos y es más intenso en animales marinos como ballenas o focas. INTRODUCCIÓN La sumersión de la cabeza en agua produce el reflejo de inmersión. OBJETIVOS 1. conciente o inconciente. para aumentar el flujo sanguíneo hacia los órganos vitales (especialmente hacia el cerebro) y disminuir la perdida de calor. 8. 7. lo que aumenta el tiempo de inmersión. Cuando la cara está sumergida en agua se estimulan los receptores sensibles al agua y a la temperatura de la cavidad nasal y de las regiones perinasal y peribucal. 5. En los seres humanos. PC con sistema operativo Windows ’95. Juego de electrodos BIOPAC SS2L. MATERIAL 1. Estos receptores transmiten informaciones a través del nervio trigémino hacia el cerebro. el reflejo de inmersión NO se produce cuando las extremidades son introducidas en agua. Investigar el mecanismo de este reflejo. Toalla(s). 9. En cambio. El reflejo de inmersión produce una disminución del consumo de oxígeno del organismo. puede sobrevivir más tiempo sin oxígeno bajo el agua. 2. Gel de electrodos. Fig. 6. 13. 4. Anote la temperatura de agua. Prepare el paciente para que sumerja su cara en agua fría. METODO 1.5 y siga las indicaciones (EC6I) 5. 2007-2008) IV. Si es posible. 1 . El periodo de inmersión debe durar 2030 segundos.96 PRÁCTICAS DE LABORATORIO FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Entregue una toalla al sujeto para secar su cara. b) Tobillo derecho: electrodo acoplado al cable negro (tierra). Anote el valor de la temperatura del agua. Llene otro vaso con agua a la temperatura del cuarto. Encienda la computadora. 9. llene un tercer vaso con agua y hielo a una temperatura más baja que 10°C. 10. 1). Después de la recuperación de la frecuencia control repetir desde el paso 11 con inmersión en el agua fria. Fije los electrodos a la superficie del cuerpo para obtener la derivación estándar II (fig. 2. Grabe durante 30 segundos el ECG de reposo del paciente. 11. 12. 15. Oprima F9 cuando el sujeto saque la cara del agua y después oprima Stop. 2): a) Muñeca derecha: electrodo acoplado al cable blanco (electrodo negativo). No es necesario calibrar el sistema. 7. Cargue el programa BSL PRO. Encienda la unidad de adquisición (MP30/MP35). La temperatura del agua debe de ser entre 10 y 15 °C. Oprima Start y F9 cuando el sujeto inmersa su cara en agua fría.gtl. 16. Llene un recipiente con agua y hielo. c) Tobillo izquierdo: electrodo acoplado al cable rojo (electrodo positivo). 8. o bien cargue el programa Biopac Student Lab (BSL) en la práctica No. 14. mientras este se encuentra de pie y cerca del recipiente con agua fría. 2 Fig. Repita la operación de inmersión de la cara en el mismo vaso por lo menos una vez. 3. Acople el juego de electrodos (SS2L) al canal 1 (CH1) de la unidad de adquisición de datos (MP340/ MP35) (fig. Abra la práctica: Reflejo de inmersión seleccionando: File menú>Open>choose file type:Graph Template (*GTL)>File Name: DiveReflex. • Adicionalmente a la frecuencia cardiaca. Por ejemplo estudie el efecto de la inmersión de la mano en agua fría sobre la frecuencia cardiaca. Las designaciones de los canales en el modo revision de los datos seran: CH1 ECG no procesado CH40 Frecuencia cardiaca (BPM) Promedie los cambios de frecuencia cardiaca de por lo menos dos ensayos. monitoree el volumen pulmonar para determinar la relación entre el volumen pulmonar en el momento de la apnea y la frecuencia cardiaca. V. Defina la frecuencia cardiaca de inmersión como el promedio de los últimos 5 segundos del periodo de inmersión.PRÁCTICAS DE LABORATORIO De ser posible realice la prueba con el agua con temperatura < 10° c. . ANÁLISIS Ingrese al modo de revision de los datos y escoja el archivo grabado. Defina la frecuencia cardiaca control como el promedio de la frecuencia cardiaca durante los 10 segundos que preceden la inmersión de la cara en el agua. FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 2009-2010) 97 Correlacione los cambios de frecuencia cardiaca generados por el reflejo de inmersion con la temperatura del agua utilizada para generar este reflejo Llene el reporte que aparece en la siguiente pagina Estudios opcionales • Proyecte otro experimento utilizando el mismo equipo. Mammalian dive reflex Preguntas 1. ¿Como se explica el cambio de frecuencia cardiaca observada? . que tiene alguna importancia si el sujeto esta de pie o sentado cundo se realiza el registro del ECG? ¡Explique su respuesta! 2. 22: 886-887.98 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Reflejo de inmersión . Gerke M. 3. Beer K.informe Nombre _______________________________ Temperatura del agua: ___________________ Frecuencia cardiaca control: _______________ Frecuencia cardiaca despues de la inmersion de la cara en agua: _________ Cambio en la frecuencia cardiaca (control-inmersón): _______________ Referencias (sitios WEB) 1. Askew D. Erik Seedhouse .Unraveling the mammalian diving reflex. exposure to cold and face immersion in water to diving bradycardia in humans. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology 1995. Muller M and Reichman C. 2. Marsh N. 4. E-Medicine Drowning overview .¿ Cree Ud.SCUBA Diving & Physiology. ¿Como cambia la frecuencia cardiaca cuando el sujeto inmersa su cara en el agua? 3. Immersion Effect II . Relative contributions of voluntary apnea. Durante la inspiración forzada la presión intrapleural alcanza valores tan bajos como de -30 mmHg con la pro- Fig. disminuye a cerca de –6 mmHg al iniciarse la inspiración y los pulmones son atraídos a una posición más expandida.5 mmHg.7 ESPIROGRAFÍA FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Los pulmones se deslizan con facilidad sobre la pared torácica y se adhieren fuertemente a ella. Si los pulmones pierden su elasticidad. la presión intrapleural seguiría la línea punteada y que la curva real de presión está desviada a la izquierda por esas resistencias. 1. tal y como dos pedazos mojados de vidrio que se deslizan uno sobre el otro pero no se dejan separar. Durante el reposo. la espiración es pasiva en el sentido de que no se requiere de la contracción de los músculos espiratorios para disminuir el volumen torácico. La inspiración es un proceso activo. Los pulmones se expanden al nacer y al final de la espiración tranquila su tendencia a retraerse de la pared torácica sólo es equilibrada por la tendencia de la pared torácica a retraerse en dirección opuesta. Como consecuencia. La presión en el interior de las vías respiratorias se vuelve ligeramente positiva y el aire fluye al exterior de los pulmones. INTRODUCCIÓN La ventilación pulmonar representa los flujos de aire de entrada y de salida entre la atmósfera y los pulmones. Sin embargo. 2009-2010) 99 PARTE I VOLÚMENES Y CAPACIDADES PULMONARES I. existe sólo una capa delgada de líquido entre los pulmones y la pared torácica. La presión intrapleural. Si la pared torácica se abre. Al finalizar la inspiración. 1). los pulmones se colapsan. La presión en el espacio entre los pulmones y la pared torácica (presión intrapleural) es subatmosférica (fig. Esta contracción ejerce una acción de freno sobre las fuerzas de retracción y hace más lenta la espiración. que es normalmente de –2. hay cierta contracción de los músculos inspiratorios en la parte inicial de la espiración. 1). el tórax se expande y adquiere forma de barril. Nótese que si no hubiera resistencia en las vías respiratorias y el tejido. Los pulmones y la pared torácica son estructuras elásticas. la presión en las vías respiratorias se vuelve ligeramente negativa y el aire fluye al interior de los pulmones (fig. la retracción elástica de los pulmones y de las estructuras de la caja torácica provocan que el volumen del tórax regrese al valor espiratorio. Cambios en la presión intrapleural e intrapulmonar en relación con la presión atmosférica durante la inspiración y espiración. Normalmente. 89 . La contracción de los músculos inspiratorios aumenta el volumen torácico. Después puede calcularse fácilmente la CPT sumando la CI a la CRF y. finalmente. Capacidad residual funcional (CRF).100 PRÁCTICAS DE LABORATORIO pequeños y asténicos. para medir CRF. Diagrama que muestra las excursiones respiratorias durante la respiración normal y durante la inspiración y espiración máximas. Por el contrario. También se calculará la capacidad inspiratoria. Es la máxima cantidad de aire que se puede expulsar de los pulmones después de una inspiración máxima y espirando al máximo (aprox. Luego se comparará la capacidad vital observada con la capacidad vital predicha. En general. . corriente Capacidad residual funcional Volumen de reserva de espiración Volumen residual Fig. Es la cantidad de aire que queda en los pulmones después de una espiración normal (aprox. CE = VC + VER 3. En esta lección vamos a medir el volumen corriente. CI y CE) pueden determinarse directamente midiendo con un espirómetro simple el aire inspirado o espirado durante maniobras respiratorias adecuadas. Los volúmenes y capacidades pulmonares se modifican en las enfermedades pulmonares. 5 800 ml). Capacidad pulmonar total (CPT). Capacidad vital (CV). capacidad vital y el porcentaje observado de la capacidad vital. Es la cantidad de aire que se encuentra en los pulmones al final de una inspiración forzada (aprox. 4 600 ml). La siguiente ecuación puede emplearse para obtener de inspiración normal y vaciando al máximo sus pulmones. 2 300 ml). el volumen inspiratorio de reserva y el volumen espiratorio de reserva. el VR restando la CV de la CPT. CV. CPT = VIR +VC + VER +VR Todos los volúmenes y capacidades pulmonares son 2025 % menores en la mujer que en el hombre y son mayores en personas altas y atléticas que en los sujetos Volumen de reserva inspiratoria Capacidad inspiratoria Capacidad vital Capacidad pulmonar total Vol. CPT y VR se requieren técnicas espirográficas especiales. CRF = VER + VR 4. CV = VIR + VC + VER 5. VC. 3. en la práctica clínica se mide la CRF mediante pletismografía o con espirometría con dilución de helio. Los volúmenes y capacidades pulmonares (VRI. VRE. p. Ventilación. 4. S. sin embargo. 525-538. Lección 12 (función pulmonar I). Ganong W. p. peso y altura. et al. Espere dos segundos. et al. 701-720. Enfermedades del aparato respiratorio (alteraciones de la función respiratoria). 1-90. Hall J.041H-0. Guyton A. et al. México: Editorial El Manual Moderno. Biopac Student Laboratory Manual.. 1993. 2002. CV = capacidad vital. México: Méndez Editores. 10a. En: Guyton A. 2a. Empuje hasta el fondo el émbolo en un tiempo aproximado de un segundo. . Tras haber llevado el émbolo de la jeringa de calibración completamente hacia fuera y activado en forma secuencial el botón de "Calibración" y "OK". eds. OBJETIVOS EXPERIMENTALES 1. Cardinalli D. p. Enfermedades Respiratorias. Manifestaciones clínicas. Valoración torácica y manifestaciones clínicas comunes de las enfermedades respiratorias. México: McGraw-Hill Interamericana. U. MANIOBRAS EXPERIMENTALES Preparación del sistema de registro i) COLOCACIÓN DE LOS SISTEMAS DE REGISTRO • Coloque un filtro bacteriológico en la "boquilla" de la jeringa de calibración. Tresguerres J. ii) CALIBRACIÓN DEL SISTEMA 2. 3. México: McGraw-Hill Interaméricana. ed. aparecerá en la pantalla el registro de la calibración. et al. 7. ed. Principios de medicina interna. 2a. et al. 1-19. eds. Ecuaciones para predecir la capacidad vital Hombre Mujer CV = 0. • Conecte el cable del transductor de flujo de aire a la unidad BIOPAC MP30 al CH-1. Comparar los valores observados de volumen y capacidad con los valores calculados. H = estatura en centímetros. En: Tresguerres J.. 8. et al. 2003. En: Braunwald E. ed. Tratado de fisiología médica. En: Ganong W. Mecánica de la respiración. 187-197. Fauci A. 6.. 13a. Función pulmonar. Repita el procedimiento anterior (1 a 4) en cuatro ocasiones más. 2004. Comparar los valores normales de volúmenes y capacidades pulmonares de sujetos de diferente sexo. En: Des Jardins T. Fisiología médica. ed. II. Bases fisiológicas de la práctica médica. 15a. Exploración funcional del aparato respiratorio.6 CV = 0. En: Aparato respiratorio. ed. p. et al. edad.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . registrar y/o calcular volúmenes y capacidades pulmonares. 2. 3. California: III. ed. p. ed. 5.022 A -3. Traccione el émbolo hacia fuera completamente en un tiempo de un segundo aproximadamente. Pflanzer R. eds. p. ed. 2. en ese momento se deberá realizar el ciclo del pistón de la jeringa en cinco ocasiones de la siguiente manera: 1. Des Jardins T. México: Editorial Médica Panamericana. A. 10a. Espere dos segundos. Observar experimentalmente. 1983. 2001. 2009-2010) 101 los valores de la capacidad vital predicha para hombres o mujeres según su estatura y edad. Best and Taylor. A = edad en años. 2000.018 A-2. Madrid: McGraw-Hill Interamericana de España. 16971704. Ventilación pulmonar. 19a.69 Biopac Systems Inc. México: Editorial El Manual Moderno. ed. Lecturas recomendadas 1. En: Kremer J. de otros factores y por lo tanto hasta 80 % de los valores predichos de CV serán todavía considerados como normales. p.052H-0. 113-122.. ed. eds. 1999. En: Dvorkin M. Fisiología humana. 3. 611-625. • Inserte el ensamblaje filtro/jeringa de calibración en el transductor de flujo de aire. p. Cosío I. 4. La capacidad vital depende. en reposo y relajado mientras realiza ciclos ventilatorios normales (inhalación-espiración). ANÁLISIS DE DATOS Se estipulará en las "cajas de medición" tanto el número de canal como el tipo de medición. La diferencia de amplitud entre el punto inicial y el final del área seleccionada (∆). el sujeto de estudio realizará una inhalación tan profunda como le sea posible e inmediatamente exhalará de tal manera que regrese al punto de espiración normal. 3. Comparar los resultados. La diferencia de amplitud entre el valor máximo y el mínimo (p-p). el cual simulará el aumento del espacio muerto en aproximadamente 300 ml. 4. 2. tras haber presionado el botón de "Registrar". luego de esto. 4. Realizar las mismas maniobras pero ahora el sujeto respirará a trabés de un snorkel. . En este momento. sustituyéndola por una pieza bucal. El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. 3. se procederá a capturar datos durante los 20 segundos (de 3-5 ciclos ventilatorios normales). 2. 6. se desacoplará la jeringa de calibración del transductor. 8. volverá a realizar ciclos ventilatorios normales durante otros 20 segundos. Finalizado los 20 segundos. El valor mínimo de amplitud (min). IV. sosteniendo verticalmente el transductor con una pinza de nariz obturándole las fosas nasales (durante todo el tiempo que dure cada maniobra) y comenzará a respirar a través del transductor de flujo de aire. El sujeto debe permanecer sentado. 7. El valor máximo de amplitud (max). Sujeto en reposo con ciclos ventilatorios normales con inspiración y espiración profundas. luego de esto volverá a realizar ciclos ventilatorios normales durante otros 20 segundos. esto es: 1.102 P RÁCTICAS DE LABORATORIO Una vez calibrado el sistema. Después de haber registrado de 3-5 ciclos ventilatorios normales. el sujeto de estudio realizará una exhalación tan profunda como le sea posible e inmediatamente inspirará de tal manera que regrese al punto de espiración normal. Con ciclos ventilatorios normales (inhalación-espiración) y con ciclos ventilatorios con inspiración y espiración profundas. Se procederá a la adquisición de los datos durante las siguientes maniobras experimentales secuenciadas: 1. se concluirá el procedimiento de adquisición de datos y se activará en forma secuencial el botón de alto y el de hecho. obteniéndose los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. Transcurrido este tiempo. 5. Se seleccionará un segmento del registro mediante el cursor. Volumen corriente ______.60 CV = 0. Mediciones de volumen Perfil del sujeto: Nombre del sujeto de estudio _______________________________________________________________________ Estatura__________.2.__________________ CV = Capacidad vital (litros). Peso_____________. A = Edad (años).( ) / Fem. Altura ___________ Sexo: Masc. Volúmenes y capacidades observadas: Tipo de volumen Volumen corriente (VC) Volumen inspiratorio de reserva (VIR) Volumen espiratorio de reserva (VER) Capacidad vital (CV) Medición (L) Volumen residual (VR) usado __________ litros.041 H – 0. Predicción de CV___________litros B. Utilice la siguiente ecuación para predecir la capacidad vital: Ecuación predictiva de la capacidad vital Hombres Mujeres CV = 0. Volumen espiratorio de reserva _____________ .FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Utilice los datos obtenidos para calcular las siguientes capacidades: Capacidad Inspiratoria (CI) Espiratoria (CE) Funcional residual (CRF) Pulmonar total (CPT) Fórmula CI= VC + VIR CE= VC + VER CRF= VER + VR CPT= VIR + VC + VER + VR Resultado Compare los volúmenes pulmonares del paciente con los volúmenes normales expuestos en la Introducción. ( ) A. H = Altura (cm).69 Fecha. Volumen inspiratorio de reserva ______.022 A . Edad_____________. 2009-2010) 103 ESPIROGRAFÍA (Parte I) Volúmenes y capacidades pulmonares INFORME Nombre del estudiante______________________________________________________________________________ Sección de laboratorio_____________________ I. Predicción de la capacidad vital.3.018 A .052 H – 0. Por lo tanto. ¿Por qué la capacidad vital predicha varía con la estatura? 2. II. ¿Explique qué otros factores aparte del sexo y la estatura pueden afectar la capacidad pulmonar? 3.104 PRÁCTICAS DE LABORATORIO C. Las capacidades vitales son dependientes de otras variables además de la edad y la altura. una capacidad vital observada hasta del 80% de la capacidad vital predicha es todavía considerada como normal. Observaciones vs capacidad vital predicha: ¿Cuál es la razón entre la capacidad vital observada y la predicha? CV observada ___ litros CV predicha _______ litros CVOx100: CVP=_______% Nota. ¿Cómo variará el volumen corriente al medirlo luego de un ejercicio vigoroso? . Preguntas 1. VEF3) (fig. 94 % para VEF2 y 97 % para VEF3.1). Capacidad vital forzada (CVF). indispensable para el metabolismo celular. . Normalmente la CVF = CV. 1. La cantidad máxima de aire que una persona puede exhalar con la mayor fuerza y rapidez posible (forzadamente) después de una inhalación máxima (fig. La VVM en el varón sano entre 20 y 30 años es de casi 170 L/min.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . La VVM disminuye de manera progresiva en las enfermedades Fig. 2 y 3 segundos (VEF1. Mediante una espirometría simple se pueden medir los siguientes flujos pulmonares: • Capacidad vital forzada (CVF). en intervalos de 1. Normalmente la razón porcentual entre el VEF y la capacidad vital forzada (CVF) es de 83 % para VEF1. • Volumen espiratorio forzado (VEF). En la enfermedad obstructiva aumenta el tiempo necesario para exhalar un cierto volumen de gas de manera forzada y por lo tanto la razón porcentual VEF/CV disminuye. VEF2. Es la cantidad de aire ventilado en un minuto por un individuo que hace un esfuerzo respiratorio máximo (que respira lo más profundo y rápido posible). 2009-2010) 105 8 ESPIROGRAFÍA PARTE II VELOCIDADES DE FLUJO PULMONAR I. • Ventilación voluntaria máxima (VVM). La medición de los volúmenes pulmonares y de los flujos de aire a través de las vías respiratorias son herramientas importantes de diagnóstico para varias enfermedades pulmonares. La VVM normal para la mujer sana entre 20 y 30 años es de unos 110 L/min. remover el dióxido de carbono (CO2) que resulta del catabolismo. INTRODUCCIÓN El sistema respiratorio realiza las siguientes funciones importantes: proporcionar el oxígeno (O2). 2). Es el volumen de aire que una persona exhala a través de una expiración forzada que sigue después de una inspiración forzada. Fig. "A" es el punto de inspiración máxima y el punto de comienzo de una CVF. Volumen espiratorio forzado en periodos de tiempo (VEF 1). y ajustar el balance ácido-base a través del control de la presión parcial del CO2 en la sangre. 2. a las abundantes secreciones mucosas y a la constricción del músculo liso bronquial. El FEF 25-75 % disminuye progresivamente con la edad. Esto se debe a la inflamación de las vías respiratorias. los volúmenes y las velocidades de los flujos de aire que entran y salen de sus pulmones también aumentan. Cuando la enfermedad está totalmente establecida. Ventilación máxima voluntaria (VVM) obstructivas (fig. Trazados de la capacidad vital forzada (CVF). En la clínica esto se traduce por la aparición de un sonido tipo silbido que se genera durante el ciclo respiratorio. en una persona normal (arriba) y en una con enfermedad obstructiva (abajo). . Las enfermedades pulmonares crónicas pueden ser clasificadas en dos categorías importantes: Fig.5 L/seg (270 L/min) y para la mujer sana entre 20 y 30 años es de unos 3. Enfermedades pulmonares obstructivas. tales como el asma. disminuye la relación VEF1/CVF. Dentro de una persona. El FEF 25-75 % para el hombre sano entre 20 y 30 años es de unos 4. Es un índice calculado utilizando la CVF. la velocidad del flujo de aire que entra y sale de los pulmones está reducida. 3. 3). que reducen los diámetros de las vías respiratorias y aumentan su resistencia al flujo. Fig. 2008-2009) 43 L/seg (20 L/min) (fig. Flujo espiratorio forzado 25 a 75 % (FEF 25-75 %). En la enfermedad obstructiva se han reportado valores del FEF 25-75 % tan bajos como 0. Fig. especialmente las de tipo crónico.3 1. 2. 4. Este índice se emplea con frecuencia para determinar la permeabilidad de las vías respiratorias de tamaño mediano en las enfermedades pulmonares obstructivas.106 PRÁCTICAS DE LABORATORIO FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . A medida que aumentan los niveles de actividad física. Enfermedades pulmonares obstructivas En las enfermedades pulmonares obstructivas. la velocidad y la profundidad de la ventilación no son estáticos sino que más bien deben ajustarse constantemente a las cambiantes necesidades del cuerpo. Estos parámetros están alterados en ciertas enfermedades pulmonares. En la enfermedad pulmonar obstructiva la alteración espirográfica patognomónica es la disminución de la velocidad del flujo espiratorio. Representa el flujo de aire que se produce durante un cambio de 25 a 75 % de la CVF.5 L/ seg (210 L/min). 2007-2008) FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Enfermedades pulmonares restrictivas. 4). 5. • Flujo espiratorio forzado 25-75 % (FEF 25-75%). Volumen espiratorio forzado (VEF). De hecho. en las enfermedades obstructivas el volumen residual (VR) se eleva y la capacidad vital disminuye. Prueba No. Enfermedades pulmonares restrictivas En la enfermedad pulmonar restrictiva la capacidad de una persona de inflar y desinflar los pulmones está reducida y. Por consiguiente. el VR suele estar elevado.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Sin embargo. En las enfermedades pulmonares parenquimatosas el VR suele estar disminuido y se conserva la velocidad del flujo espiratorio forzado. Curvas de flujo-tiempo en cuadros normal y restrictivo. Si la fuerza de los músculos espiratorios está disminuida significativamente. bien por debilidad de los músculos espiratorios o bien por deformidad de la pared costal que es anormalmente rígida para volúmenes inferiores a la capacidad residual funcional (CRF). Por ejemplo. Ventilación voluntaria máxima (VVM). En esta práctica realizaremos dos pruebas para medir las velocidades del flujo pulmonar: 1. debido a la debilidad de los músculos inspiratorios o rigidez de la pared torácica se ejercen fuerzas de distensión insuficientes sobre un pulmón por lo demás normal.). 2009-2010) 107 al igual que la FEF 25-75% (fig. el VR no Fig. 6. en la fibrosis pulmonar (la cual ocurre en la enfermedad de mineros de carbón). Las enfermedades obstructivas se caracterizan también por el atrapamiento aéreo. con un esfuerzo máximo. de espirar cerca de 66-83 % de su capacidad vital en un segundo (VEF1). En las enfermedades pulmonares restrictivas también se observa un aumento del volumen corriente (VT) de reposo. 6). es decir. En el patrón extraparenquimatoso. En las enfermedades pulmonares restrictivas el alvéolo tiende a colapsarse en la espiración dado que la capacidad pulmonar total está disminuida. los valores de la CPT son inferiores a los teóricos. una persona puede sufrir de enfisema y fibrosis del pulmón al mismo tiempo. Como consecuencia. disminuye la capacidad para espirar con rapidez y disminuye la razon VEF 1/CVF aunque no exista una obstrucción al flujo de aire. 1. Esto también ocurre en la silicosis y otras enfermedades crónicas del pulmón. Recordemos que en condiciones normales el volumen residual no se moviliza en la espiración aun cuando sea máxima y forzada. 5). El patrón restrictivo se puede dividir en dos subgrupos según la localización de la enfermedad pulmonar (parenquimatosa o extraparenquimatosa). 75-94 % de su capacidad vital en dos . En consecuencia. suele afectarse de manera significativa y están conservados los flujos espiratorios. Volumen espiratorio forzado (VEF) En esta prueba se grabarán y medirán los volúmenes espiratorios forzados en 1. Por ejemplo. dado que este tipo de enfermedades tiende al colapso del alvéolo. la capacidad vital está reducida debido a reducciones en los volúmenes inspiratorios y espiratorios de reserva. aunque cada enfermedad puede tener un origen diferente y puede haber comenzado en tiempos diferentes. la razón porcentual entre VEF 1 y CVF es a menudo supranormal. Es frecuente encontrar en una persona enfermedades pulmonares restrictivas y obstructivas simultáneamente. como resultado. En el patrón extraparenquimatoso con alteraciones tanto de la inspiración como de la espiración también está limitada la capacidad para espirar. algunos volúmenes y capacidades pulmonares están por debajo de lo normal. 2. que consiste en el aumento de la capacidad residual funcional (CRF) debido que el pulmón no puede eliminar todo el volumen espiratorio de reserva normal. 2. en la cual los pulmones llegan a ser menos distensibles. La relación VEF 1/CVF es variable y depende de la fuerza de los músculos espiratorios. comparando trazados de espiración forzada. el volumen residual puede estar disminuido. desproporcionadamente alta en relación con el tamaño de los pulmones (fig. El adulto normal es capaz. 2 y 3 segundos (fig. caracterizado sólo por disfunción inspiratoria. California: Biopac Systems Inc. ii) CALIBRACIÓN DEL SISTEMA 2. En: Des Jardins T. edad y talla. Mecánica de la respiración. Exploración funcional del aparato respiratorio. 525-538. Enfermedades del aparato respiratorio (alteraciones de la función respiratoria). México: Editorial El Manual • Colocar un filtro bacteriológico en la "boquilla" de la jeringa de calibración. el sujeto inspira y espira tan profundo y tan rápido como le sea posible (> 1 respiración/segundo). • Insertar el ensamblaje filtro/jeringa de calibración en el transductor de flujo de aire. Ya que la ventilación máxima es difícil de mantener. Prueba No. et al. et al. • Conectar el cable del transductor de flujo de aire a la unidad BIOPAC MP30 al CH-1. Best and Taylor. et al. el sujeto hiperventila por un máximo de 15 segundos. Enfermedades Respiratorias. 10a. Madrid: McGraw-Hill Interamericana de España. ed. Normalmente. Valoración torácica y manifestaciones clínicas comunes de las enfermedades respiratorias. Los valores normales varían con el sexo. La mayoría de las personas tienen problemas al respirar cuando sólo usan entre 30 y 40 % de su VVM disponible. ed. La capacidad vital de una paciente con asma puede ser normal si es medida en una prueba de capacidad vital de estado único.108 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Moderno. p. 1-90. el volumen promedio por ciclo respiratorio (litros) se multiplica por el número de ciclos por minuto. ed. II. 6. 2000. Se miden el volumen corriente y la frecuencia respiratoria. p. segundos (VEF2) y 78-97 % de su capacidad vital al final del tercer segundo (VEF3). p. Bases fisiológicas de la práctica médica. et al. 1999. 5. 187-197. p. eds. 2a.2. México: McGraw-Hill Interaméricana. 1993. 611-625. El VVM es una medida de cuanto el sistema pulmonar limita la capacidad de trabajar o ejercitarse. En: Aparato respiratorio. para calcular la VVM. Fauci A. En: Dvorkin M. 4. 2001. III. ed. et al. Biopac Student Laboratory Manual. registrar y/o calcular el volumen espiratorio forzado (VEF) y la ventilación voluntaria máxima (VVM). México: Editorial El Manual Moderno. Sin embargo. ed. Ventilación voluntaria máxima (VVM) Para realizar esta prueba. En: Guyton A. México: McGraw-Hill Interamericana. En: Ganong W. 701-720. La VVM puede también ser extrapolada del volumen de aire total movido en un periodo de 12 segundos (volumen total en 12 segundos x 5 = VVM). 8. p. 13a. Guyton A. MANIOBRAS EXPERIMENTALES Preparación del sistema del registro i) COLOCACIÓN DE LOS SISTEMAS DE REGISTRO Lecturas recomendadas 1. 2. OBJETIVOS EXPERIMENTALES 1. Ventilación. La VVM tiende a reducirse tanto en las enfermedades pulmonares obstructivas como en las restrictivas. En: Kremer J. S. ed. Cosío I.. Tras haber traccionado el émbolo de la jeringa de cali- . 2a. la cual permite tomarse tanto tiempo como sea necesario para la inhalación y exhalación máxima. Hall J. Des Jardins T. et al. p. p. 7. ed. eds. U. 2003. México: Méndez Editores. 10a. el volumen espiratorio forzado (VEF) está reducido ya que una abundante secreción mucosa y la contracción de los músculos lisos bronquiales reducen los diámetros de las vías respiratorias y aumentan la resistencia al flujo. 1983. 15a. Observar experimentalmente. Pflanzer R. 3. ed.. Principios de medicina interna. 1-19. et al. Fisiología humana. Cardinalli D. A. ed. p. Tresguerres J. Fisiología médica. ed. Función pulmonar. eds. Comparar valores observados del VEF con los normales predichos. 113-122. 1697-1704. México: Editorial Médica Panamericana. 2004. Lección 13 (función pulmonar II). 3. un máximo de 50 % de la VVM puede ser utilizada para ejercitarse por un periodo de más de 10 minutos. Luego.. 2002. Tratado de fisiología médica. Ventilación pulmonar. Comparar los valores de la VVM con los otros de su clase. Ganong W.. En: Braunwald E. eds. 19a. Manifestaciones clínicas. En: Tresguerres J. Traccione el émbolo hacia fuera completamente en un tiempo de un segundo aproximadamente. Se procederá a la adquisición de los datos durante las siguientes maniobras experimentales secuenciadas: Volumen espiratorio forzado (FEV) El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. 2009-2010) 109 bración hacia fuera completamente y activado en forma secuencial el botón de "Calibración" y "OK". mientras realiza ciclos ventilatorios normales (inhalación-espiración). En este momento. Espere dos segundos. en reposo y relajado. Empuje hasta el fondo el émbolo en un tiempo aproximado de un segundo. ANÁLISIS DE DATOS Tras haber entrado al modo de "Revisión de datos guardados" y escogido el archivo a analizar: a) FEV. Se seleccionarán diferentes segmentos del registro mediante el cursor y se obtendrán los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. volverá a realizar ciclos ventilatorios normales durante otros 20 segundos. luego de esto. "Muestre grillas" y "OK". el sujeto de estudio hiperventilará tan profunda y rápidamente como le sea posible durante 12-15 segundos. se seleccionará el área de exhalación máxima (al menos tres segundos de ancho) y se activará en forma secuencial el botón "Inicio FEV" y el de "Comenzar MVV". 2. En este momento. • La diferencia de amplitud entre el valor máximo y el mínimo (p-p) en CH-1. Transcurrido este tiempo. se desacoplará la jeringa de calibración del transductor sustituyéndola por una pieza bucal. tras haber presionado el botón de "Registrar" se procederá a capturar datos durante 20 segundos (de 3-5 ciclos ventilatorios). El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. IV. . El sujeto debe permanecer sentado sosteniendo verticalmente el transductor con una pinza de nariz obturándole las fosas nasales (durante todo el tiempo que dure cada maniobra) y comenzará a respirar a través del transductor de flujo de aire. luego de esto. Se activará en forma secuencial al "Archivo del menú". • La diferencia de amplitud entre el valor máximo y el mínimo (p-p) en CH-1. Repita el procedimiento anterior (del 1 al 4) en cuatro ocasiones más. tras haber presionado el botón de "Registro MVV". esto es: • La diferencia en tiempo entre el punto inicial y el final del área seleccionada (∆T) en CH-1. aparecerá en la pantalla el registro de la calibración. mientras realiza ciclos ventilatorios normales (inhalación-espiración). Después de estos 20 segundos se concluirá el procedimiento de adquisición de datos activando el botón de "Alto". b) MVV.1: Ventilación voluntaria máxima (MVV). Espere dos segundos. el sujeto de estudio realizará una inhalación tan profunda como le sea posible. Transcurrido este tiempo. "Preferencias de muestra". sostendrá la respiración durante 3-5 segundos y procederá a exhalar tan rápidamente y completamente como le sea posible. Una vez calibrado. esto es: • La diferencia en tiempo entre el punto inicial y el final del área seleccionada (∆T) en CH-1. en ese momento se deberá realizar el ciclo del pistón de la jeringa en cinco ocasiones de la siguiente manera: 1. 4. Se estipulará en las "cajas de medición" tanto el número de canal como el tipo de medición. Después de estos 20 segundos se concluirá el procedimiento de adquisición de datos activando el botón de "Alto" y se seleccionará el área de exhalación máxima (al menos tres segundos de ancho) y se activará en forma secuencial el botón "Inicio FEV" y el de "Comen- zar MVV". en reposo y relajado.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 3. entonces se estipulará en las "cajas de medición" tanto el número de canal como el tipo de medición. volverá a realizar ciclos ventilatorios normales durante otros 20 segundos. se procederá a capturar los datos durante 20 segundos (de 3-5 ciclos ventilatorios). .110 P RÁCTICAS DE LABORATORIO Se seleccionarán diferentes segmentos del registro mediante el cursor y se obtendrán los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO , 2009-2010) 111 ESPIROGRAFÍA (Parte II) Velocidades de flujo pulmonar INFORME Nombre del estudiante______________________________________________________________________________ Sección de laboratorio_____________________ I. Cálculo de datos Perfil del sujeto: Nombre del sujeto de estudio _______________________________________________________________________ Estatura__________, Edad_____________, Peso_____________, Altura ___________ Sexo: Masc.( ) / Fem. ( ) A. Capacidad vital (CV): CH1 medición p-p:_______________________________ B. Comparación de FEVx% para valores normales: In terv alo  d e  tiem p o  (se g )  V olum en   e sp ir atorio  fo rza do  (F EV)   [p ‐p ]        Ca p acid ad   v ital ( CV )  d esd e A               FEV /CV   c álcu lo  FEV/ CV  x  100 =  %   cálculo   F EV  Pro m edio   para  refe ren cia        Fecha__________________                     A. Mediciones MVV: 1. Número de ciclos en intervalos de 12 segundos: ___________________ 2. Calcule el número de ciclos respiratorios por minuto (RR): RR = Ciclos/ min = Número de ciclos en intervalos de 12 segundos x 5. Número de ciclos en intervalos de 12 segundos (de lo anterior): _________ x 5 = __________ ciclos/min. 112 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 3. Mida cada ciclo. Complete la siguiente tabla con una medición para cada ciclo individual. Si el sujeto tiene completos sólo 5 ciclos/periodo de 12 seg entonces sólo complete los volúmenes para 5 ciclos. Si hay un ciclo incompleto no lo registre (la tabla puede tener más ciclos de los que usted necesite). Número de ciclo Ciclo 1 Ciclo 2 Ciclo 3 Ciclo 4 Ciclo 5 Ciclo 6 Ciclo 7 Ciclo 8 Ciclo 9 Ciclo 10 Ciclo 11 Ciclo 12 Ciclo 13 Ciclo 14 Ciclo 15 Medición [CH 0 P-P] 4. Calcule el volumen promedio por ciclo (AVCP). Sumar los volúmenes de todos los ciclos en la tabla anterior: Suma = _________________ litros. Divida la suma anterior por el número de ciclos contados. La respuesta es el volumen promedio por ciclo (AVCP). AVCP = _________________ / ________________________ = __________ litros. Suma No. de ciclos contados 5. Calcule el MVVest Multiplique el AVCP por el número de ciclos respiratorios por minuto (RR) como se calculó anteriormente. MVV = AVCP x RR = _________ x _________ = _____________ litros/minuto AVCP RR FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO , 2009-2010) 113 II. Preguntas 1. Defina el volumen espiratorio forzado (VEF). 2. ¿Es posible que un sujeto tenga una capacidad vital (estado individual) dentro de un rango normal, pero un valor de VEF1 por debajo del rango normal? Explique su respuesta. 3. Defina la capacidad vital forzada. 4. Defina el flujo espiratorio forzado 25-75%. 5. Defina la ventilación voluntaria máxima (VVM). 6. ¿La ventilación voluntaria máxima disminuye con la edad? ¿Por qué? 7. Los asmáticos tienden a tener sus vías respiratorias estrechadas por constricción del músculo liso, engrosamiento de las paredes y secreción de moco. ¿Cómo podría esto afectar la capacidad vital, VEF 1 y VVM? 8. Los fármacos broncodilatadores dilatan las vías respiratorias y aclaran el moco. ¿Cómo podría esto afectar las mediciones del VEF y VVM? 9. ¿Cómo podrían compararse las mediciones del VEF 1 y VVM de una persona asmática con las de un atleta? 10. En el patrón restrictivo: ¿qué parámetros espirométricos están alterados? 11. Cite algunas alteraciones en las que existe patrón restrictivo. Jeringa de calibración (AFT26 o AFT6).114 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 9 CONSUMO DE OXÍGENO Y PRODUCCIÓN DE DIÓXIDO DE CARBONO I. Presión de vapores de agua a la temperatura ambiente = 22. el consumo de oxígeno de un adulto sano es de aproximadamente 250 ml/min. durante el ejercicio aumentan la tasa de la ventilación pulmonar. el consumo de oxígeno del organismo refleja la intensidad del metabolismo de sus tejidos. Asimismo. en los tejidos con actividad metabólica intensa. Filtro bacteriano desechable (AFT1). 0. 9. • La razón entre la producción de CO2 y el consumo de oxígeno del organismo se llama coeficiente respiratorio (CR) y su valor depende del tipo de alimento consumido. Sistema de análisis de gases BIOPAC (GasSys2EA). . Unidad de adquisición de datos BIOPAC (MP30). • La medición del consumo de oxígeno y de la producción de dióxido de carbono se utilizan para la determinación de la tasa del metabolismo. Clip nasal (AFT3). Demostrar la relación entre el consumo de oxígeno y el coeficiente respiratorio.7 cuando se consumen proteínas. IV. 6. INTRODUCCIÓN • La oxidación de los principios alimenticios (carbohidratos. Válvula en T de 22 mm diámetro (AFT22). Pieza bucal desechable (AFT2). pero puede aumentar en 10-12 veces durante el ejercicio intenso. Obtener el consumo de oxígeno (VO2) y el coeficiente respiratorio en un sujeto en estado de reposo y después de la hiperventilar voluntariamente. II. Acople rígido BIOPAC (AFT11E). 5. OBJETIVOS 1. 2. El CR tiene un valor cercano a 1 cuando se consumen solamente carbohidratos. • Para brindar a los tejidos la cantidad de oxígeno necesaria.4 mm Hg. 3. así como el gasto cardiaco y el índice cardiaco. lípidos) produce dióxido de carbono y agua y libera energía química y térmica. 2. 4. III. Transductor de flujo aéreo BIOPAC (SS11LA). MATERIAL 1. 10. Tubo de plástico BIOPAC (AFT7). 3. • Por lo tanto. • Durante el reposo. proteínas. Presión atmosférica ambiente (mm Hg). 2. MEDICIONES NECESARIAS 1. 8. 11. aumenta la extracción del oxigeno de la sangre arterial. 7. Acople rígido BIOPAC (AFT11C).8 cuando se consumen lípidos y 0. Temperatura ambiente (°C). la adaptación al ejercicio. c) Transductor de dióxido de carbono .FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . de oxígeno y de dióxido de carbono. 8. 2009-2010) 115 V. b) Transductor de oxígeno . Coloque la pinza nasal. Calibre los transductores de flujo. 106). la eliminación de dióxido de carbono y el coeficiente respiratorio. Acople el sistema de análisis de gases a la fuente de poder y enciéndalo. Bombee aire en la cámara del medidor de gases (34 veces con la jeringa AFT26 o 10-12 veces con la jeringa AFT6). 7. La respiración debe de llevarse a cabo a través del filtro antibacteriano (AFT1). 5. utilizando la pieza bucal desechable (fig. 11. Este programa permitirá medir simultáneamente el consumo de oxígeno. Reestablezca las conexiones según la tabla ejemplo de abajo y la figura 3. Fig. Accesorio Filtro AFT1 Pieza bucal desechable AFT2 Se conecta a Válvula en T AFT22 Filtro AFT1 Fig.2 13. 2. 1 3.gtl"). Guarde el archivo de registro con el nombre deseado. Oprima el botón Stop del programa PRO. Conecte entre ellos los accesorios según el esquema siguiente (fig. Acople los sensores de gases a las entradas del sistema de adquisición MP30 (fig. 9. No altere ningún parámetro del programa 6. 2). PROTOCOLO EXPERIMENTAL 1. Accesorio de flujo aéreo Filtro AFT1 Transductor de flujo aéreo SS11LA Válvula en T AFT22 Acople AFT11E Tubo AFT7 Jeringa de calibración AFT26 Acople AFT11C Se conecta a Transductor SS11LA (inlet) Válvula en T AFT22 Acople AFT11E Tubo AFT7 Entrada GasSystem2 Acople AFT11C Válvula en T AFT21 Fig. 1): a) El transductor de flujo aéreo SS11LA . pág. Solicite al sujeto examinado que respire normalmente para 2 minutos.Ch3. 4. 3 10. 4. Espere 5 minutos para que se calienten los transductores.gtl en la computadora (File>Open>chose files of type: Graph Template(*GTL)>File name: "h19.Ch1. Apriete en el botón Start del programa PRO. Remueva la jeringa de calibración del arreglo.Ch2. Inicie el programa BSL PRO h19. . 12. necesarios para realizar varias conversiones. Fig. Solicite al paciente hiperventilar por lo menos durante 1 minuto. 7. Para desplegar los marcadores se tiene que hacer clic sobre el icono. . Note que los registros de los últimos dos canales (consumo de oxígeno y el coeficiente respiratorio) se modifican muy lentamente con el tiempo. haga click sobre el icono correspondiente (File>Display Preferentes>Grillas (Grids)>OK). Para desplegar la grilla. espirado) VO2 (STPD) VCO2 (STPD) RER Medición Valor Valor Valor Valor Valor Valor Valor Valor Valor Valor Canal CH 1 CH 2 CH 3 CH 40 (C1) CH 41 (C2) CH 42 (C3) CH 43 (C4) CH 44 (C5) CH 45 (C6) CH 46 (C7) 4. 5. Los canales 40-43 no están representados debido a que estos son canales de cálculo. Pantalla FI (flujo de aire inspirado) O2E (oxígeno espirado) CO2E (carbono espirado) N2E (nitrógeno espirado) VI (ATP) VIS (STPD. Para hacer las mediciones se tiene que hacer clic sobre la pantalla de medición. marque el inicio de la hiperventilación (apriete Esc en PC). El programa presenta los canales de adquisición de datos de la siguiente manera: 2.116 106 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 1. 5. Apriete en botón Stop del programa PRO. 4 Hiperventilación 1. 3. 2. 4. 5 V. 6. Permita al sujeto respirar normalmente por lo menos durante 1 minuto. Apriete en el botón Start del programa PRO. El despliegue del programa de adquisición de datos Fig. La naturaleza gráfica y continua de este registro y modalidad de cálculo provee información significante en lo que concierne los cambios de estas variables como función del tiempo. Solicite al pacienterespirar normalmente durante otro minuto. inspirado) VES (STPD. 3. ANÁLISIS presenta los datos experimentales de la manera ilustrada en la figura 5. Los ajustes circulatorios durante el ejercicio consisten en: a) Aumento de la frecuencia cardiaca hasta valores máximos de aproximadamente 200/min. Vasodilatacion muscular a través de mecanismos locales. c) Temperatura cutánea. se generan ácido láctico y pirúvico. se obtiene a través de la degradación aeróbica de los carbohidratos y lípidos. d) Disminución de la resistencia periférica debido a la vasodilatacion muscular. que necesitan ser eliminados del organismo. proporcionalmente al aumento del gasto cardiaco. 6. lo que tiene como consecuencias el aumento de la diferencia arteriovenosa en oxígeno y el aumento del gradiente de presión parcial del oxígeno entre los alvéolos pulmonares y la sangre capilar pulmonar. Si la intensidad del ejercicio es grande. b) Actividad eléctrica del corazón. 3. c) Aumento del gasto cardiaco hasta valores máximos de 30-35 l/min. Durante el ejercicio aumenta la producción de energía del organismo y con ella la necesidad de oxígeno. El consumo de oxígeno aumenta durante el ejercicio desde 250 ml/min hasta 3-5 l/min. la energía necesaria para la regeneración de las reservas de ATP de los músculos esqueléticos. b) Aumento de la fuerza de contracción cardiaca. aumenta la producción de compuestos del catabolismo y en especial de dióxido de carbono. 2009-2010) 117 10 FISIOLOGÍA DEL EJERCICIO AERÓBICO I. e.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 2. tanto por degradación aeróbica como anaeróbica de los carbohidratos. Para satisfacer las necesidades de un aporte aumentado de oxígeno y de eliminación del exceso de dióxido de carbono. INTRODUCCIÓN 1. mientras que el volumen corriente aumenta desde 500 ml hasta 3000-3500 ml. utilizado para la degradación de varios sustratos energéticos. cuya acumulación muscular genera fatiga y cuya degradación mantiene aumentado el consumo de oxígeno después de terminarse el ejercicio (adeudo de oxígeno). Los ajustes respiratorios durante el ejercicio consisten en: a) Aumento de la ventilación pulmonar a través del aumento de la frecuencia y de la amplitud de la respiración desde 6 l/min hasta 100-110 l/min. Movilización de la sangre de los reservorios venosos. la energía necesaria para la regeneración de las reservas de ATP se obtiene. Si la intensidad del ejercicio es reducida. En esta situación. seguida por el aumento del flujo sanguíneo muscular hasta en 25 veces el valor de reposo. La frecuencia respiratoria aumenta desde 12-16/min hasta 40-50/min. Aumento del retorno venoso. II. mientras que la tasa de producción y eliminación del dióxido de carbono aumenta desde 200 ml/min hasta 8 l/min. Asimismo. c) Aumento de la extracción del oxigeno de la sangre arterial en los músculos esqueléticos. g. OBJETIVOS Determinar los cambios que produce el ejercicio en la: a) Respiración. 107 . 5. f. Aumento del flujo linfático 4. durante el ejercicio se producen ajustes circulatorios y respiratorios. h. b) Apertura de capilares pulmonares cerrados durante el reposo (fenómeno de reclutamiento). Encinte el transductor de temperatura (SS6L) en la punta del dedo (fig. 3. 3.118 PRÁCTICAS DE LABORATORIO antibacteriano (AFT1) hacia el transductor de flujo. 5.07 ó superior. 2. 1): a) Transductor de flujo de aire (SS11L) – Ch1. Acople los transductores a la unidad MP30 según el siguiente esquema (fig. Colocación del los electrodos ECG. Sistema de computación (PC con Windows ´95/´98/ 2000/ con 4 MB de memoria disponibles. b) Electrodo rojo: base del tórax. 5. 4. 8. Cable serial BIOPAC (CBLSERA). Colocación del sensor de temperatura. 3). región anterior derecha. c) Transductor de temperatura (SS6L) – Ch3. 7. Electrodos desechables de vinilo BIOPAC EL503. Unidad de adquisición de datos BIOPAC MP30. 8. Escoja la lección 15. El sujeto se pone la pinza nasal y respira a través del III. Pinza de nariz. c) Electrodo negro: base del tórax. IV. 10. 1 Fig. 2): a) Electrodo blanco: hombro derecho. Transformador (AC100A). Transductor de temperatura BIOPAC SS6L. . Apriete el botón OK. 2. Programa BIOPAC Student Lab versión 3. 2. 9. 12. Encienda la computadora. MATERIAL 1. Pieza bucal desechable y filtro bacteriano. Inserte una pieza bucal (AFT2) limpia y un filtro Fig. 6. 4. Inicie el programa BIOPAC Student Lab 7. 6. MÉTODO 1. Coloque los electrodos desechables sobre el tórax del sujeto (fig. Transductor de flujo aéreo BIOPAC SS 11LA. 10. Fig. Juego (set) de cables de electrodo BIOPAC SS2L. región anterior izquierda. Gel de electrodo BIOPAC. 9. 3. 11. Escriba el nombre de archivo. b) Juego de cables de electrodo (SS2L) – Ch 2. Fig. 2009-2010) 119 transductor de flujo aéreo (fig.6). Si la calibración no es adecuada (semejante como aspecto con la de la figura 4). El sujeto espera 5 seg.110). Aspecto normal de la pantalla de calibración. Cheque los datos de calibración. Entre al modo de revisión de datos guardados y Fig. Calcule la frecuencia cardiaca máxima del sujeto utilizando la formula: Frecuencia máxima = 0. 11.8 [220 – (edad)] Fig. 5. Espere hasta que la calibración termine. Marque los momentos del comienzo del ejercicio. Apriete el botón Registrar. Apriete el botón Calibración. V. 5. 4). 14. 12. rehágala oprimiendo el botón Rehacer calibración. de la aparición de la transpiración o del cambio de la intensidad del ejercicio. Revise la pantalla de registro. 13. 7. Se realiza un ejercicio liviano durante 5 min. 6. El aspecto adecuado del registro debe de ser semejante al de la figura 7 (pág. ANÁLISIS DE LOS DATOS 1. antes de empezar el ejercicio. o hasta que el sujeto alcanza la frecuencia cardiaca máxima (fig. 4. REGISTRO DE LOS DATOS 1. 3. Apriete Suspender.6 . El aspecto de la pantalla de calibración deberá ser similar a la de la figura 5.4 2.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 2. 9 . c) Ch2 – max. 9). d) Ch3 – valor. 7. d. Programe las cajas de mediciones según el siguiente esquema: a) Ch41 – valor. 8 Fig. 6. Note las designaciones de los canales de registro: a) Ch1 – flujo de aire. Fig. b) Ch1 – BPM. b) Ch2 – ECG. frecuencia respiratoria y el flujo máximo de aire. Prepare una ventana que incluya los primeros 5 segundos de registro (fig. Utilizando el cursor I seleccione un área correspondiente a un ciclo respiratorio y tome las mediciones de frecuencia cardiaca respiratoria (BPM) y del flujo máximo de aire (fig. Fig. 5. Ch4 – frecuencia cardiaca.120 P RÁCTICAS DE LABORATORIO escoja el archivo previamente grabado. c) Ch3 – temperatura cutánea. 7 4. Deslícese al segmento ejercicio del registro y mida en este segmento la frecuencia cardiaca. 8). 3. Utilice el cursor I para seleccionar un punto al interior del intervalo de 5 segundos y tome las mediciones de ritmo cardiaco y temperatura de la piel. card. antes del ejercicio. resp. piel Valor [CH3] . Cálculos y datos PERFIL DEL SUJETO Nombre: _____________________________ Edad: _________________ Estatura:__________ Peso: ____________ Sexo: Masculino ( ) Femenino ( ) Frecuencia cardiaca máxima calculada: ________ A) PRE-EJERCICIO • Complete la Tabla 1 con las mediciones para los datos en el intervalo de 5 seg. piel Valor [CH3] B) DURANTE EL EJERCICIO • Complete la tabla 2 con las mediciones realizadas durante el periodo de ejercicio. Valor [CH4] Frec. Tabla 1 Frecuencia cardiaca Valor [CH41] Frecuencia respiratoria [CH1BPM Flujo de aire [CH1] max Temp.) 0 30 60 90 120 150 180 210 240 270 300 Frec. [CH1] BPM Flujo de aire [CH1] max Temp. 2009-2010) 121 VI. INFORME DE LA PRÁCTICA Nombre del estudiante:______________________________________________________ Grupo: _________________________ Fecha: _________________________________ I. Tabla 2 Tiempo (min.) 0 1 2 3 4 5 Tiempo (seg.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . ) 0 1 2 3 4 5 Tiempo (seg.122 PRÁCTICAS DE LABORATORIO A) POST-EJERCICIO • Complete la tabla 3 con las mediciones pedidas. [CH1] BPM Flujo de aire [CH1] max Temp. Preguntas 1. Valor [CH4] Frec. piel Valor [CH3] II. Tabla 3 Tiempo (min. resp. card. Usando sus datos describa los cambios fisiológicos y tiempos observados durante el ejercicio: i) EKG _____________________________________________________________ __________________________________________________________________ _________________________________________________________________ ii) Frecuencia cardiaca ________________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ iii) Frecuencia respiratoria: ______________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ iv) Temperatura: ______________________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ v) Flujo de aire: ______________________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ .) 0 30 60 90 120 150 180 210 240 270 300 Frec. post-ejercicio): _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ ii) Sujetos diferentes: comparación entre las frecuencias respiratorias y los flujos de aire máximos de varios sujetos ________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ 4. 11a. 2009-2010) 123 2. Fisiología médica. Ganong W. ventilación máxima durante el ejercicio. Elsevier. p. 19a. Compare los cambios en la ventilación pulmonar: i) Mismo sujeto: reposo. 2. México: Editorial El Manual Moderno. Fisiología médica. 2006. ¿Cuando comenzó a transpirar el sujeto? _____________________________________ i) Describa los cambios de temperatura antes y después de iniciada la transpiración: _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ ii) Cuando se ejercita ¿secar el sudor ayuda a enfriar el cuerpo?_______________ _________________________________________________________________ _________________________________________________________________ 3. Guyton & Hall.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . ed. Defina el umbral anaeróbico: ____________________________________________ ____________________________________________________________________ ____________________________________________________________________ Lecturas recomedadas 1. 2004. . ed. 683-686 y 737-739. 246-249 y 1056-1065. p. generalmente de todo el antro. se obtiene información de la actividad eléctrica en un punto del estómago. 114 . Diferentes estudios han demostrado una excelente correlación entre la frecuencia del ritmo eléctrico basal (REB) medida con electrodos serosos y los resultados del análisis computacional de la onda sinusoidal registrada desde la superficie abdominal. Juego ("set") de cables para electrodos SS2L. 3 y por sujeto. Los potenciales de acción (agujas). INTRODUCCIÓN El electrogastrograma (EGG) es el registro de los cambios eléctricos que se producen en la musculatura del estómago. La motilidad gástrica tiene varias funciones: almacenar el bolo alimenticio. Las contracciones fásicas duran de 10 a 15 segundos y producen una presión de 5 a 15 cm de agua. Cuando el valor máximo de las ondas lentas. MATERIAL 1. Observar los diferentes tipos de ondas obtenidas antes y después de ingerir alimento. Las contracciones del estómago proximal resultan de pequeñas despolarizaciones sin potenciales de acción. Analizar la señal obtenida con el sujeto en reposo y después de ingerir alimento. el resto corresponde a la región distal. Su intensidad suele variar de 5 a 15 mV y su frecuencia en el estómago es de 3 por minuto. sobrepasa los –40 mV. 4. La mayor parte de la actividad motora en el estómago es de tipo peristáltico. desde la superficie de la piel se obtienen señales provenientes de una zona más extensa. en cambio. III. Las contracciones sostenidas duran de 1 a 3 minutos y producen una presión intraluminal de 50 cm de agua. o en la cara externa de la pared gástrica (electrogastrograma seroso). 2. El estómago para cumplir estas funciones se divide en proximal y distal. II. 3. la cual es iniciada y regulada por marcapasos que se encuentra localizado en la parte media de la curvatura mayor. sino cambios lentos y ondulantes del potencial de membrana en reposo. Las contracciones rítmicas están determinadas por las llamadas ondas lentas del potencial de membrana del músculo liso. aparecen los potenciales en aguja. Gel para electrodos. Electrodos desechables EL50. Paño abrasivo. El músculo proximal del estómago genera dos clases de contracciones: unas lentas sostenidas y otras fásicas más rápidas. Estas ondas lentas no son potenciales de acción. utilizando electrodos colocados en la superficie del cuerpo. en el interior de la cavidad gástrica (electrogastrograma mucoso). 2. Unidad de adquisición BIOPAC MP35.124 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 11 ELECTROGASTROGRAMA I. OBJETIVOS 1. El estómago proximal comprende el fondo y los dos tercios proximales del cuerpo. Cuanto mayor es el potencial de onda lenta. Al colocar un electrodo en la serosa. La parte distal del estómago debe mezclar el contenido gástrico y producir una evacuación lenta del quimo ha- cia el intestino. mayor es la frecuencia de generación de los potenciales de acción. se generan cuando el potencial de reposo de la membrana del músculo liso alcanza unos –40 mV (el potencial de reposo es de –50 a 60 mV). convertir los alimentos en pequeñas partículas para una mezcla adecuada y vaciar el quimo desde el estómago al intestino. Los electrodos de registro se pueden colocar sobre la pared abdominal (electrogastrograma cutáneo). El estómago proximal alterna la actividad contráctil no progresiva con momentos de relajación. 5. 3. Obtener el electrogastrograma de un sujeto. Después pare el registro (fig. Encienda la unidad MP30. 6. MÉTODO 1.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 7. Conecte la unidad de adquisición BIOPAC MP 35 a la corriente y asegúrese que este apagado (en Off). 5. Para obtener un registro óptimo el sujeto debe estar relajado y descansando 12. Los conectores de caimán funcionan como pinzas de la ropa. mesa. Conecte el "set" del electrodo al canal 1. Coloque los tres electrodos como se muestra en la figura 1. el negro en el electrodo 2 (debajo del 3) y el indiferente en el electrodo 1. 11. ponga gel y coloque el electrodo. Aparecerán en la pantalla dos canales de registro. 5. Después pídale que se recueste y se relaje y registre nuevamente al menos otros 10 minutos. pero se pueden poner de un solo lado. 14. Inicie el programa BSL PRO. 4. 2 Este seguro que el sujeto no está en contacto con nada metálico (silla. 13. Coloque las derivaciones de los electrodos por color según el siguiente esquema: color rojo en el electrodo 3. Registre al menos durante 10 minutos continuos. 8. V. etcétera). Sujete los cables conectores a la ropa del sujeto o colóquelos de manera que no estén estirados y jalando de los electrodos en ningún punto del dispositivo. 2. Preparación del sujeto para el registro del EGG 1. 2009-2010) 125 IV. Encienda la computadora. 10. Pulse el botón de inicio para principiar el registro. 2 . ANÁLISIS rojo blanco negro Fig. En canal superior se observa la señal cruda del EGG y el canal inferior una versión limpia de la misma señal (fig. Retire todos los adornos u objetos metálicos del sujeto. El sujeto debe permanecer en reposo al menos 10 minutos antes del registro. Puede tener que rotar el caimán para asegurarse que la parte metálica esta tocando y pinzando el electrodo en la base del botón. 3. El tercer electrodo se coloca por encima de uno de los dos anteriores (electrodo 3). 9. 4. 3. 1 Fig. 2).2). Limpie la zona donde colocará el electrodo con el paño abrasivo. Haga que el sujeto se siente y pídale que ingiera algún alimento. Abra el archivo EGG. Dos electrodos se colocan uno a cada lado del abdomen por encima del estómago (electrodos 1 y 2). márquelo. 11a. 8. 3 Lectura recomendada Guyton & Hall. Fig.126 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 1. El sistema aplicará la transformada rápida de Fourier a la región seleccionada y usted observará un pico de actividad cercano a los 0. 5. Fig. Haga el mismo procedimiento con el registro obtenido después de la ingestión de alimento y podrá notar los cambios en la amplitud y la frecuencia del registro. obtenido con el sujeto en reposo. Seleccione una sección del registro crudo. Fisiología médica. Haga clic en max F (Frecuencia máxima). 3. 772. 2. 2006. Seleccione los parámetros de FFT como se muestran en el esquema (fig. 4.05 Hz. Discuta los resultados obtenidos con su instructor de laboratorio o con su profesor. el cual representa las contracciones por minuto (frecuencia promedio 3 por minuto). En el menú seleccione Transform y después FFT (Fast Fourier Transform). 3) y oprima OK. 4) 7. ed. p. Elsevier. Para confirmar que el valor gráfico es correcto: marque la sección del registro donde se encuentra el pico máximo. 4 . Se mostrará el resultado numérico en Hz de la aplicación de FFT para el segmento marcado (fig. que en sí no es una enfermedad. De acuerdo con algunos expertos. University of California Press. Inzucchi. considerando la cantidad y la calidad de calorías que se deben ingerir. como en la frontera norte. edición. 6a. The diabetes mellitus manual. la epidemia más grave del siglo XXI pues no distingue raza. desde el punto de vista de la salud. dependiente de la Secretaría de Salud. Mientras la encuesta de 1999 mostró que 59 % de las mujeres eran obesas o con problemas de sobrepeso. constituye. un predisponente casi obligado para un gran número de trastornos patológicos. En algunas zonas. como la doctora Marion Nestlé. detallará la participación de . Los siguientes ejercicios tienen como finalidad: 1. En México. d) Explicará cómo se lleva a cabo la regulación de la ingesta alimentaria. está ínti- mamente relacionada con problemas de obesidad (Silvio E. la diabetes. 2009-2010) 127 12 CALCULANDO MI DIETA Los problemas alimentarios que enfrenta un médico durante su quehacer profesional son cada vez mayores.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . hombres y mujeres. clase social.Conocerá cuáles son las hormonas anabólicas y catabólicas del organismo y explicará su fisiología (el tejido adiposo como órgano endocrino). como en la mayoría de los países. religión ni nacionalidad. la hipertensión arterial. Conocimientos necesarios a) Definirá qué es una caloría. 2. 4. 3 650 tortillas. las cardiopatías y problemas vasculares. con el médico. la diabetes tipo II. Que sea capaz de elaborar una dieta con la composición adecuada de nutrimentos. Tanto en México. 50 Kg de azúcar (principalmente a través de los refrescos) y 730 cervezas. hace sólo once años el número era apenas de 33%. 2002). De acuerdo con los datos obtenidos del Instituto Nacional de Salud Pública. Que el alumno sepa detectar el estado nutricional de la persona. la industria alimentaria actual es la principal responsable de que hoy se coma en exceso. 2005). responsable de más de 90 % de los casos de diabetes en el mundo. 70 % de las mujeres y 74 % de los hombres tienen sobrepeso. por lo que es importante que éste conozca el valor nutritivo y calórico de los alimentos y sepa qué debe recomendar a sus pacientes. 3. c) Explicará la clasificación de peso corporal según el índice de masa corporal (bajo peso. en primera instancia. El problema de la malanutrición. el número de ciudadanos obesos es casi igual al de personas desnutridas. Que reconozca si ésta tiene o no problemas de peso. alrededor de 55 % de los mexicanos. Si bien le corresponde a un experto en nutrición determinar cuánto y qué debemos comer. tienen problemas de sobrepeso. profesora en nutrición de la Universidad de Nueva York (Save food. algunos tipos de cáncer. b) Explicará qué es el índice de masa corporal y cómo se obtiene. Que sea capaz de identificar un estado de obesidad y pueda identificar el tipo de dieta adecuada para reducir peso. De acuerdo con el Programa de Salud del Adulto. El sobrepeso es el más frecuente y costoso problema nutricional y. sobrepeso y obesidad). credo. sin embargo. McGraw Hill. cada mexicano consume al año 400 refrescos. que por sus características constituyen un gran problema de salud pública: la obesidad. la mayoría de las personas con problemas de peso acudirán. ed. la anorexia y la bulimia son sólo algunas muestras de lo que una mala nutrición puede producir. normal. .. . Epidemia global.. National Geographic en español....... Agosto 2004)..... Audesirk y cols... lavar las ventanas o el coche sin ayuda de aparatos.. la comida y la cena)...... Prentice Hall........... ir a la tienda caminando... ¿Hay alguna diferencia? ¿Por qué? 5.. Mida el diámetro de la cintura de cada uno de estos compañeros... 250 Jugar frisbee . _________________________________________ Un ejercicio frecuente en la consulta médica puede ser el siguiente: Elaborar una dieta para una señora obesa de 56 años de edad.... la colación.. No hay que olvidar que lo que se come y no se gasta............... tuvieron en la última década la tendencia de Actividad kcal/hora Correr (10 Km/h) ... _________________________________________ 3....... Explique los resultados.. 4........ Además....... Elabore una dieta............ ama de casa....... calcule el número de Kcal que ingirió el domingo pasado y compárelo con las Kcal...... Procedimiento experimental 1....... Con esta n=5... 3.. Calcule el índice de masa corporal de cinco compañeros de está práctica que tengan la misma edad y sean del mismo sexo: a) ______________________________________ b) ______________________________________ c) ______________________________________ d) ______________________________________ e) ______________________________________ 2.............. Nutrición y digestión. de lo que comió el miércoles de la semana pasada..128 PRÁCTICAS DE LABORATORIO cada estructura y de cada una de las hormonas involucradas.... _________________________________________ 2. 560 Patinar en ruedas . peso y actividad física........ Aquí mencionaremos algunos ejercicios que permitirán calcular el gasto en calorías que se gastan en una hora (Biología: La vida en la tierra... Nota del editor. Coméntelo con tus compañeros: 1.. 490 Bicicleta (20 Km/h) ...... 700 Esquí a campo traviesa (moderado) ........ (Estos datos se pueden encontrar en cualquier libro reciente de Fisiología)... etcétera (Obesos.. ed.....68 m y que quiere bajar de peso de una manera correcta (elabore un menú de cuando menos tres días considerando el desayuno...... información del contenido calórico de los alimentos.......... las muchas comodidades han propiciado que muchos mexicanos. 2003.... que pesa 80 Kg con una estatura de 1........ sobre todo niños.. Con los datos que obtendrá en la gráfica adjunta. Mencione cuatro conductas que bajo su punto de vista estén propiciando el aumento de casos de obesidad en todo el mundo..... calcule la validez estadística de sus datos........... báscula........ los esquemas alimentarios......... Los expertos recomiendan actividades contra la comodidad: subir escaleras......... 100 *Tómese en cuenta que las cintas métricas elásticas pueden dar medidas erróneas.. tomando en cuenta las recomendaciones de la pirámide alimentaria y considerando las necesidades de acuerdo a la edad... sacar a pasear al perro.. ¿Cómo llegó la obesidad a convertirse en un problema de salud pública a nivel mundial? Por un lado........ 6a............ T................ acudir al parque todas las tardes para jugar fútbol o básquetbol con otros niños. no hagan absolutamente ningún tipo de actividad física. 210 Estudiar .). _________________________________________ 4.. 420 Caminar (5 Km/h) ... Material Cinta métrica*.... ¿Por qué esta medida es importante? Anote y explique los resultados.. se almacena. recomendar la ingesta de muy poca grasa a expensas de ingerir muchos carbohidratos...... .... Describa correctamente la composición de los líquidos corporales y defina cada uno de los compartimentos en donde éstos se localizan.... En personas con obesidad más importante.... ¿Cuál es el peso ideal de su paciente? _________________________________________ 2.............. ______________________________________________ ______________________________________________ LOS LÍQUIDOS Y LA SALUD ¿Qué y cuánto debemos beber? Tan importante como lo que comes.. Ácidos grasos monoinsaturados: hasta 15 %. ¿Cuál es la diferencia entre el colesterol "bueno" y el "malo". podemos contestar las siguientes preguntas: 1.... Colesterol: < 300 mg/día........... c) Modificaciones en la conducta... Ácidos grasos saturados: 8-10 %..... Actualmente...... esto implica 2 000 mililitros para una dieta de 2 000 calorías al día. b) Aumento paulatino y sostenido de la actividad física........ ¿Por qué recomendar ejercicio para esta paciente y cómo calcular una posible resistencia a la insulina? _________________________________________ _________________________________________ _________________________________________ _________________________________________ Numerosas personas obesas pueden obtener una pérdida de peso a corto plazo únicamente mediante dieta..... Por lo general......C....... con estos datos....... e) Cirugía. The Harvard Medical School Guide to Healthy Eating.... Proteínas: 15-20 %.. 1 100-124 .. W. es lo que bebes (Eat..... 2009-2010) 129 Ahora bien...... 2001): Más de la mitad de nuestro peso corporal está formado de fluidos con gran cantidad de electrólitos............ aunque un mantenimiento adecuado a largo plazo es más difícil de conseguir.. 75-99 .......FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . una disminución de 500 kcal/día en la dieta provoca una reducción de 450 g de peso corporal por semana y ayuda a conseguir una reducción de 10% de peso a los seis meses.. además se deben considerar las características ambientales y la actividad física para poder reponer correctamente los líquidos perdidos en 24 horas...... los tratamientos de reducción de peso a largo plazo incluyen: a) Cálculo correcto de la ingestión de calorías en la dieta.. Esto muestra necesidades individuales para la ingesta de líquido. 2 ... 1 125-149 .. la restricción de calorías por día deberá ser mayor.. drink and be healthy......... (A) __________________________________________ (B) __________________________________________ El promedio de las personas necesita ingerir cerca de un mililitro de líquido por cada caloría quemada. ¿Para qué sirve el colesterol? ¿Quién lo produce y cómo lo ingerimos? Comente brevemente los aspectos positivos y negativos del colesterol.. Composición energética de macronutrientes aconsejados en la dieta hipocalórica inicial: Peso corporal (kg) Ingesta energética (kcal/día) 000 200 500 800 000 Considerando el total de las calorías que se ingieren en un día..... d) Farmacoterapia. Ácidos grasos poliinsaturados: hasta 10 %.. Willett........ Simon and Schuster Source ed.......... ¿En cuánto tiempo alcanzará ese peso ideal? _________________________________________ 3... 1 175 . la proporción de nutrientes deberá ser la siguiente: Grasa total: 20-30 %.. Carbohidratos: 55-65 %. 1 150-174 ....................... _____________________________________________ _____________________________________________ ¿Cuánto y de qué tipo son las bebidas que debemos ingerir? _____________________________________________ _____________________________________________ Mencione las características calóricas y nutricionales más importantes de: Refrescos ____________ Jugos _______________ Leche _______________ Te _________________ Café ________________ Alcohol ______________ . ______________________________________________ __________________________________________________ ___________________________________________________ __________________________________________________ ______________________________________________________ ¿Cuánto líquido se pierde diariamente a través de la piel. por la respiración y a través de la orina? ________________________________________________ ________________________________________________ _______________________________________________ _________________________________________________ _________________________________________________ ________________________________________________ ¿De qué dependen estos valores? ¿Se pierde la misma cantidad de líquido en invierno y en verano. o en clima seco y en clima húmedo? _______________________________________________ ______________________________________________ ________________________________________________ ¿Por qué no podemos depender de la sed para considerar la reposición de líquidos? _____________________________________________ ______________________________________________ ¿Cuáles son las hormonas involucradas en el control de líquidos en nuestro organismo? Menciona el órgano que las secreta y cómo actúan.130 PRÁCTICAS DE LABORATORIO ¿Qué efectos producen estas sustancias en nuestro organismo? _____________________________________________ _______________________________________________ _____________________________________________ Anote correctamente las fuentes de información consultadas para realizar esta práctica. 0 73.6 9.4 Carbohidratos 71.6 13. CALCULANDO MI DIETA Cuadro 1.25) 12.5 1.0 12. Utilización de la energía diariamente ingerida por hombres sanos de diversas edades Grupo de edad Peso (dg) 4.2 9. Cuadro 3.6 1.5 3. Equilibrio de diversas dietas Nutrimentos Hidratos de carbono Proteínas Grasas Dieta rural (precaria) (%) 83 10* 7* Dieta normal (%) 60-70 10 20-30 Dieta urbana (suculenta) (%) 35 15 † 50 † * De origen casi exclusivamente vegetal.5 10. 2009-2010) 131 Anexo Cuadros de referencia PRÁCTICA 12.1 *Datos tomados de las tablas de composición del Instituto de Nutrición de Centro América y Panamá (INCAP)33.8 4.7 11.7 79.7 74. †Datos obtenidos en nuestro laboratorio.2 1. Cuadro 2.5 12.4 11.3 Ingestión promedio (kcal) 550 1 010 1 360 1 720 2 420 3 100 Mantenimiento (kcal) 365 800 1 020 1 200 1 750 2 500 Costo energético por crecimiento (kcal) Porcentaje de la ingestión 128 23. .6 74.0 10.8 465 27.0 6.5 2.5 0.4 0.9 77.5 4.3 Cenizas 1.4 150 14.5 Proteínas (NX 6.8 1. 1973.3 4.4 73.8 76.9 3.8 0.2 60 1. Energy and protein requirements.0 2.4 0.7 0.0 6. En tanto que el metabolismo basal del lactante se considera de 55/Kcal/Kg/día (230 kj) en el adulto se estima en 20 o 25 Kcal (85-105 Kj).1 9.4 12.0 30 1.0 Grasa 1.6 10.0 13.3 1.8 1.0 640 26.3 11.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO .3 11.1 3.0 10.6 17.7 1.7 1.8 2.4 68.3 50.4 31.6 1.7 1.3 0.6 8.2 35 2.4 540 17.9 Energía disponible para actividad (kcal) Porcentaje de la ingestión 57 10. Composición química de los cereales y de la harina de algunos de ellos (g/100 g de muestra)* Trigo Harina de trigo Arroz Maíz normal Maíz opaco-2† Centeno Cebada Avena Sorgo Triticale† Harina de triticale† Humedad 12.8 7.5 1.4 Menos de 3 meses 9-12 meses 2-3 años 4-5 años 9-10 años 16-17 años Modificación de: WHO Technical Report Series 522.2 1.3 60.3 60 5. Ginebra.0 10. † De origen principalmente animal.8 13.7 1.7 Fibra 2.3 2.8 310 22.4 75. Durante la edad escolar se considera de 40-45 Kcal/Kg/día (170-190 kj). y en la adolecencia de 30-40 Kcal/ Kg/día (125-170 kj).9 30 2.2 12. 0 58.17 0.3 3.13 0.18 0.26 0.8 85.2 0.4 38.1 4.87 *Datos obtenidos de las tablas de contenido de aminoácidos y valores biológicos de la FAO12.7 72.47 0.3 55.5 Ca 14 9 36 20 P 231 104 383 97 Fe 2.05 0.18 0.4 Vitamina B1 Vitamina B2 (mg/100g de muestra) 0.22 0.6 77.2 6.2 8.1 8.6 47.0 1.3 1.08 Niacina (mg) 1.6 10.04 0.3 0.7 0. Efecto del procesado en el contenido de nutrimentos* Producto Arroz moreno Arroz blanco pulido Trigo entero Harina de trigo (70% de extracción) *Datos tomados de las tablas del INCAP33.03 0.8 Proteínas (g) 10.26 0.70 7.08 0.65 9.20 0.52 1. Cenizas % 0.4 9.5 8.3 1.52 Tiamina (mg) 0.2 0.34 0.12 0.5 1.6 4.5 Ca (mg) 32 39 34 41 49 100 22 49 26 8 140 88 79 108 Fe (mg) 0.00 1.07 Niacina 4.4 10.7 13.132 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Cuadro 4.12 0.6 1.3 3.0 1.43 2.09 2.5 2.27 3.0 1.13 0.7 5.08 0.00 0.08 2.4 0.65 1..2 4.6 7.14 0.03 0.8 54.6 2.08 18.0 0.21 0 2. Cuadro 6.51 1.6 0.0 1.05 0 2.15 0.56 2.04 0.87 1.67 2.4 0.5 75.00 0.0 1. Calidad nutritiva de algunas mezclas de cereal y leguminosas* Cereal y leguminosa Maíz Frijol negro Maíz-frijol Harina de trigo Harina de trigo + 0.0 1.57 0.05 0.1 2.1 0. Nutrimentos de algunos productos alimenticios derivados de trigo o maíz (por 100 g del producto) Producto Harina refinada Pan blanco Pan dulce Pan integral Pan negro Pan de caja enriquecido Galletas dulces Galletas saladas Pastas alimenticias Fécula de maíz Harina de nixtamal Masa Pinole Tortilla Energía (kcal) 3773 202 384 238 265 285 403 433 340 357 377 189 394 226 Carbohidratos (g) 8.09 0.8 0.20 0.5 8.9 9.5 62.05 0.1 7.1 1.25% de linasa Harina de Soja Harina de trigo: harina de soya Sorgo Garbanzo Sorgo: garbanzo Arroz Frijol negro Arroz: frijol Arroz: frijol + 0.1 1.3 1.31 0.1 66.25 0.60 2.61 1.05 0.8 69.17 Riboflavia (mg) 0.14 % de metionina Porcentaje de proteína 100 100 50:50 100 100 100 60:40 100 100 70:30 100 100 50:50 50:50 PER 1.90 3.4 Cuadro 5.1 60.3 11.57 1.9 .9 Grasas (g) 1.8 9.10 0.1 1.23 0.22 0.7 0.96 2.12 0. 8 29.3 2.3 22.8 0.7 20.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . cereales y alimentos de origen animal (g/100 g)* Producto Soya Frijol común Garbanzo Cacahuate Lenteja Haba Guisantes Arroz Maíz (amarillo) Trigo Carne de res (semigorda) Pescad (robalo) Huevo Humedad 9.0 11.2 34.6 2.3 1.88 0.46 0.0 7. ‡mg/100g de muestra.6 12.8 18. 2009-2010) 133 Cuadro 7.7 24.0 1. †Calorías/100 g de muestra.0 2.06 0.57 0.2 25. de vaca Fresco.6 12.3 4.0 18.7 17.3 26.4 1. §µg/100 g de muestra.1 35.53 0.52 0.2 34.2 12.3 3.2 44.5 4.4 12. Cuadro 8. de cabra De Oaxaca Holandés Amarillo Añejo Chihuahua .3 5. Composición química de algunos quesos mexicanos Energía (kcal) 93 189 127 160 317 374 384 395 458 Carbohidratos (g) 3.5 11.8 2.0 2.0 4.2 2.5 1.3 16.0 3.0 1.14 Niacina‡ 2.5 2.9 12.0 37.5 23. Nutrimentos y calorías aportados por algunas leguminosas.5 7.5 3.9 4.22 0.5 7.6 6.3 Calorías† 398 337 364 543 340 339 343 357 361 330 244 100 148 Proteínas 33.2 0.4 9.3 1.5 32.6 2.05 0.3 Grasas 16.5 3.0 75.1 *Datos tomados de las tablas de composición de alimentos del INCAP33.3 18.6 7.0 7.4 3.0 Calcio (mg) 315 686 684 867 469 829 829 860 795 Quesos Requesón Semiblando (oreado) Fresco.0 10.2 1.4 2.5 5.5 Ca‡ 222 86 134 66 68 77 80 14 9 46 4 22 54 Vitaminas § Tr 5 15 10 10 30 25 0 70 0 0 0 125 Tiamina ‡ 0.0 1.1 1.0 27.43 0.8 2.91 0.4 22.9 Proteínas (g) 13.2 29.54 0.0 26.8 Fe‡ 11.0 10.1 77.9 3.2 9.0 6.46 0.2 12.8 15.5 6.0 13.0 26.4 Grasas (g) 2.0 22. 4 5.7 6.9 16. Valores nutriológicos de la carne de distintas aves (por 100 g) Aves Pollo Pechuga Pierna Pollo tierno Gallina Pavo Pato doméstico Energía (kcal) 96 120 170 246 268 326 Humedad (g) 77.8 1.6 10.5 70.1 182.4 25.30 Carbohidratos (g) 0.5 3.0 18.6 6.1 58.6 17.0 1.1 20.8 265 154.7 12.0 1.1 16.2 23.9 28.4 25.1 23.134 P RÁCTICAS DE LABORATORIO Cuadro 9.5 Cuadro 11.6 13.8 Proteínas (g) 21.4 14.2 18.6 11.2 18.2 292.9 247.6 18.4 287.6 148.0 Grasas (g) Cenizas (g) 1.1 19.4 1.0 Grasas (g) 2.0 16.2 28.60 2.10 1.0 36.5 13.5 3.4 130.5 19.5 1.5 13.0 Ca (mg) 5 1 14 10 23 15 P (mg) 237 190 200 201 320 188 Fe (mg) 10 0.7 20. Composición química de algunos productos de salchichonería (por 100 g) Porción comestible (%) 100 98 98 98 98 Producto Jamón Chorizo Longaniza Moronga Queso de puerco Energía (kcal) 298 425 172 180 3.6 . Contenido de proteínas y grasas de diferentes carnes (por 100 g) Carnes Carne magra de res Carne gorda de res Cecina fresca de res Carne magra de carnero Carne semigrosada de carnero Carne grosa de carnero Carne de cerdo Carne grosada de cerdo Cecina de cerdo Lengua de res Kcal 107.2 15.9 74.9 1.5 Proteínas (g) 15.6 62.8 Grasas (g) 16.8 16.8 1.4 188.0 13.3 Proteínas (g) 19.1 1.3 54.2 20.2 Cuadro 10.4 16.0 24.3 1. 8 19.5 0.2 1.6 23.6 0.2 3.8 0.0 76.1 1.2 1.1 1.0 18.5 17.7 2.0 2.2 74.2 1.0 1.7 Cuadro 13.4 75.5 79.8 77.7 80.0 20.1 1.0 0.3 18.0 69.4 21.4 2.1 1.8 4.0 1.5 16.5 70.8 723 78.0 78.9 1.2 20.0 1.6 8.2 0.3 19.0 1.5 6.4 76.6 0.6 78.7 21.8 21.1 0.8 4.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO .8 0.0 79.1 1.7 1.0 101 32 28 40 38 16 30 30 28 17 105 54 15 12 22 20 272 194 258 165 198 173 252 318 200 204 311 238 204 152 200 180 1.3 1.7 16.9 1.1 1. Alimentos de elección práctica como vectores de ácido ascórbico Cantidades de ácido Cantidad en gramos ascórbico (mg) que proporcionan que contienen 100 g 35 mg de ácido de alimento ascórbico Guayaba 199 18 Zapote negro 83 42 Mango de Manila 76 46 Mandarina 71 49 Naranja 67 52 Mango 65 54 Lima 54 65 Jugo de naranja 53 66 Toronja 53 66 Papaya 48 73 Limón agrio 42 83 Melón 32 110 Limón real 30 117 Camote amarillo 27 130 Plátano Tabasco 13 270 Alimento . Valores nutriológicos de diversas especies de pescado ( por 100 g) Especie Energía (kcal) Humedad (g) Proteínas (g) Grasas (g) Cenizas (g) Ca (mg) P (mg) Fe (mg) Arenque Bagre Bonito Carpa Corvina Lisa Macarela Merluza* Mero* Pargo Pejerrey Pez sierra Robalo Trucha Pescado de mar †(promedio) Pescado de río † (promedio) 142 136 138 96 100 106 165 90 86 109 87 134 94 82 100 101 72.6 1.8 20.1 1.7 2.3 1.1 1.1 0.0 17.4 1.0 1.7 76.6 1.6 0.4 19.2 2. 2009-2010) 135 Cuadro 12.7 1.1 18. 0 12.9 16.7 5.2 6.0 22.1 16.8 12.0 11.6 4. promedio 5 a 10%.4 11.0 24.4 13.0 5.0 10.6 a 22.5 14.3 16.7 11. Contenido de carbohidratos en las frutas Con 5 o 10%* Fruta Sandía Coco Lima Fresa Papaya Melón Guanábana Jugo de limón agrio Limón real Jícama Tuna cardona Piña Marañón Pomelo Limón agrio Jugo de naranja Aimito morado Naranja Tuna (promedio) Granada roja Pitahaya Chabacano Toronja Mango de Manila Naranja cajera Mandarina Nanche Mango Durazno amarillo Ciruela roja Guayaba blanca Membrillo (%) 3.5 % de carbohidratos Cuadro 14.7 17.3 6.3 6.2 17.0 20.5.3 14.7 34.8 17.2 11.2 10.1 16.1 10.9 15.4 *Límites de 2.9 8.3 9.1 22.1 11.5 15.3 64.5 16.4 8.7 7.7 7.5 9. Vegetales (verduras) con menos de 12. †Límites de 12. promedio de 15 a 20%.1 11.3 16.2 16.6 a 12.4 10.0 21.4 16.7 13.0 14.2 24.1 Con 15 o 20% † Fruta Higo Zarzamora Naranja agria Guayaba Durazno blanco Chirimoya Zapote negro Pera Perón Zapote blanco Granada china Mamey Capulín Garambullo Pomarrosa Manzana blanca Uva Caña de azúcar Anona Ciruela amarilla Chicozapote Zapote amarillo Plátano morado Plátano (promedio) Plátano Tabasco Tejocote Plátano manzano Plátano dominico Plátano macho Zapote borracho Tamarindo (%) 12.1 8.4 36.5.4 11. .0 22.2 11.4 8.2 9.5 7.136 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Cuadro 17-27.7 11.9 18.2 13. 4. Rangos de concentración de algunas hormonas en la sangre Tipo de hormona Peptídicas Catecolaminas Esteroideas Tiroideas Concentración sanguínea 1 pM-0.  Hiperemia en el ovario de la  rata. Cuadro 2. Yalow y Berson obtuvieron el Premio Nobel en 1977 por esta aportación.1 nM 0. como se muestra en cuadro 3 . Interpretar estos resultados en función del conocimiento de la función tiroidea. Promover la discusión en pequeños grupos de estudiantes e incrementar las habilidades para resolver problemas. Revisar los fundamentos de la técnica de radioinmunoanálisis (RIA). Cabe señalar que.    El RIA fue introducido en la década de 1960 por Rosalyn S. INTRODUCCIÓN Las hormonas circulan en la sangre en concentraciones muy bajas (cuadro 1) por lo que su análisis resultaba difícil antes del desarrollo de técnicas analíticas sensibles y precisas. Efecto observado  Cambios en peso y talla de  ratones inmaduros. algunos laboratorios prefieren utilizar la técnica conocida como ELISA (enzime-linked immunosorbent assay) para la determinación de hormonas en la sangre para evitar el empleo de radiactividad.  Incremento de peso en ratas  Hipofisectomizadas. Yalow y Salomon Berson para la determinación de las concentraciones de insulina en el plasma. OBJETIVOS 1. 2009-2010) 137 13 RADIOINMUNOANÁLISIS (RIA) I.2-1. la insulina fue la primera hormona que pudo analizarse en la sangre utilizando un ensayo in vitro. los bioensayos aún se requieren para evaluar el efecto biológico de las moléculas.  Depleción de ácido ascórbico  en la glándula adrenal. Se muestra el año en que se describieron algunos de los bioensayos más utilizados Año  1930  1939  1948  1949  Hormona  GH  GH  hCG  ACTH  II. El principio en el que se basa el ELISA es el mismo que utiliza el RIA. Cuadro 1. Actualmente. 3. Entre 1960 y 1980 se desarrolló el RIA para numerosas hormonas.3 nM nM uM 151 . 2. Calcular concentraciones de hormonas basándose en una curva patrón.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . El desarrollo del RIA permitió la cuantificación específica de muchas hormonas en la sangre de manera sensible y precisa. Antes del desarrollo del RIA para la cuantificación de hormonas se utilizaban otras técnicas mucho más laboriosas como el bioensayo. aunque actualmente se utiliza otro tipo de ensayos para la cuantificación de hormonas en la sangre. Así pues. En el cuadro 2 se muestran algunas de las hormonas para las cuales se desarrollaron bioensayos en la primera mitad del siglo XX. Esquema de los pasos que se requieren en un radioinmunoensayo. Para fines de esta práctica el antígeno corresponde a la hormona que nos interesa cuantificar por lo que.138 P RÁCTICAS DE LABORATORIO Cuadro 3. Este gran avance en gran medida se debe al empleo del RIA. es decir. en adelante. El RIA se basa en la competencia entre un antígeno marcado radioactivamente y un antígeno no marcado por su unión a un anticuerpo que se encuentra en una concentración fija y limitante. 1. Lo mismo ocurrirá si se hace reaccionar la hormona no marcada con el anticuerpo: H + Ac ↔ HAc Donde: H: hormona no marcada. en menor concentración que el antígeno (ver figura 1). . Si se hace reaccionar a la hormona marcada y al anticuerpo se formará el complejo hormona marcada-anticuerpo de acuerdo a la siguiente ecuación: H* + Ac ↔ H*Ac Donde: H*: hormona radiactiva. Ac: anticuerpo. HAc: complejo hormona-anticuerpo u hormona unida. Así pues el método se basa en la competencia entre una hormona marcada con un isotopo radiactivo y la misma hormona sin marcar por su unión a un anticuerpo. le denominaremos hormona en vez de antígeno. (2) Sobrenadante (hormona libre) Se añade hormona "no marcada" (H) y desplaza a la hormona "marcada" Se añade un segundo anticuerpo dirigido contra el primer anticuerpo para separar la hormona libre de la hormona unida H-Ac (1) Se centrífuga para separar a la hormona libre de la hormona unida al Ac Precipitado (hormona unida) Cuantificar la radiactividad Fig. Desarrollo de RIA para la determinación de hormonas plasmáticas Primer anticuerpo (Ac) Se añade hormona "marcada" (H*) Se forma el complejo H*Ac La cuantificación de la concentración de hormonas en la sangre permitió un gran avance en la fisiología endocrina y en el diagnostico de las enfermedades de este sistema. [H]: concentración de la hormona en forma libre cuando se ha alcanzado el equilibrio.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO .1 0 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 33 36 Hormona "no marcada" total Fig. En el ejemplo mostrado en la figura 1 se utiliza un segundo anticuerpo dirigido contra el primer anticuerpo para poder separar las fracciones unida y libre mediante una centrifugación. 2009-2010) 139 En cualquier reacción química cuando se alcanza el equilibrio la concentración de producto formado se relaciona con la concentración de reactivos de acuerdo a la Ley de Acción de Masas.4 0. se puede deducir que: [ H*Ac] = C2 X [ H Ac] . Donde: 1 0. Considere. en que la concentración de anticuerpo es 5 pg/ml. C2 representa la cantidad total de hormona marcada y es igual a [H*Ac] + [H *] en el equilibrio. A partir de la ecuación 3. Se obtienen los siguientes resultados: Si se pone a reaccionar una concentración fija de anticuerpo = C1 y de hormona "marcada" = C2 con cantidades crecientes de hormona "no marcada" = X.5 0.8 0. [H*Ac] [HAc] K= = K: es la constante fisicoquímica de reacción y como su nombre [H*] [Ac] lo indica es número fijo. 2 El método de RIA consiste en hacer una curva patrón manteniendo fijas las concentraciones del anticuerpo y de la hormona "marcada" y añadiendo cantidades crecientes de la hormona "no marcada". X: es la cantidad total de hormona no marcada añadida al inicio de la reacción. como se muestra en la siguiente ecuación: [H*Ac]/C2. posteriormente separar y cuantificar la cantidad de hormona unida al anticuerpo y/o la de hormona libre.6 0. Obtendremos una gráfica como la mostrada en la figura 2. entonces: C1 representa la cantidad total de anticuerpo y es igual a [H*Ac] + [H Ac] + [Ac] en el equilibrio. [H Ac]: concentración del complejo hormona "no marcada"-anticuerpo u hormona unida cuando se ha alcanzado el equilibrio.2 0.7 0.9 Fracción unida [H*Ac]: concentración del complejo hormona "marcada"-anticuerpo u hormona unida cuando se ha alcanzado el equilibrio. [H] [Ac] (3) 0. [H*]: concentración de la hormona en forma libre cuando se ha alcanzado el equilibrio.3 0. y de las consideraciones anteriores. posteriormente se centrifuga la mezcla de reacción para separar a la hormona libre que se encuentra en el sobrenadante de la hormona unida al anticuerpo (complejo H-Ac) que queda en el precipitado. X representa la cantidad total de hormona no marcada y es igual a [HAc] + [ H ] en el equilibrio. Si efectuamos diferentes reacciones con cantidades crecientes de X y graficamos [H*Ac]/C2 versus X. es la fracción de hormona "marcada" que en el equilibrio está formando el complejo con el anticuerpo o "fracción unida". Se mezclan los reactivos y se incuban a una temperatura y tiempo previamente establecidos. la de hormona "marcada" es 8 pg/ml y la hormona "no marcada" se adiciona en concentraciones crecientes de 0 a 32 pg/ml. el siguiente ejemplo. [ Ac]: concentración del anticuerpo cuando se ha alcanzado el equilibrio. 625 0. Además del uso de un segundo anticuerpo. Si se grafican los datos de la fracción de hormona "marcada" unida vs la concentración de hormona "no marcada" añadida.8 Fracción unida 0.875 1 0. Generalmente se utilizan como trazadores para el RIA moléculas que contengan átomos que emitan radiaciones beta o gamma. PROBLEMA Un estuche comercial para la determinación de triyodotironina (T3) libre en suero contiene los siguientes reactivos: • Estándares de T3 para hacer una curva de calibración.375 0. se obtiene la siguiente gráfica: 1 0.5 0. Cabe señalar que además de beta y gamma hay otro tipo de emisiones radiactivas. Esto permite evaluar cantidades muy pequeñas de materiales radiactivos. En el caso de los contadores gamma se emplean cristales capaces de convertir este tipo de radiaciones en energía eléctrica. .2 correspondería a una cantidad de hormona "no marcada" de 12 pg/ml. En ambos casos los equipos poseen multiplicadores que permiten amplificar muchas veces la señal de entrada y obtener una medida de la radiación emitida que comúnmente se expresa como "cuentas por minuto" o cpm y que es directamente proporcional a las desintegraciones por minuto del material radiactivo analizado. Hay diversos instrumentos que se utilizan para detectar radiaciones.1 0 Hormona "no marcada" (pg/ml) Si a una muestra problema (por ejemplo suero de un paciente) se añade una concentración de anticuerpo = 5 y de hormona "marcada" = 8. 2 La fracción unida se calcula restando a 1 la fracción libre. es posible conocer la cantidad de hormona "no marcada" presente en la muestra original.6 0.4 0.2 0.140 PRÁCTICAS DE LABORATORIO La radiación puede detectarse y evaluarse de manera relativamente sencilla y precisa al medir la energía liberada durante su interacción con la materia.625 0. Los núcleos de estos átomos son inestables y emiten radiaciones beta que corresponden a electrones de alta velocidad o rayos gamma que corresponden a fotones de muy alta energía. Contar con un método de separación de la fracción libre y unida de la hormona marcada.125 0 La fracción libre se calcula dividiendo la cantidad de hormona "marcada" en el sobrenadante entre la cantidad total de hormona "marcada" utilizada.5 0.9 0. Por ejemplo. Como se habrá notado. se calcula la fracción unida y se interpola en la gráfica. Para la detección y cuantificación de radiaciones beta se utilizan contadores de centelleo cuyo funcionamiento se basa en contar los destelleos producidos cuando una partícula beta interacciona con un material sensible. 2. III. de esta manera el complejo hormonaanticuerpo quedará unido al tubo de ensayo. para poder hacer las gráficas es necesario conocer la fracción de hormona "marcada" unida para lo cual es necesario: 1.7 0.375 0.5 0. 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 33 36 Hormona "fría" añadida 0 2 4 8 16 32 1 Hormona "caliente" (sobrenadante) 3 3 4 5 7 8 Fracción "libre"1 Fracción "unida"2 0.375 0.625 0. Inicialmente se utilizaron emulsiones fotográficas. una muestra problema con una fracción unida de 0. por ejemplo el primer anticuerpo puede estar unido al tubo de ensayo en el que se realiza la reacción.3 0. • Trazador radiactivo: T3 radiactiva marcada con 125I para utilizarla como "antígeno marcado". Un medidor o contador de radiactividad. se han utilizado otros métodos de separación de las fracciones unida y libre. Mezcle cada reactivo por inversión. Las instrucciones del fabricante del estuche son las siguientes: 1. •Solución de lavado. Considere que el fabricante del estuche reporta los siguientes datos: Individuos Eutiroideos Hipotiroideos Hipertiroideos T3 libre en suero 2. Cuente las radiaciones emitidas en un contador gamma. ¿Corresponde este valor al observado en sus gráficas? 2. 6. suero control o muestra problema al tubo adecuado. De acuerdo al procedimiento descrito. El suero control tiene una concentración de 4. se obtuvieron los siguientes resultados: Muestra 1 (cpm) 41 802 2 1 055 15 784 10 892 7 964 2 748 12 058 3 414 10 956 T3 (pg/ml) Cuentas totales 0 2. excepto el de las cuentas totales.3 2 tubos 25 2 tubos Muestras problema 2 tubos para cada muestra 5.) • Suero control: muestra de suero con una concentración de T3 conocida. Deseche el líquido de todos los tubos. (Nótese que de esta manera el complejo hormona-anticuerpo quedará unido al tubo de ensayo y no será necesario utilizar un segundo anticuerpo.6 2 tubos 4.1 pg/ ml de T3. 3. Ponga todos los reactivos a temperatura ambiente. 11.4.2 .02 . agite y deséchelos.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO .6 4. Añada 100 µl de cada estándar. 10. Incube por 2 horas a temperatura ambiente 9.3 25 Suero control Muestra A Muestra B Muestra 2 (cpm) 42 432 19 995 15 384 11 342 7 804 2 600 11 910 3 614 1 0824 Haga las graficas necesarias para contestar las siguientes preguntas: 1. Sobre la base de estos resultados califique el estado tiroideo de los pacientes cuyas muestras se analizaron.7 pg/ml < 2. 3. Añada 2 ml de solución de lavado a cada tubo (excepto al de las cuentas totales). 2009-2010) 141 • Anticuerpo anti-T3: unido a los tubos utilizados en el ensayo.2 pg/ml > 4.6 2 tubos 8. Tape los tubos y agite suavemente. Como datos adicionales se sabe que las concentraciones de la hormona estimulante del tiroides (TSH) para los pacientes A y B son: Paciente A B TSH (mU/l) 0.03 1. Añada 400 µl de trazador radiactivo (T3 marcada) a cada tubo. Calcule las concentraciones de las muestras problemas A y B. Marque los tubos de acuerdo al siguiente diagrama: Cuentas totales Estándares 2 tubos 0 2 tubos 2. 2. Se recomienda hacer duplicados. 8.6 8. 7.7 pg/ml 4. 4. Endocrinología básica y clínica. 1982. 1988. Tesis de licenciatura en Biología.142 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Considere que los valores normales para TSH son 0. Hipotiroideo no tiroideo. Limusa Wiley. Fenton B. Radioimmunoassay for the quantitative measurament of free triiodothyronine (FT3) in human serum. 4a. 5. eds. An introduction to radioimmunoassay and related techniques. Lecturas recomendadas 1.5. Hipertiroideo primario o tiroideo. West DM. México:Editorial El Manual Moderno. . Hipotoroideo no tiroideo. Bioestadística. Biosrce Europe S. México: Facultad de Ciencias. Greenspan FS. Daniel W W. 2. 1998. UNAM. Strewler GJ. México: Ed. 2002. Análisis instrumental.A. Skoog DA. 1983. ed. 6. FT3 RIA CT. 3. Hipotiroideo primario o tiroideo. Amsterdam: Elsevier Biomedical Press.5 mU/l y clasifique a los pacientes A y B según el siguiente cuadro: a) b) c) d) e) Eutiroideo. Chard DT. México: Editorial Interamericana. 4. Desarrollo de un radioinmunoensayo homólogo para la determinación de la hormona de crecimiento de pollo (cGH9). Los tejidos del organismo obtienen energía a partir del ATP./l O2 consumido. El equivalente calórico del oxígeno representa la cantidad de energía (kcal) que libera un alimento al degradarse en presencia de 1 litro de oxígeno. Medir la tasa del metabolismo basal en un sujeto normal.85 kcal. como la edad. Comparar los valores obtenidos con valores estándar. Para una persona con alimentación mixta el equivalente calórico del oxígeno tiene un valor de 4. La caloría representa la cantidad de calor necesaria para elevar la temperatura de 1 cm3 de agua de 14. 2009-2010) 143 14 MEDICIÓN INDIRECTA DEL METABOLISMO BASAL I. INTRODUCCIÓN 1.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . relajada. La tasa metabólica se expresa como la cantidad de calor que se libera durante dichas reacciones químicas.6 kcal/l O2 para las proteínas.5°C a 15. 6. El equivalente calórico del oxígeno es de 5. Factores. La degradación in vivo de los alimentos produce la misma cantidad de energía que su degradación in vitro. Las hormonas tiroideas son frecuentemente causas de alteraciones del metabolismo: el hipertiroidismo aumenta el metabolismo basal mientras que el hipotiroidismo lo disminuye. 5. El consumo energético diario de una persona adulta varia entre 1300 y 5000 kcal.01 kcal/l O2 para la glucosa. el ATP proviene de la degradación de la glucosa. OBJETIVOS 1. 2. 4. 4. 3. la superficie corporal y varias hormonas afectan la tasa del metabolismo. El mantenimiento de la vida requiere consumo de energía. que se multiplica con el equivalente calórico del oxígeno. 137 . 2. 3. El metabolismo basal es el índice metabólico de una persona despierta. de los ácidos grasos. aminoácidos. el sexo. A su vez. cuerpos cetónicos. El índice metabólico aumenta después de comer o hacer ejercicio. 8.5°C. 7. etcétera. 12-14 horas después de comer y a una temperatura ambiente confortable. El metabolismo representa la totalidad de las reacciones químicas que ocurren en el organismo en un momento dado.7 kcal/l O2 para las grasas y de 4. en una bomba calorimétrica. II. El metabolismo total del cuerpo o el índice metabólico se puede medir directamente por la cantidad de calor que genera el cuerpo o indirectamente por su consumo de oxígeno. La medición de esta energía se hace en calorías o kilocalorías (calorías grandes). Medir la tasa del metabolismo después del ejercicio y compararla con la del metabolismo basal. 2. Jeringa de calibración del transductor de flujo (AFT26 o AFT6). el transductor de flujo aéreo. Temperatura ambiente en grados centígrados. Acople el transductor de oxígeno al canal 2 de la unidad MP30 (fig. 1). 7. la pieza bucal acoplada al filtro bacteriano respectando el arreglo de la figura 2. a través de los tubos adecuados. Fig. Presión atmosférica en mm Hg. 8. Inicie el subprograma h29. 3.4 mm Hg). El sistema de análisis de gases necesita un periodo de calentamiento de 10 min. IV. Inicie el programa BSL PRO en la computadora. El sujeto tiene que estar sentado en una posición cómoda y relajada. 7. Acople . 5. • La temperatura ambiente tiene que ser de confort (6580°F). 5. El sujeto respira normalmente por 6 minutos hasta que el sistema de análisis de gases se llena con aire espirado. sistema de análisis de gases y pieza bucal acoplada al filtro bacteriano. Otras mediciones necesarias 1. el sistema de análisis de gases. Unidad de adquisición de datos BIOPAC MP30 ó MP35. 3. 3.BIOPAC (AFT22). 1). • La temperatura central del sujeto tiene que ser normal. Pasos a seguir para efectuar la práctica 1. 2. 6. MÉTODOS 1. 2. Se colocan la pieza bucal y la pieza nasal y se permite al sujeto acostumbrarse con estas herramientas. 4. Conecte la fuente de poder del modulo de análisis de gases (Gas-System2) y encienda el sistema.1 Acoplamiento de los transductores a la unidad MP30 (el transductor de flujo aéreo se conecta al Ch1 y el medidor de oxigeno al Ch2. 4.BIOPAC (2xAFT11C). Acople entre ellos. • El sujeto tiene que estar relajado mentalmente y físicamente. 2. Se oprime el botón Start del programa BIOPAC PRO. 3. Se oprime el botón Stop del programa BIOPAC PRO.gtl (graph template) que permite medir el volumen absoluto de oxígeno (litros) consumido en los últimos 60 seg. Sistema de análisis de gases (GASSys2). Encienda la unidad MP30. MATERIAL 1. 2. Arreglo final del transductor de flujo aéreo. Presión de los vapores de agua a la temperatura ambiente (22. Prerrequisitos de la práctica • El sujeto no debe haber ingerido comida al menos 12 horas antes de la prueba. Fig. Acople el transductor de flujo aéreo (SS1LA) al canal 1 de la unidad MP30 (fig. Transductor de flujo de aire BIOPAC (SS11LA). 5. Filtro bacteriano desechable (AFT1). Válvula en T . . III. 4. Pieza bucal desechable (AFT2).144 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 6. 2009-2010) 145 Tasa metabólica después de un ejercicio moderado 1. 2006. 881-887. 7a. 2003. El sujeto efectúa un ejercicio moderado durante unos 5 min (subiendo un escalón). ANÁLISIS La imagen que se presenta en el despliegue de la computadora tras terminar el registro es semejante a la de la figura 3. ed.. Stuart Ira Fox. 2. Canal CH 1 CH 2 CH 44 (C5) Pantalla Flujo de aire O2E (oxígeno espirado) VO2 (consumo de oxígeno... p. 2. 5. ed. Se oprime el botón Stop del software PRO. 140). Fisiología humana. Calcule el porcentaje de aumento del metabolismo basal después del ejercicio y compare con el porcentaje real (ver.. Utilizando el consumo de O2 medido y el área de superficie corporal se calcula el metabolismo basal según la formula: (VO2)(60)(4. Lecturas recomendadas 1. Guyton & Hall. Calcule el valor ideal del metabolismo basal y el porcentaje de desviación. 5. p. McGraw Hill. 3. 3 Medición Área Media Media . Elsevier. p. V. 1. 4. Se solicita al sujeto respirar tranquilamente aproximadamente durante 6 min. Se oprime el botón Start del programa BIOPAC PRO. Mida el consumo de oxígeno en el canal 3 (VO2) utilizando el valor medio.. Después del ejercicio el sujeto queda sentado en una posición confortable durante 7-8 min. 624-625. Se limpia el sistema de análisis de gases con aire atmosférico utilizando la jeringa de calibración. El valor obtenido es el consumo de oxígeno en litros/min. 11a. Calcule la superficie corporal en m2. STPD) Fig. utilizando la formula: Superficie corporal (m2) = ([Talla (cm) x Peso (kg)]/360)1/2 3.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 2. Fisiología médica. 6.825 kcal/l) Tasa metabólica = ——————————————— (kcal/m2/hr) Superficie corporal (m2) 4. . Archives of Internal Medicine.146 PRÁCTICAS DE LABORATORIO AREA DE SUPERFICIE COPORAL NOMOGRAMA PARA ADULTO MODIFICADA DE: From the formula of Du Bois. Copyright 1916. American Medical Association. 1916. 17:863. que es el lugar de la membrana donde la corriente sale y como consecuencia se produce una deflexión positiva en el registro de EEG. o sea. 141 . fue descubierta a finales del siglo antepasado por Richard Catón y estudiada ampliamente alrededor de los años 30’s por el psiquiatra alemán Hans Berger. se Mecanismos de generación del EEG (origen de la actividad eléctrica cortical) Al colocar electrodos en la superficie de la cabeza se puede registrar una actividad sinusoidal rítmica. la disposición vertical de las dendritas apicales permite la formación de un dipolo entre el extremo superficial y la parte profunda cercana al soma. como en el análisis e interpretación de los resultados. Visto de otra manera. que son el resultado del flujo de corriente de cloro hacia el interior celular (fig. que es el lugar de la membrana donde la corriente entra y genera un potencial extracelular negativo y una fuente activa. dicha respuesta será tan grande cuanto mayor sea el número de vesículas que liberen el neurotransmisor. 2009-2010) 147 15 ELECTROENCEFALOGRAMA I. Cuando el PPS produce despolarización de la membrana postsináptica se le denomina potencial postisináptico excitatorio (PPSE) y se propaga de manera electrotónica a través de la membrana celular. una hiperpolarización de la membrana postsináptica. 2. Los cambios en la dirección del flujo de corriente en este dipolo provocan un potencial eléctrico de onda negativa si se dirigen de la punta de la dendrita al soma y de onda positiva si siguen la dirección contraria. 142). cuando el neurotransmisor produce una respuesta opuesta. la excitación proveniente de los núcleos específicos del tálamo llega a la lámina IV cortical formando allí un pozo. Dicha actividad es el resultado de la suma de múltiples potenciales locales que tienen lugar en las dendritas apicales (ubicadas en la capa I) de las neuronas piramidales que se localizan en la capa V de la corteza cerebral. p. se le denomina potenciales postsinápticos inhibitorios (PPSI). se forma el llamado "pozo activo". tanto en las técnicas de registro. llamada potencial postsináptico (PPS). corresponde a la intensidad del estímulo y decrece en el espacio y el tiempo. Estos potenciales locales son generados por la interacción de neurotransmisores con su receptor específico ubicados en la membrana de dichas dendritas (membrana postsináptica) conduciendo a una respuesta graduada. El principio general de registro es el potencial de campo. 1. Por ejemplo. La localización del pozo y la fuente pueden variar de acuerdo a determinadas condiciones (fig. INTRODUCCIÓN El electroencefalograma (EEG) es una técnica no invasiva que permite el registro de la actividad eléctrica cortical. Debido a que el electrodo se encuentra en la piel cabelluda y más cerca a la fuente. la suma total de los potenciales postsinápticos en un medio conductor. Este PPSE puede alcanzar un nivel crítico de despolarización (umbral) y generar un potencial de acción el cual es propagado hacia el cuerpo neuronal. Esta actividad eléctrica tiene su origen en las capas más superficiales de la corteza. ha ocurrido un desarrollo permanente. En el microcircuito producido durante estos flujos de corriente. es decir. ya sea de despolarización o de hiperpolarización. p.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . durante un PPSE. 143). Ahora bien. lo cual ha permitido describir la existencia de una organización estructural y eléctrica muy compleja de la corteza cerebral. A partir de esa fecha. (a) Muchos impulsos presinápticos. La lesión experimental del tálamo dispersa el ritmo cortical de la región correspondiente. pueden incidir en una sola neurona. En la figura 3 se ilustran los principales grupos celulares de la corteza cerebral involucrados en la generación del EEG. En cambio. Integración sináptica. Si se registra la actividad eléctrica en un núcleo sensorial y la zona de proyección cortical correspondiente. (c) Los impulsos inhibitorios (la hiperpolarización de un PPSI) pueden también sumarse con PPS llevando el potencial de membrana lejos del umbral requerido para generar un potencial de acción. Las neuronas contribuyen al potencial de campo sumado de una población neuronal cuando sus arborizaciones dendríticas son transversales a las láminas corticales. los potenciales de campo tienen una duración de 10 a 250 milisegundos y se propagan de forma electrotónica. En este esquema. En otro ejemplo: las fibras del cuerpo calloso terminan principalmente en las capas superficiales corticales formado ahí un pozo cercano al electrodo de registro. pero no a la inversa. Uno de los principales marcadores del ritmo cortical que se refleja en el EEG es el tálamo.148 PRÁCTICAS DE LABORATORIO registra un potencial positivo en ese momento. . Ademas. también se ha señalado la existencia de marcapasos intrínsecos corticales. 1. ya sea excitatorios o inhibitorios. lo cual se representa como una deflexión negativa. las capas IV y V. la actividad rítmica de ambas regiones coincide. son la fuente de registro del EEG ya que los potenciales sinápticos se suman longitudinalmente a través del eje principal de las neuronas de estas capas. Se considera que los potenciales de acción no contribuyen esencialmente al registro del EEG ya que su duración es de 1 a 2 milisegundos y no se propagan electrotónicamente. Inhibitorio Denditras Excitatorio Excitatorio Interación Potenciales postsinápticos (PPP y PPI) Cono axónico Potenciales de acción iniciados (a) Conducción del impulso 1 Potencial de acción + 30mV 2 Umbral PPE PPE PPE − 55mV − 70mV (b) Neurotransmisor de las neuronas 1y2 1 2 − 55mV − 70mV − 85mV Umbral para el potencial de acción PPI PPE Neurotransmisor inhibitorio Neurotransmisor excitatorio de la neurona de la neurona (c) Fig. preferentemente. (b) Los impulsos excitatorios (las despolarizaciones de PPSE) de diferentes neuronas presinápticas pueden sumarse en la neurona postsináptica y generar un potencial de acción. 2009-2010) 149 1 Fuente 2. CORTEZA CEREBRAL Superficie cortical Interneuronas inhibitorias EEG Potenciales postsinápticos intracelulares de las células piramidades Actividades de las fibras tálamocorticales Potenciales postsinápticos de las células de relevo Células piramidales Fibras tálamo-corticales Núcleos de relevo talámico Interneuronas inhibitorias Células de relevo Fibras aferentes periféricas y de la FRM Actividades de las fibras aferentes Fig. 2.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . En esta figura se muestran las poblaciones de neuronas que participan en la generación de la actividad electroencefalográfica y la fibras aferentes provenientes del tálamo y la formación reticular mesencefálica (FRM). 3 4 5 Fuente Pozo Pozo 6 Aferencia de tálamo Aferencia cortical contralateral Fig. Del lado derecho de la figura se muestra el registro de la actividad eléctrica para cada una de las poblaciones de neuronas. . Variaciones en la localización del pozo y la fuente en un mismo sistema y polaridad del registro. 3. que deben estar humedecidos con pasta conductora. Disposición de los electrodos para la obtención del registro electroencefalográfico de acuerdo con el sistema internacional 10-20. La distancia recomendada entre los electrodos no debe ser menor de 5 cm en un adulto. Así. esto es: 10 % y 20 % de la distancia medida. Los puntos interauriculares. se utiliza un electrodo de la superficie craneal y uno de referencia en la oreja del mismo lado. 4. T=temporal. El inión. Puntos específicos de localización de los electrodos siguiendo la nomenclatura establecida por el sistema 10-20 para la obtención de un electroencefalograma. Este sistema toma como base tres puntos de la cabeza: 1. 5. . De esta forma se definen los siguientes puntos: Fp=frontopolar. Cz. se tienen: Fz. 4). en tanto que los números nones corresponden al hemisferio izquierdo. localizados al comienzo del hueso cigomático delante del trago. 5). La combinación de dos electrodos recibe el nombre de derivación y puede ser monopolar. C=central. Para el primero se mide la distancia nasióninión. pasando por el vértice de la cabeza. La disposición de los electrodos se asocia a un código según el cual los números pares se refieren siempre al hemisferio derecho. Para proceder al registro del EEG se colocan los electrodos. F=frontal. cuando se trata de un electrodo activo y uno de referencia. P=parietal y O=occipital. punto ubicado en la base de la nariz sobre la sutura frontonasal. y firmemente adheridos a la piel cabelluda libre de grasa con el fin de reducir la resistencia eléctrica. oro o zinc. adheridos a la piel cabelluda con pasta o geles conductores. 3. La denominación de esta convención deriva de la fracción del diámetro cefálico medido en centímetros donde se colocan los electrodos de forma equidistante. Fig. Los electrodos que se utilizan normalmente son de plata clorurada. Para el registro bipolar se pueden tener varias combinaciones Nasión Nasión Punto intraocular Inión Izquierdo Derecho Lado izquierdo de la cabeza Inión Superficie de la cabeza Fig. Las letras indican la región que se evalúa.Instrumentación y procedimientos de registro La disposición de los electrodos en la piel cabelluda se ajusta a la recomendación de la Federación Internacional de Sociedades de Electroencefalografía y Neurofisiología Clínica denominado sistema 10-20 (fig. 2. La derivación bipolar utiliza dos electrodos activos cercanos. para el segundo se mide la distancia interauricular pasando por el vértice de la calota. Pz y Oz (fig. situado en la parte posterior de la cabeza y que corresponde a la protuberancia occipital. A los electrodos colocados sobre la línea media se les asigna la letra z (zero) minúscula. El nasión. Este sistema utiliza 20 electrodos que se colocan en sitios específicos de la superficie de la cabeza. Por ejemplo. la cual debe encontrarse por debajo de 10 kohms. La actividad del EEG está compuesta por diferentes ondas que se clasifican en bandas de frecuencia. Por ejemplo: si la altura del EEG mide 14 mm y la señal de calibración mide 7 mm. el tiempo total de registro no debe ser menor de 30 minutos. . etcétera. esta amplificación extraordinaria necesita elementos electromecánicos que evitan la distorsión de la señal y filtros que impiden la contaminación del registro con fenómenos eléctricos ajenos. como son la radiación electromagnética de la red eléctrica y otros aparatos electrónicos. • Frecuencia. • Amplitud. 2. La frecuencia instantánea de una sola onda puede ser determinada midiendo la duración de la onda (tiempo) y calculando el recíproco de este valor. ondas de frente abrupto. Antes de iniciar el registro gráfico se debe medir la impedancia de cada electrodo. Artefactos originados por el sistema. el sujeto de estudio deberá estar comodamente acostado. La distancia entre esos dos extremos es la distancia de la onda que se mide en milisegundos. 64. etcétera. puntas. • Tiempo de la onda. la actividad de los músculos de la cabeza y la actividad electrocardiográfica. Inadecuada conexión a tierra. Sensibilidad y filtros La actividad electroencefalográfica es una señal eléctrica débil que requiere una amplificación de voltaje de hasta un millón de veces para poder obtener su registro. La amplitud de la señal del EEG se atenúa como consecuencia de la resistencia que presentan al paso de corriente las estructuras de la calota que también son responsables de filtrar (eliminar) las frecuencias altas. relajado y quieto. Se recomienda mantener ligeramente abierta la boca durante el registro para relajar los músculos temporales y evitar la interferencia por electromiografía. marcapasos cardiaco. por ejemplo: de transversal a longitudinal.de electrodos. sudación. actividad muscular. Análisis del registro Un registro de EEG está compuesto por varios parámetros: • Forma (morfología) de la onda. entre dos extremos análogos. El número de derivaciones que puedan registrarse simultáneamente depende del número de canales (amplificadores) que tenga el sistema de registro. 16. fisiógrafo o sistema computarizado) se calibra con un pulso de +/. Para iniciar el registro. las anteroposteriores y las transversales. Los filtros de alta frecuencia se seleccionarán en 70 Hz. Los electrodos que se colocan en el lóbulo de la oreja para un registro monopolar se denominan A1 el izquierdo y A2 el derecho (A = auricular). De la misma manera. Después de unos minutos de registro. de derecha a izquierda. electrodos movedizos o defectuosos. pero las más frecuentes son las longitudinales. Las ondas del EEG (oscilación) se forman por la evolución del potencial entre dos máximos o dos mínimos. por ejemplo: 8. temblor. Parpadeo. La presentación en periodos más o menos constantes en el tiempo se describe como ritmo. Posteriormente. La frecuencia se refiere al número de veces en que se repite una onda en un segundo. Artefactos biológicos. Es importante señalar que en ocasiones se observan grafoelementos en el trazado que no corresponden a actividad electroencefalográfica y que se denominan "artefactos" y los podemos considerar de dos tipos: 1. y es equivalente a 50 µV. línea base defectuosa. el sistema de registro (polígrafo. transversal o circunferencial.50 µV con un desplazamiento de la plumilla de 1 cm y una velocidad de papel de 30 mm/s. Cuando una onda o un complejo se repiten en intervalos largos se conoce como periodo. movimientos del cable. una onda de 14 mm tendrá una amplitud de 100 µV. 32. lo cual depende del número de canales del equipo utilizado y de las preferencias del electrofisiólogo. Se denomina montaje a la combinación de derivaciones que se registran simultáneamente pudiendo ser combinaciones de derivaciones en sentido longitudinal. se cambia el montaje. Por ejemplo: se pueden presentar ondas en arcadas. La diferencia entre los valores máximos y mínimos determina la amplitud. la apertura y cierre de los ojos se deberá efectuar de manera suave. es decir. Es la medida de la distancia vertical de la onda y se expresa en mV. • Periodo. • Delta. puede definirse como muerte cerebral. Fig. En los adultos su aparición en estado de vigilia es patológica.5-4. Se encuentra en la región correspondiente a los lóbulos temporales y en forma más generalizada y prominente durante el sueño MOR (movimientos oculares rápidos). • Alfa. a ambos lados del cráneo. En algunas ocasiones se presenta en ráfagas y normalmente es bloqueado por la apertura palpebral. Los patrones del EEG pueden aparecer en una gran área.0 Hz y un voltaje alrededor de los 200 µV. Ritmos Se ha identificado una gran cantidad de ritmos en el EEG. pero hay dominancia de alguno de ellos según el estado fisiológico y la región registrada. Se caracteriza por una frecuencia de 0. así como la representación compactada por bandas de frecuencia o su presentación topográfica en color en un esquema de la superficie de la cabeza. • Theta. a saber: alfa. En forma simplificada. se registra fundamentalmente en las regiones anteriores del cerebro (frontales) y es característica del estado de vigilia y atención. Se refiere a la ocurrencia de la actividad eléctrica registrada por los electrodos colocados en diferentes partes del cráneo. beta. theta y delta (fig. pero se estabiliza alrededor de los 10 años. Esto se denomina banda de frecuencia o espectro de frecuencia. . 6). En los infantes se puede identificar desde los 6 años. El espectro de frecuencia se puede descomponer usando el análisis espectral. es la de menor voltaje de 5 a 50 µV. el principio se basa en considerar a la actividad eléctrica cortical como una mezcla de fluctuaciones de voltaje sinusoidales y rítmicas que cubren un rango de entre 1a 60 Hz. Se identifica por tener una frecuencia entre 8 y 12 Hz con un voltaje entre 50 y 100 µV. Con fines clínicos se consideran cuatro ritmos básicos. • ·Beta. • Simetría. su frecuencia se encuentra entre 5-7 Hz y su amplitud entre 75 y 125 µV. es importante señalar que los diferentes ritmos pueden encontrarse todos en un determinado registro. en un número de ondas sinusoidales separándolas por sus diferentes frecuencias. Morfología de los diversos tipos de ondas que pueden ser registradas durante la obtención de un electroencefalograma Métodos de análisis El uso de computadoras permite el análisis cuantitativo de la actividad electroencefalográfica. morfología y frecuencia en dos zonas homólogas. predomina en las regiones posteriores del cerebro y se presenta durante el estado de vigilia y relajación con los ojos cerrados. Es característica de las fases 3 y 4 del sueño de ondas lentas.152 PRÁCTICAS DE LABORATORIO • Distribución. Por otro lado. 6. La simetría se refiere a que la señal del EEG es igual en amplitud. sobre un solo lado o en una pequeña área. Presenta una frecuencia entre los 13 y 25 Hz. pero puede encontrarse en niños y su proporción indica el grado de madurez electrocortical. La ausencia de actividad eléctrica cerebral (EEG isoeléctrico). Registrar un EEG de un sujeto en reposo y despierto con los ojos abiertos y cerrados. Buenos Aires: FADEC. 1987. Evaluación electrofisiológica del daño cerebral. • Con fotoestimulación. Topographic mapping of brain electrical activity. Así. Schwartz J. México: McGraw Hill Interamericana. De la misma manera. En: Kandel E. Teóricamente se requiere un número infinito de componentes de frecuencia para representar la forma de una onda compleja. Surwillo. Martin HJ. Alcaraz V. Generalmente los resultados se expresan en promedio elevados al cuadrado y a esto se denomina espectro de potencia que representa un resumen de los componentes de frecuencia de cada banda en periodos variables de tiempo. México: Editorial Trillas. 4. Para hacer el análisis espectral se emplea un método conocido como análisis de series de Fourier. theta y delta. Duffy F. una representación aceptable de la forma de onda se puede obtener combinando los primeros ocho o diez componentes en cada serie. 1985. 777-791. III. 6. que permite acentuar la actividad alfa y corroborar su disminución con la atención. Eisevier Science Publishing. • Hiperventilando (respirando rápido y profundo) con los ojos cerrados. 3 Registrar un EEG de un sujeto despierto. Electroencephalographic: basic principies.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 2001. II. 1989. 5. Springer-Verlag. • Realizando cálculos mentales aritméticos con los ojos cerrados. Iyir D. p. 7. p. p.47-56. es necesario finalizar cada sección antes de iniciar la otra. 2nd ed. Clinical electroencephalographic and topographic brain mapping. MANIOBRAS EXPERIMENTALES Para hacer el registro de cada una de las condiciones experimentales propuestas en los objetivos. eds. clinical applications and related fields. Maniobras Las maniobras que se utilizan en la electroencefalografía clínica son las siguientes: cierre de los ojos. Manuales Departamentales. beta. eds. 63-103. EUA: Ed. 2009-2010) 153 amplitudes y relaciones de fase. se dividirá esta práctica en dos secciones: 1. Cada componente indica la amplitud en la composición de una onda de frecuencia específica y estos datos se grafican en un histograma con la amplitud en la ordenadas y la frecuencia en las abscisas. 2. 3. . Principies on neural science. Departamento de Fisiología. Ferrero A. • Con audioestimulación. sin embargo. Análisis computado del EEG. 1986. Lopez da Silva F. • Desvelado. Jessel T. La hiperventilación. Daño cerebral. 1987. Butterworths. Lecturas recomendadas 1. Ritmos cerebrales en reposo (EEG I). fotoestimulación y sueño son maniobras que pueden desencadenar descargas epileptiformes en el registro. 2. OBJETIVOS EXPERIMENTALES 1. 4. En: Harmony T. Identificar y examinar los componentes del complejo EEG alfa. Niedermeyer E. • Relajado con los ojos abiertos. 3th ed. en reposo y bajo las siguientes condiciones: • Relajado y con los ojos cerrados. Ferrero R. deberá prepararse y calibrarse el BIOPAC (estos procedimientos son exactamente iguales en cualquiera de las dos secciones). 1991. 2. Alcaraz V. EUA: Urban and Schwarzenberg. cada vez que se inicie cualquiera de ellas. Ritmos alfa bajo diferentes estímulos (EEG II). Duffyr. The collective electrical behavior of cortical neurons: The electroencephalogram and the mechanism of epilepsy. Programa de estudios teórico-práctico 2000-2001. Examinar las diferencias en la actividad de ritmo alfa durante cálculos mentales aritméticos e hiperventilación y compararlo a la condición control de ojos cerrados y relajación. EUA: Ed. • Conectar el grupo de cables-electrodo a la unidad BIOPAC MP30 al CH-1. en reposo. en reposo. en reposo. con los ojos cerrados y sin moverlos durante 20 segundos mientras que realiza cálculos mentales. 3. aparecerá en la pantalla el registro del EEG con una línea isoeléctrica. en ese momento se deberá presionar el botón de "Suspend" para detener el registro. con los ojos cerrados y sin moverlos durante 10 segundos. . relajado. ii) CALIBRACIÓN DEL SISTEMA 1. se deberá activar el botón «Record» iniciándose así la adquisición de los datos de las siguientes maniobras experimentales secuenciadas: PRIMERA PARTE 1. en reposo. Sujeto en reposo con ojos cerrados El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. se deberá presionar el botón de "Suspend" para detener el registro. • Colocar las guías de los cables-electrodo en DII: conectar la guía roja y la blanca a los electrodos colocados en los sitios seleccionados de acuerdo al sistema 10-20 y la guía negra al electrodo colocado en el lóbulo de la oreja que servirá como tierra del sistema. Sujeto en reposo con los ojos cerrados El sujeto de estudio nuevamente permanecerá en posición sentada. SEGUNDA PARTE Preparación del sistema del registro i) COLOCACIÓN DE LOS SISTEMAS DE REGISTRO • Colocar tres electrodos de la siguiente manera: coloque uno en la piel del lóbulo de la oreja. se deberá presionar el botón de "Suspend" para detener el registro.154 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 3. en reposo. 2. con los ojos abiertos sin moverlos y sin parpadear durante los 10-15 segundos que dura el registro. Sujeto en reposo con los ojos abiertos El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. Después se activarán de izquierda a derecha cada uno de los botones de frecuencia y al final se activará el botón de "Done". relajado. Sujeto en reposo con los ojos cerrados y realizando cálculos matemáticos Tras haber activado el botón de "Resume". Sujeto en reposo con los ojos cerrados e hiperventilando Tras haber hiperventilado durante dos minutos y activado el botón de "Resume". el sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. El sujeto de estudio debe de estar relajado durante aproximadamente 15-20 segundos. Al término de la maniobra anterior se activará el botón de "Stop" finalizando así la adquisición de datos. Sujeto en reposo con ojos cerrados El sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. los otros dos serán colocados sobre la piel cabelluda en algún punto seleccionado acorde al sistema 10-20. con los ojos cerrados y sin moverlos durante los 10-15 segundos que dura el registro. el sujeto de estudio permanecerá en posición sentada. relajado. Tras haber seleccionado la práctica correspondiente (ya sea EEG I ó EEG II) y haber activado en forma secuencial el botón de "Calibración" y "OK". con los ojos cerrados y sin moverlos durante 10 segundos. Ahora. con los ojos cerrados y sin moverlos durante los 10-15 segundos que dura el registro. 2. relajado. Al transcurrir este tiempo. en reposo. Al transcurrir este tiempo. relajado. relajado. en cada sección de esta práctica se estipulará. Ritmos cerebrales en reposo (EEG I) • La desviación estandar (stddev) que representa las amplitudes de ritmos cerebrales. Se seleccionarán diferentes segmentos del registro mediante el cursor y se obtendrán los datos para analizarlos y discutirlos con el profesor. • La media (media) que muestra el valor promedio en el área seleccionada. 2009-2010) 155 IV. en una de las "cajas de medición". 2. . • La frecuencia (Freq) que convierte el segmento tiempo del área seleccionada a frecuencia en ciclos por segundo. Ritmos alfa bajo diferentes estímulos (EEG II) • La desviación estandar (stddev) que representa las ampitudes de ritmos cerebrales. las mediciones correspondientes de la siguiente manera: 1. • La frecuencia (Freq) que convierte el segmento tiempo del área seleccionada a frecuencia en ciclos por segundo.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . ANÁLISIS DE DATOS Tras haber entrado al modo de "Revisión de datos guardados" y escogido el archivo a analizar. Tabla 1. Completar la tabla 2 con las frecuencias para cada ritmo y calcular la frecuencia media Tabla 2. Mediciones de frecuencia EEG. Mediciones de amplitud de EGG.( ) / Fem. ( ) Fecha__________________ A. Desviación estándar (stddev) Ritmo Alfa Beta Tetha Delta Canal Ojos cerrados Ojos abiertos Ojos cerrados B. Altura ___________ Sexo: Masc. Cálculo de datos Perfil del sujeto: Nombre del sujeto de estudio _______________________________________________________________________ Estatura__________. Frecuencia (Hz) . Edad_____________. Completar la Tabla 1 con mediciones de desviación estándar.156 P RÁCTICAS DE LABORATORIO ELECTROENCEFALOGRAMA INFORME Nombre del estudiante______________________________________________________________________________ Sección de laboratorio_____________________ I. Peso_____________. 1. Tabla 3 Segmento 1 Condición Ojos. =) 1 2 3 . Completar la tabla 3 con las amplitudes de los datos registrados en las condiciones control y experimentales. 2008-2009) 157 C. más pequeña (-). ¿Está de acuerdo con los valores esperados? Si ( ) No ( ) Completar la tabla 4 con los valores promedio del canal rms-alfa en la tabla 3. Frecuencia. Tabla 4 Segmento Condición experimental Realizando cálculo mental matemático Recuperándose hiperventilación Ojos abiertos Media Media experimental control Diferencia (expcontrol) Resumen (+.. Amplitudes. 2. recuperándose de la hiperventilación Ojos abiertos EEG bruto [Stddev-1] Alfa [Stddev-41] Rms Alfa [Media-42] 2 3 4 D. ejecutando cálculo matemático mental Ojos cerrados. Resuma si la media experimental fue más grande (+). Usted necesitará calcular la diferencia entre la media experimental y la media control. o la misma (=) que la media control. ¿Cuál es la frecuencia de un ritmo alfa desde el dato del segmento 1?__________Hz. La "media control" es la medida rms-alfa del segmento 1 de datos.cerrados (control) Ojos cerrados.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO .. Preguntas 1. 3. a) ¿Cuándo los ojos están abiertos ocurre desincronización del ritmo alfa? b) ¿En el estado "ojos abiertos" el ritmo beta se hace más pronunciado? 2.158 PRÁCTICAS DE LABORATORIO II. Defina los siguientes términos: • Ritmo alfa: • Ritmo beta: • Ritmo theta: • Ritmo delta: 4. ¿Qué podría explicar la diferencia de amplitud de ondas registradas desde un sujeto analizado solo en un cuarto oscuro y sujetos analizados en un laboratorio lleno de estudiantes? . ¿Cuándo los ojos están abiertos hay un aumento en la actividad theta y delta? Explique su observación. ¿El sujeto necesitó concentrarse durante los problemas matemáticos? ¿Cómo podría el nivel requerido de concentración afectar los datos? Si ( ) No ( ) 5. Examine los ritmos theta y delta. Examine las formas de las ondas alfa y beta para los cambios entre los estados "ojos cerrados" y "ojos abiertos". 2. no correlacionados con el estimulo. El uso de esta técnica se basa en que los estímulos repetitivos externos generan respuestas eléctricas cerebrales con latencia y morfología reproducibles. lo que conserva los PP y elimina las señales aleatorias. De manera más concreta. Traumatismos cráneoencefalicos.1-20 microvoltios) los PP no pueden ser observados directamente en el registro del electroencefalograma (EEG). 10. Monitorear de manera objetiva los cambios del estado de un paciente en el transcurso del tiempo. 5. Los PP han sido estudiados en sujetos normales y en pacientes con enfermedades neurológicas desde el principio de los años 1950. mientras que las ondas EEG y el ruido eléctrico representan fenómenos aleatorios. Enfermedades neuromusculares. 12. Demencia.) y de baja amplitud (~ 0. Lesiones de la vía óptica. En la práctica médica se emplean de manera corriente tres tipos de registro de PP: potenciales provocados visuales (PPV). auditivos (PPA) y somatosensoriales (PPSS). Los PP consisten de una sucesión de ondas eléctricas generadas por el paso de la excitación a través de las vías nerviosas aferentes y por la activación de la corteza sensitiva. Para obtener potenciales provocados. se aplican estímulos sensoriales repetitivos y se graba en una computadora digital la actividad eléctrica del cerebro inmediatamente después de la aplicación de estos estímulos. INTRODUCCIÓN Los potenciales provocados en general Los potenciales provocados (PP) son respuestas eléctricas del cerebro a la aplicación de estímulos externos. Demostrar la existencia de una anomalía de un sistema sensorial no sospechada clínicamente y que acompaña una enfermedad sistémica (enfermedad desmielinizante del sistema nervioso. por ejemplo). pero su empleo en la práctica médica de rutina se generalizó a partir de 1970. 4. 2.5 µV) producidas por la activación eléctrica de tractos y núcleos sensitivos del tallo cerebral y de . Las ondas que componen un PP son de tres tipos: a) De latencia corta (1-20 mseg. Demostrar la existencia de anomalías de una función sensorial cuando la historia clínica o el examen clínico proveen datos erróneos o inciertos. 4. 14. el registro de los PP en la clínica se utiliza para el estudio de: 1. 2009-2010) 159 16 POTENCIALES PROVOCADOS AUDITIVOS I. 8. Se promedia la amplitud de las señales adquiridas. Las utilidades clínicas generales de los PP consisten en: 1. 6. 3. Enfermedades desmielinizantes. Ambliopía. 9. Coma. Neuritis óptica. Lesiones del cordón espinal Accidentes vasculares cerebrales. 3. Silencio electrocerebral. Lesiones de los nervios periféricos Enfermedades de la retina. 11.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . 13. La separación de los PP de las ondas EEG y del ruido eléctrico de fondo se realiza a través del proceso de promediación. Debido a la amplitud reducida de sus ondas (0. 7. Tumores del tracto óptico. Ayudar a determinar la distribución anatómica de un proceso mórbido. etcétera) La latencia de los potenciales provocados se expresa en milisegundos. Entre menor la duración de la onda analizada. Entre mayor el número de bits. La promediación de las señales EEG se hace con una computadora digital. inconstantes como forma y amplitud. estas ondas son constantes en su forma. si el electrodo E1 se vuelve más negativo que E2 (o E2 más positivo que E1). Lo que significa que el sistema de adquisición de datos detectara cambios mínimos de amplitud de la señal de 39 mV. b) De latencia media (21-60 ms) c) De latencia larga (61-300 mseg) de gran amplitud (5-50 µV). El intervalo de tiempo entre las puntas de dos ondas de un potencial provocado se llama "latencia interondas" o "latencia interpuntas". Los parámetros que se utilizan de manera común para la separación de las ondas del potencial provocado son la latencia y la polaridad. . más fina (exacta) será la medición de la señal. las diferencias de potencial recogidas por los electrodos.160 PRÁCTICAS DE LABORATORIO otras zonas subcorticales. etcétera) o la latencia (mseg) de estas ondas (N100. etc. P20. Cualquier potencial provocado tiene ondas positivas y negativas denominadas de manera abreviada con "N" (negativo) y "P" (positivo). P2. N2. La frecuencia de muestreo se expresa habitualmente como el intervalo de tiempo entre dos muestras sucesivas. Los potenciales provocados se obtienen a través de un registro EEG bipolar en el cual se emplean dos electrodos activos (E1 y E2) acoplados a la entrada de un amplificador. duraciones y polaridades.096) niveles de discriminación. tidor AD de 8 bits con una señal de entrada de 10 V la discriminación máxima será 10V/256 niveles = 39 milivoltios. Por lo tanto. La frecuencia de muestreo representa la frecuencia con la cual el convertidor "lee" la señal EEG. Estos aparatos tienen dos características importantes: la frecuencia de muestreo y la resolución de amplitud. El registro de las señales que contienen el PPA se realiza mediante el uso de electrodos colocados sobre la piel cabelluda. La frecuencia de muestreo para las ondas rápidas del potencial provocado auditivo del tallo cerebral es 40 000/segundo. mientras que un convertidor AD de 12 bits tendrá 212 (4. Por ejemplo. Estos electrodos son generalmente confeccionados de oro o de plata clorurada y tienen una forma de campana para poder ser llenados con una crema o gel conductor. El registro de los potenciales provocados requiere de electrodos que se colocan sobre la piel cabelluda para recoger las señales del EEG. y después amplificadas. Representa el intervalo de tiempo entre la aplicación del estimulo y la punta de una onda del potencial provocado. La impedancia del contacto entre el electrodo y la piel debe de ser menor de 3 000 Ω para poder obtener un registro de buena calidad. Para un conver- LOS POTENCIALES PROVOCADOS AUDITIVOS (PPA) Son potenciales de muy bajo voltaje producidos por el cerebro como respuesta a la aplicación de varios tipos de estímulos auditivos. Un convertidor AD de 8 bits tendrá 28 (256) niveles de discriminación. Las señales recogidas por los electrodos son amplificadas hasta 500 000 veces y filtradas entre 100 Hz (filtro pasa alto) y 3 000 Hz (filtro pasa bajo). y P1. Las ondas del PPA tienen amplitudes entre 2 y 10 µV para los potenciales corticales y menos de 1 µV para los potenciales provocados auditivos del tallo cerebral. La nomenclatura de las ondas de los potenciales provocados. P3. amplitud y duración y son poco afectadas por barbitúricos o anestesia general. La polaridad de las ondas del potencial provocado. El potencial provocado auditivo presenta una sucesión de ondas de diferentes amplitudes. fácilmente alterables por estados psíquicos como falta de atención. La resolución de amplitud se expresa como el número de niveles de amplitud ("bits") que puede discriminar la instalación. N3. La fijación a la piel de los electrodos se hace con colodión. Por convención. un intervalo entre muestras de 1 mseg significa que los valores de la señal analógica se leen 1 000 veces/segundo. latencias. A estas letras se les agrega un sufijo que representa sea la secuencia temporal de las ondas (N1. tienen que ser convertidas de voltios a números para ser promediadas. se grabara una deflexión (onda) hacia arriba. mayor tiene que ser la frecuencia de muestreo para caracterizar adecuadamente la señal. El proceso de conversión analógico-digital se realiza con convertidores AD. VI = cuerpo geniculado medial. 2. con origen en la corteza auditiva). 1 y 2) con una latencia de 1. 2. Tiempo base = 0 a 15ms Potenciales provocados auditivos de latencia media ABR MLR pa Onda V 3.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . III = oliva superior (cuerpo del núcleo trapezoide). 4. Los potenciales provocados auditivos "tardíos".1. con origen en la corteza auditiva) (fig. Determinación del estado del VIII par craneal (nervio auditivo) y del estado del tallo cerebral en niños. SA = artefacto de estimulación auditiva. Fig. Los potenciales auditivos provocados "lentos" que incluyen las ondas P1-N1-P2 (con latencia de 50-200 mseg. 3. con una latencia de 30 mseg. Potenciales auditivos del tallo cerebral (fig. El potencial provocado auditivo de latencia media (fig. Tiempo base = 0 a 80ms Potenciales provocados auditivos lentos (MMN) P1 P2 MMN -N1 Tiempo base = -50 a 500 ms Fig. 2. VII = vía genículocortical. 2009-2010) 161 Los componentes del potencial provocado auditivo se dividen en cuatro grupos: 1.5-15 mseg producidos por el nervio craneal VIII (ondas I y II) y las estructuras (núcleos) del tallo cerebral involucrados en la vía auditiva (onda V producida por el lemnisco lateral y el colículo inferior). IV = núcleo del leminsco lateral. Determinación de los umbrales auditivos en niños con hipoacusia. II = núcleo coclear. Principales componentes de los potenciales provocados auditivos. Examinación de rutina para la función auditiva de los recién nacidos. 4. . 1) aparece 25-50 mseg después del estimulo que incluye las ondas Na (negativa. V = coliculo inferior. I = nervio coclear. Fig. 3. 1). que sigue inmediatamente después de la onda V del potencial auditivo del tallo cerebral) y Pa (positiva. Colocación de los electrodos de registro de los potenciales provocados auditivos y del dispositivo OUT101. Potenciales provocados auditivos del tallo cerebral Onda I Onda V Usos clínicos de los potenciales provocados auditivos 1. Determinación del umbral auditivo en adultos. Componentes del potencial provocado auditivo del tallo cerebral y sus orígenes. 162 P RÁCTICAS DE LABORATORIO no habrá disparos, minimícela o colóquela en un extremo de la pantalla. Colocación de los electrodos 1. El sujeto debe de quedarse tranquilo, de preferencia en un cuarto semioscuro. 2. Se utilizan dos electrodos de registro (con una tierra) conectados a la unidad de adquisición MP30. 3. Se remueven todas las joyas que tenga el sujeto. 4. Se limpia la piel con alcohol antes de colocar los electrodos. 5. Se aplica una gota de gel sobre el electrodo. 6. Se aplica la gorra de nylon para mantener los electrodos fijos. 7. Se dejan los electrodos fijados en su lugar sobre la piel cabelluda 5 min. antes de comenzar el registro. 8. Se colocan tres electrodos desechables sobre el sujeto de la siguiente manera: a) El electrodo rojo se coloca sobre el vértice del cráneo. b) El electrodo blanco se coloca sobre el cuello, inmediatamente detrás de la oreja que va a recibir el estímulo auditivo. c) El electrodo negro en la misma posicion que el blanco pero del lado opuesto de la cabeza. 9. Fijación del transductor OUT 101: II. OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA 1. Presentar estímulos auditivos a un sujeto humano. 2. Grabar los potenciales provocados auditivos. III. EQUIPO 1. Computadora IPM compatible con el programa Windows. 2. Programa Biopac Student Lab Pro. 3. Unidad de adquisición de datos BIOPAC (MP30). 4. Neuroestimulador BIOPAC (BSLSTMA). 5. Audífonos BIOPAC (OUT101). 6. Electrodos desechables BIOPAC. 7. Cable para acoplar electrodos (SS2L). 8. Gel para electrodos. 9. Alcohol. 10. Gorra de nylon. IV. MONTAJE 1. Conecte la entrada "Trigger" del neuroestimulador con la salida analógica ("Analog output") de la parte de atrás de la unidad MP30. 2. Conecte el electrodo de referencia en el canal 2 de la unidad MP30. 3. Conecte el cable SS2L de los electrodos al canal 1 de la unidad MP30. 4. Conecta el dispositivo OUT101 al neuroestimulador. 5. Fije el neuroestimulador al nivel "0" y en el rango de "0-10V". 6. Encienda el neuroestimulador. 7. Encienda la unidad MP30. 8. Encienda la computadora. 9. Active el programa BSL PRO en la computadora y abre el templado AEP escogiendo "File menú> Open>choose Files" (fig. 4). 10. No cierre la pantalla del estimulador, de lo contrario Fig. 4. Templado AEP (auditory evoked potentials) del programa BSL PRO. FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO , 2009-2010) 163 a) Se fija una cubierta de espuma al extremo de un tubo de plástico limpio. b) Se aprieta la espuma de tal manera que se acomode al interior del conducto auditivo externo. c) Se fija el transductor OUT 101 a una parte de la ropa del sujeto para evitar su salida de la oreja. 10. Se fijan los electrodos y el transductor utilizando una gorra de plástico. d) Oprima el botón "Ave Start" para empezar la promediación. 7. Configure los canales para las siguientes mediciones: a) Canal: "SC" para el canal seleccionado y la medición "Min" para el valor mínimo. b) Canal: "SC" para el canal seleccionado y "Max" para obtener el valor máximo. c) Canal: "SC" para el canal seleccionado y "xaxis:T" para medir el tiempo. 8. Por medio de la herramienta I-beam, mida la respuesta más negativa. V. PROTOCOLO DEL EXPERIMENTO 1. El paciente debe estar sentado en un cuarto oscuro, silencioso. 2. Se oprime el botón "Start" en la ventana BSL Pro. 3. Se incrementa lentamente el nivel ("Level") del neuroestimulador de tal manera que el sujeto pueda escuchar de manera clara el ruido del estímulo. 4. Oprime el boton "Stop" en la ventana BSL PRO para detener la grabación. 5. Se selecciona el menú "MP30>Setup Acquisition" y se oprime el botón Reset para llevar el tiempo de registro a 0. 6. Se oprime el botón "Start" en la ventana BSL PRO para empezar grabar los datos. 7. Espere algunos minutos para que el sistema detenga automáticamente el registro. VI. ANÁLISIS DE LOS DATOS EXPERIMENTALES (figuras 5 y 6) 1. Oprima el botón "Autoscale horizontal" para mostrar todos los datos experimentales. 2. Utilice la lupa electrónica para amplificar en la pantalla de la computadora la imagen correspondiente a tres o cuatro estímulos auditivos. 3. Seleccione el canal 1 (CH 1) en la esquina superior izquierda de la ventana de registro. 4. Utilice la herramienta I para resaltar en la pantalla un pulso de estímulo. 5. Oprima el botón "Edit" del menú principal y escoja "Select all". 6. Váyase al menú "Transform" y escoja "Find peak". a) Marque el rubro "Off-line Averaging". b) Configure "Control channel" para "CH 2–Stimulator". c) Establezca 30 ms para "Set second cursor to" . Fig. 5. Configuración del programa de analisis de los datos experimentales. Fig. 6. Análisis de los datos experimentales. 164 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 17 LOS REFLEJOS EN EL SER HUMANO Señalaremos algunos conocimientos previos mínimos e indispensables para llevar a cabo la práctica: anatomía e histología del sistema nervioso, la organización y elementos de un arco reflejo; los procedimientos para la exploración y examen de los reflejos tendinosos, el tiempo de reacción de un reflejo, la facilitación de los reflejos, la respuesta de diferentes reflejos en el individuo íntegro o normal, la discriminación y el tiempo de reacción, un reflejo condicionado, el condicionamiento y la extinción de un reflejo. del concepto de reflejo como se entiende y se aplica actualmente. Muchos ejemplos de la vida diaria son familiares: al tomar un objeto caliente retiramos la mano aun antes de que estemos conscientes del dolor por el calor y, por lo tanto, antes de que nosotros pudiéramos haber reaccionado voluntariamente. El tocar la córnea del ojo causa un parpadeo inmediato (reflejo corneal). Los cuerpos extraños en la tráquea producen tos. Cuando el alimento toca la parte posterior de la garganta se inicia la deglución. Pero la mayoría de los reflejos ocurre sin que lo notemos conscientemente; por ejemplo: los reflejos que aseguran el paso del alimento a través del estómago y los intestinos y su degradación, y aquellos que ajustan continuamente la circulación y la respiración a las necesidades momentáneas del cuerpo. Asimismo, apenas nos enteramos normalmente de todos los reflejos motores que día y noche mantienen el cuerpo en el espacio, en balance y por una combinación apropiada de fuerzas codireccionales y opuestas nos permiten realizar movimentos voluntarios con facilidad y precisión. El término arco reflejo indica un circuito neuronal completo que comprende desde el receptor periférico a través del sistema nervioso hasta el efecto periférico. Los elementos de un arco reflejo son el receptor periférico, una vía aferente, una o más neuronas centrales, una vía eferente y un efector. Todos los receptores participan en reflejos de algún tipo, así que sus fibras aferentes sirven como la vía aferente del arco reflejo de que se trate. El número de neuronas centrales en un arco reflejo es siempre mayor de uno, menos en el reflejo miotático. La vía eferente está representada por los axones motores o por las fibras postganglionares del sistema nervioso autónomo, y los efectores son las musculaturas esquelética o lisa, el corazón y las glándulas. El tiempo entre el principio de un estímulo y la acción del efector se denomina tiempo del reflejo o tiempo de reac- I. INTRODUCCIÓN En esta práctica se estudian circuitos neuronales sencillos del tipo de los que se encuentran comúnmente en varias partes del sistema nervioso. Estos circuitos básicos neuronales sirven, por ejemplo, para amplificar señales débiles, atenuar actividad muy intensa, enfatizar contrastes, mantener ritmos o conservar a un grupo de neuronas en su rango óptimo de trabajo por medio de un ajuste de la ganancia. Los receptores son los sensores del organismo que permiten detectar cambios ocurridos en el mismo o en el ambiente y subsecuentemente reaccionar a ellos. En muchos casos las aferencias de los receptores hacen tales conexiones que siempre que son activados el resultado es una conducta particulares estereotipada, la cual en el curso del desarrollo filogenético o individual ha mostrado ser una respuesta especialmente apropiada. Estas reacciones estereotipadas de los organismos a los estímulos sensoriales son denominadas reflejos. El término reflejo se introdujo en la nomenclatura fisiológica hace más de 200 años para indicar la observación de que un estímulo doloroso en la pata de una rana decapitada producía el retiro de la pata siempre y cuando no se destruyera la médula espinal. El análisis de los reflejos segmentarios estableció los fundamentos En los siguientes experimentos serán necesarias dos personas. MATERIAL 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 martillo para reflejos. 5.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Describir y explicar el reflejo de acomodación. Obtener un reflejo condicionado y explicar en qué consiste la respuesta en el reflejo condicionado que obtuvo. Además de la expresión reflejo de estirameinto. recipiente metálico. Explicar el reflejo uvular y cómo actúa este reflejo en la deglución. Los arcos reflejos para estos reflejos adquiridos. Este reflejo se denomina reflejo de estiramiento y es el ejemplo más simple de un arco reflejo completo. se usa generalmente el término reflejo miotático. alfiler. residen generalmente en los niveles altos del sistema nervioso central. 2009-2010) 165 ción. Estudiar el efecto de la discriminación en el tiempo de reacción y explicar los resultados. Describir y explicar la extinción del reflejo condicionado que obtuvo. 3. Explorar sistemáticamente los reflejos de estiramiento es importante. 4. la aferente y la eferente. la transmisión a través de las sinapsis en la neuronas centrales (tiempo sináptico). Hacer un examen de los reflejos y explicar sus respuestas. Observar y medir la reacción de las pupilas en el reflejo cilioespinal. Ejemplos familiares de los reflejos adquiridos son los reflejos condicionados y los cambios conductuales que se producen por el condicionamiento operante. una de asociación y una eferente o motora. por lo tanto. Esquematizar los reflejos estudiados. linterna de mano. A excepción del reflejo de estirameinto monosináptico. Estos reflejos son entonces polisinápticos. regla de 40 cm. IV. 6. la transmisión de la vía eferente al efector (por ejemplo. baraja. El reflejo del tendón rotuliano es la excepción. OBJETIVOS 1. Tres neuronas son al menos necesarias para las acciones reflejas en el ser humano: una aferente o sensitiva. Observar y describir el tiempo de reacción y explicar en términos de la velocidad de conducción de impulsos en los nervios. todos los arcos reflejos comprenden varias neuronas centrales en serie. abatelenguas. 9. que pueden también ser olvidados. 2. el acople excitación-contracción). MANIOBRAS EXPERIMENTALES El sistema nervioso puede ser considerado como un sistema de innumerables arcos reflejos. monitor de reacción. los II. 10. El término condicionamiento denota los cambios a largo plazo en la respuesta refleja producidos por la capacidad de los reflejos polisinápticos para adaptarse en un proceso de aprendizaje. El estiramiento breve de un músculo golpeando ligeramente su tendón con un martillo para reflejos da como resultado la contracción del músculo después de una latencia corta. III. Cada organismo tiene la habilidad de aprender reacciones reflejas que le ayudan a responder mejor y con menos esfuerzo a las situaciones constantemente cambiantes en el ambiente. ya que los arcos reflejos pasan a través de diferentes segmentos espinales y la alteración de determinados reflejos pueden evidenciar el nivel de un proceso patológico en la médula espinal o de estructuras supraespinales. Explicar cómo se pueden efectuar las respuestas reflejas. Esquematizar un esquema del reflejo rotuliano o patelar. el potencial de placa) y la activación del efector por la excitación de la membrana (por ejemplo. hilo delgado. ya que sólo comprende dos neuronas. un sujeto y un observador. tarjeta de 11x7 cm. En la mayoría de los casos está determinado principalmente por el tiempo de conducción en las vías aferente y eferente y en las partes centrales del arco reflejo. 8. Describir y explicar el reflejo pupilar. 7. cronómetro. A éste se suman los tiempos necesarios para la transformación de un estímulo en un impulso conducido en el receptor. gasa estéril. pedazo de madera de 20 cm. . Trate de inhibir este reflejo haciendo que el sujeto comprima su labio superior. sustancia gris de la médula. Marque las siguientes estructuras: receptor. Este es un reflejo consensual. efector. Reflejo de acomodación. El experimentador sostiene el monitor vertical contra la pared con el dedo pulgar puesto en el extremo superior marcado con el máximo de la escala. Dibuje un esquema de la vía seguida por los impulsos nerviosos en este reflejo. Observe las pupilas del sujeto cuando cambia la vista del libro que está leyendo para mirar un objeto lejano. sinapsis. Reflejo cilioespinal. El experimentador deberá colocar el monitor de tal manera que el extremo inferior del monitor esté aproxima- . Repita el procedimiento anterior. El examen de los reflejos se hará en los voluntarios. Las medidas de distancia de avance de la regla nos servirán como unidades arbitrarias de tiempo.166 PRÁCTICAS DE LABORATORIO Reflejos pupilares 1. pero haciendo que el sujeto entrelace sus dedos y tire de ellos vigorosamente mientras se le golpea en la rodilla. El observador localiza entonces la proyección de la rotula y del tendón rotuliano y golpea brevemente el tendón rotuliano con el filo de la mano o con el martillo para reflejos tendinosos. ¿Qué efecto tiene esto sobre el reflejo? Explique porqué el apretar los puños durante una pelea o una competencia atlética puede afectar las respuestas reflejas. en el que un lado del cuerpo responde a un estímulo aplicado al otro lado. El sujeto debe sentarse en el borde de una mesa de manera que sus piernas cuelguen libremente. Varios reflejos Los reflejos en el ser humano ofrecen la oportunidad de observar estos fenómenos en el individuo integro o normal. justo debajo de la nariz. 2. Reflejo uvular Pida al sujeto que abra ampliamente la boca. Haga que el sujeto cierre los ojos durante noventa segundos. Medición del tiempo de reacción Usaremos como monitor del tiempo de reacción una regla de 40 cm y elaboraremos una hoja de datos. anote la respuesta normal que debe aparecer y compare sus resultados. que es una elevación involuntaria de la pierna y el pie. 3. nervio raquídeo. fungiendo alternadamente como sujeto y como observador. proyecte un haz de luz brillante sobre el ojo izquierdo en cuanto abra los ojos y note el efecto en la pupila derecha. neurona aferente. Describa los resultados con sus propias palabras y explíquelo brevemente. Asegúrese de que no lo inhale. durante el trabajo práctico y en su casa. Describa los resultados. Sostenga una tarjeta de 11 x 7 cm a lo largo del puente de la nariz. 3. sustancia blanca de la médula. raíz raquídea dorsal. Toque ligeramente la uvula con la gasa estéril o un abatelenguas. El grupo se divide en pares: una persona actúa como experimentador y la otra como sujeto. Describa lo que ocurre. Reforzamiento motor del reflejo del tendón rotuliano. 2. Note la reacción de sus pupilas. Cuando se hace adecuadamente. Pinche suavemente la piel de la nuca del sujeto. ¿Qué reacción ocurre? ¿Cómo actúa este reflejo en la deglución? Reflejo de estornudo Estimule la mucosa nasal con un hilo delgado. se producirá el llamado reflejo del tendón rotuliano. neurona eferente. Las acciones reflejas de la pupila son ejemplos excelentes de integración en el sistema nervioso. Reflejo del tendón rotuliano 1. En el cuadro siguiente se consigna el nombre de varios reflejos y el modo de producirlos. Reflejo consensual. Esquematice tres de los reflejos estudiados alumnos se agruparán en parejas. El sujeto sentado cruza las piernas. descubra los ojos. Cubra el ojo derecho y observe la pupila izquierda. Deslice un instrumento romo por la cara interna del muslo. Sostenga el antebrazo del sujeto en pronación y golpée el tendón del supinador largo. Cutáneo pupilar Pellizque la mejilla. Descubra el ojo derecho. Epigástrico Plantar Rotuliano Aquiliano Bicipital Supinador Cremasteriano Fotomotor Consensual Golpée ligeramente el abdomen o bien deslice suavemente los dedos sobre el abdomen. Deslice un instrumento romo haciendo presión en la planta del pie. Golpee el tendón del cuadríceps. cerca del periné con el sujeto sentado.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Cubra los ojos abiertos del sujeto con las manos y colóquelo frente a una fuente de luz. La persona que explora sostiene con el brazo izquierdo el brazo derecho del sujeto en estudio. colocando la derecha encima. golpée sobre el pulgar. . RESPUESTA VÍAS Palatino Toque el paladar con un abatelenguas. flexionándolo ligeramente y colocando el pulgar izquierdo del observador sobre el tendón del bíceps. se le golpea el tendón de Aquiles con el martillo para reflejos. Faríngeo Toque la pared de la faringe con un abatelenguas. 2009-2010) 167 NOMBRE Conjuntival o corneal MODO DE PROVOCARLO Toque la córnea con una gasa estéril. El sujeto flexiona la pierna izquierda sobre una silla. Si despejamos. en el punto medio del lugar en dónde el pulgar del sujeto detuvo la escala. 5. . La fórmula que podemos utilizar es la siguiente: X= (1/2)gt2 En dónde x es la distancia medida en centímetros. 19. queda: t=√ (2/980)x El sujeto deberá recibir cinco ensayos de práctica. 14. 16. antes de que sean ejecutados los ensayos experimentales. 4. 9. Su valor aproximado es de 980 cm/ seg2. 12. 3. 6.168 PRÁCTICAS DE LABORATORIO La aceleración de un cuerpo en caída libre se denomina aceleración debida a la fuerza de gravedad y se identifica con el símbolo "g". 8. Enseguida el experimentador dirá: "listo" y de 1 a 5 segundos después el experimentador dejará caer el monitor sin dar ninguna indicación al sujeto acerca de cuándo lo va a soltar. uno a continuación del otro. 8. 7. 11. 19. 17. 16. 2. 18.. 6. 5. HOJA DE DATOS (Tiempo de reacción) Sujeto A _______________________________ Experimentador _________________________ Ensayo _______________________________ _____________________________________ Sujeto B _____________________________ Experimentador _______________________ Ensayo ______________________________ ____________________________________ 1. g= 980 cm/seg2 y t es el tiempo que deseamos saber. El sujeto deberá parar la caída del monitor tan rápidamente como le sea posible presionando el pulgar sobre el monitor. 18. 13. 15. 14. 3. 1. 7. 4. 10. 2. El número de centímetros se puede usar como unidad arbitraria del tiempo de reacción o bien calcular el tiempo. El tiempo de reacción del sujeto se calcula midiendo los centímetros directamente del monitor. 17. Después de los ensayos el experimentador y el sujeto cambiarán de papel de tal manera que cada persona damente al nivel de los ojos del sujeto. 9. Se harán 20 ensayos seguidos y los resultados se anotarán en la hoja de datos. 11. 15. 13. 10. 20. 12. 20. El sujeto deberá estar parado frente al monitor con su mano apoyada en la pared y su pulgar separado aproximadamente 3 cm de la marca de 0 del monitor. Pida al sujeto que descanse el antebrazo en el borde de una mesa. luego dejará caer la tarjeta entre los dos dedos del sujeto. después golpée el recipiente. Efecto de la discriminación sobre el tiempo de reacción Se pide a un sujeto que distribuya todas las cartas de una baraja repartiéndolas tan rápidamente como pueda. Anote el número de veces que puede obtenerse el reflejo condicionado antes de su extinción. 1978. se pide al mismo sujeto que separe los cuatro palos de la baraja en pilas. (Basta con una lámpara de mano. Preguntas sobre los reflejos en el ser humano • • • • • • • • • ¿En qué consiste un arco reflejo? ¿Cómo se puede afectar las respuestas reflejas? ¿Cómo se explican los reflejos pupilares? ¿Qué es el tiempo de reacción de un reflejo? ¿Cómo se modifica el tiempo de reacción de un reflejo? ¿Qué es un reflejo condicionado? ¿Qué es la extinción de un reflejo condicionado? ¿Estamos conscientes de una respuesta refleja? ¿Cómo influye la discriminación en el tiempo de reacción de un reflejo? • ¿Cuántas sinapsis intervienen en el reflejo de estiramiento? Lecturas recomendadas 1. restando además el que tomó la manipulación anterior. Después de barajar cuidadosamente. Se compara el tiempo transcurrido ahora con los dos anteriores. 11a. después de pocos intentos sin aplicar luz. Fisiología médica. 604616. por cinco veces. México: McGraw-Hill Interamericana Editores. Se toma de nuevo el tiempo. Ganong W. Tiempo de reacción y discriminación 1. la pupila responderá al sonido de la percusión. Este reflejo condicionado se pierde rápidamente. Repita esta asociación diez veces a intervalos de 30 seg. Se pide al mismo sujeto que repita la maniobra. Guyton AC. la pupila deja de responder al sonido. 7a. 1.) Las pupilas del sujeto responden a la luz. Haga que un estudiante golpee con un pedazo de madera sobre un recipiente metálico y al mismo tiempo aplique un destello luminoso al sujeto.F. Tiempo de reacción Puede definirse como el intervalo entre la aplicación de un estímulo y el comienzo de las respuestas. Se mide el tiempo transcurrido. 98-106. 1998. . p. puede producirse la res- puesta aplicando sólo el primer estímulo. El tiempo resultante mide el efecto de las acciones neurales que participan en la discriminación. 2009-2010) 169 haga la prueba. pero ahora separando las cartas rojas de las negras. ¿Hay algún indicio de adiestramiento? Reflejo condicionado En un reflejo condicionado la respuesta puede no estar directamente asociada con el estímulo específico sino que se obtiene aplicando un segundo estímulo que sí produce la respuesta asociado al primero. ¿Qué efecto pueden tener las sinapsis en este fenómeno? 2. 224-232. Si el condicionamiento se ha establecido. pero no aplique la luz. repita el procedimiento otras diez veces y pruebe nuevamente el sonido solo. ed. tomando siempre el tiempo. p. El observador sostendrá una tarjeta de 11 x 7 cm con su borde inferior al nivel del margen superior del pulgar y del índice. Cuando se establece el condicionamiento. ¿Por qué es tan difícil atrapar la tarjeta? Explíquelo en términos de la velocidad de conducción de impulsos en los nervios. De no ser así. quien tratará de atraparla entre ellos sin mover la mano. ed. Tratado de fisiología médica. Comience el experimento percutiendo el recipiente y a la vez aplicando la luz. ¿En qué consiste la respuesta? 2. México: Editorial El Manual Moderno. 2. El pulgar y el índice deben estar separados por 3 a 5 cm. con la mano saliendo del borde.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . ¿Por qué debería haber diferencia? Haga que el sujeto repita la separación de los naipes en cuatro grupos. Diferenciar el fenómeno de transmisión aérea del fenómeno de transmisión ósea. se puede afirmar que los diferentes sentidos proporcionan al organismo el medio de obtener una representación espacial y temporal cuantitativa de las propiedades de su ambiente interno y externo. En los organismos existen estructuras que se activan específicamente ante dichas modificaciones. gustativos y olfatorios mediante la respuesta e informe que un sujeto experimental presente. auditivos. Se denomina estímulo a cualquier factor que active a un receptor. Identificar algunas características de las variables físicas o químicas y algunas circunstancias que determinan la activación de los órganos sensoriales táctiles. 4. Una impresión sensorial o sensación es el primer signo subjetivo de que un receptor ha sido estimulado. INTRODUCCIÓN Los organismos están expuestos a constantes modificaciones fisicas y quimicas del medio ambiente y de su medio interno. Diferenciar el fenómeno de acomodación cercana del fenómeno de acomodación lejana.170 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 18 EXPLORACIÓN DE LOS ÓRGANOS DE LOS SENTIDOS Señalemos algunos conocimientos previos mínimos e indispensables para llevar a cabo la práctica: mecanismos básicos de los sistemas sensoriales. 3. gustativos y olfatorios mediante la respuesta e informe que un sujeto experimental presente. Así pues. visuales. . OBJETIVOS 1. El propósito de la presente práctica es introducir al alumno en el estudio de la fisiología de los órganos de los sentidos. Determinar el umbral gustativo para un sabor. II. 5. la práctica clínica requiere que el médico esté familiarizado con las particularidades de funcionamiento de los diversos sistemas sensoriales. Una sensación se convierte en percepción cuando la sensación se integra e interpreta con base en la experiencia y tiene una significancia para el organismo. Diferenciar entre unidad sensorial y campo sensorial. Describir la distribución de los receptores gustativos. 2. I. 8. auditivos. los receptores y las vias aferentes al sistema nervioso central de las modalidades sensoriales. visuales. así como de la interpretación de la respuesta refleja ante la activación de los órganos de los sentidos. A estas estructuras se les denomina receptores sensoriales. En último término. 6. Describir las circunstancias que determinan el fenómeno de adaptación olfatoria. Muchos de los elementos necesarios para establecer un diagnóstico durante la práctica clínica provienen de las sensaciones que refiere el paciente. Determinar el campo visual. activación de los órganos sensoriales y su exploración. Identificar algunas características de la respuesta de los órganos sensoriales táctiles. Reconocer la localización de los receptores táctiles y térmicos. Describir el fenómeno del nistagmo y las circunstancias que lo generan. Identificar las circunstancias que determinan la activación de los receptores táctiles. 7. 1:800. Toallas de papel. Represente en el papel milimétrico la localización del vello de la región explorada señalando tanto su raíz como su orientación. Cristales de sacarosa. En el papel milimétrico trace un cuadrado de 10 cm de lado y subdivídalo en cuadros de 1 cm de lado. Cerillos. Palillos. Varillas de vidrio de 10 cm de longitud con punta fina y roma. Estesiómetro. Vidrio azul. Vende los ojos a su compañero. En el dorso de la mano de uno de sus compañeros trace con un bolígrafo un cuadrado de 1 cm de lado subdivídalo en cuadros de 1 mm de lado. Soluciones de sacarosa al 1:1000. MANIOBRAS EXPERIMENTALES I. en alguno de los cuadros de 1 mm de lado dibujado en la mano de su compañero y pídale que diga "si" cuando sienta el contacto. SENSIBILIDAD TÁCTIL SUPERFICIAL a) Sensibilidad táctil superficial de la piel del dorso de la mano con vello. MATERIAL Y MÉTODO • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • • Regla milimétrica. 2 tarjetas de cartulina de 8 x 12 cm. la palma de la mano. Hilo. Compás estesiométrico. Colodión. Hilo de seda. Plastilina. Aceite de clavo o alcohol alcanforado. 1:600. Alfiler. y al efectuar la prueba no utiliza la aguja sino el estesilómetro. IV. Vela. Sacarosa a 5 % (frasco etiquetado "sabor dulce") . Mediante los procedimientos señalados en a) y b). con diferente clave. Ácido cítrico a 2 % (frasco etiquetado "sabor ácido"). Esencia de vainilla. la frente. registre en el papel milimétrico las zonas donde obtuvo la respuesta "si". Bolígrafo de punta fina. Gasa estéril. Repita la exploración de la misma zona y anote en el papel. ¿Cree que se modificarán los registros? ¿Por qué? . Este cuadrado representa en escala 10:1 el cuadrado dibujado en la mano. Diapasón. con ayuda de una lupa. Bisulfato de quinina a 1 % (frasco etiquetado "sabor amargo"). Repita la operación hasta que todos los cuadritos hayan sido explorados. Termómetro. Aplique suavemente la cerda del estesiómetro. Mechero de Bunsen. ¿Por qué vendó los ojos a su compañero? ¿Qué conclusiones obtiene de estos experimentos? Si usted le dijera a su compañero que va a repetir las exploraciones. Lupa. c) Sensibilidad táctil en otras zonas del cuerpo. los resultados obtenidos. pero que ahora en lugar de usar el estesilómetro utilizará una aguja que clavará en la piel. Exploración de la sensibilidad cutánea 1. 1:200. teniendo cuidado de no ocasionar una herida o irritación. Navaja de rasurar. 1:400. Pinzas finas. b) Sensibilidad táctil superficial de la piel del dorso de la mano sin vello. Tubo de hule. Con un punto. Papel milimétrico.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . Vasos de precipitado de 50 ml. efectúe exploraciones semejantes y haga los registros correspondientes para el cuello. 2009-2010) 171 III. Torundas de algodón. la espalda y otras zonas que a usted le interesen. Cloruro de sodio a 2 % (frasco etiquetado "sabor salado"). Rasure el vello de la zona explorada anteriormente con la ayuda de la lupa. Lápiz. Cinta métrica. Hilo metálico. la nuca y la espalda. ¿Reporta el sujeto una doble sensación? El intervalo entre la doble sensación provocada por el estímulo a la mano. ¿Qué efecto sobre la eficiencia de la maniobra tiene la repetición o el cambio de posición de los brazos? . Mida la separación que haya de los dedos estirando los brazos sobre su cabeza. aplique el hilo metálico calentado a 65ºC a algunas zonas de la piel durante 3 segundos. ¿Qué sensaciones reporta el sujeto experimental? 2. Aguzando la vista. SENSIBILIDAD c) Sobre un punto cutáneo adyacente al mismo vello. con una gota de colodión o mediante un nudo. no corrija la posición y pídale que se quede quieto. la frente. SENSACIÓN PUNZANTE a) Con unas pinzas finas pellizque rápidamente dos veces la base ungueal de algún dedo de la mano ocasionando dolor con cada pellizco. ¿Es semejante al provocado por el estimulo al pie? ¿Cómo explica esto? III. ¿Corresponde la respuesta de su compañero al número de estímulos aplicados? ¿Cómo definiría la unidad sensorial? ¿Cómo definiría campo sensorial? II. Posteriormente que haga la misma maniobra atrás de su espalda. Explore cada una de las zonas del experimento anterior con alguna de las varillas que sacó del agua y secó rápidamente con una toalla de papel toque suavemente la piel con la varilla durante un segundo y sin ejercer presión. VELOCIDAD ALGÓGENAS DE TRANSMISIÓN DE LAS SENSACIONES Vende los ojos de uno de sus compañeros. aplique inmediatamente el estesiómetro. ¿Encontró alguna zona donde al aplicar una varilla fría el sujeto reportó la sensación de caliente o viceversa? ¿Qué diferencia en el registro de una zona dada pudiera esperar si utiliza varillas de punta roma sumamente fina en comparación al registro obtenido utilizando varillas de puntas de 1 mm cuadrado? 3. Alterne al azar la aplicación de una o de las dos puntas del compás. Aplique suavemente el compás a la piel del dorso y de la palma de la mano. según sea la sensación desencadenada al aplicar el estesiómetro. Sensibilidad dolorosa de la piel 1. LOCALIZACIÓN EN EL ESPACIO a) En un sujeto con los ojos vendados. fije el hilo de seda a un vello.172 PRÁCTICAS DE LABORATORIO 2. DISCRIMINACIÓN DE DOS PUNTOS a) Sin ejercer presión. Sensaciones propioceptivas 1. ¿Qué sensación reportó el sujeto experimental? 3. c) Con unas pinzas finas sujete un delgado pliegue cutáneo. En otro vaso coloque agua a 15ºC y sumerja las otras cinco varillas. rápidamente un movimiento de rotación al vello. b) Haga lo mismo en la base ungueal de algún dedo del pie. SENSACIÓN DE QUEMADURA TÉRMICA En un vaso de precipitado coloque agua a 45ºC y sumerja cinco varillas de vidrio. Repita cinco veces las pruebas en estos últimos casos. b) Sobre una zona cutánea adyacente al vello manipulado anteriormente. Pídale a un sujeto con los ojos vendados y con sus brazos extendidos que de un solo intento junte una con otra las yemas de sus dedos índices a la altura de su plexo solar. aplique y retire el extremo de un hilo metálico calentado a 65ºC. Pídale a su compañero que diga "frío" o "caliente" según lo sienta al aplicársele las varillas. Adviértale que en caso de que no lo logre. Pídale a su compañero que diga "uno" o "dos". separe un milímetro las dos puntas del compás. Imprima. Determine la mínima separación de las puntas de compás con la cual es posible provocar la sensación de dos estímulos simultáneos. b) Sobre el pelo fijado al hilo de seda ejerza una tracción persistente durante 3 segundos. apriete suavemente durante 3 segundos. sosteniendo la tarjeta con su brazo extendido. observe el alfiler a través de los dos orificios simultáneamente. b) La mancha amarilla. pero ahora se tapa el orificio del lado izquierdo. 3. LAS IMÁGENES DE PURKINJE Pídale a un sujeto que gire hacia su derecha. y 20 vueltas. a 6 cm a la izqulerda de la cruz dibuje un círculo negro de 2 cm de diámetro. Repita la prueba. Pídale al sujeto que. EXPERIMENTO DE SCHEINER a) El punto ciego. otro compañero recorre con la punta de su dedo índice cada uno de los diámetros desde la periferia del círculo hacia el centro. alineadas horizontalmente y separadas entre si la misma distancia que tiene el diámetro pupilar. coloque verticalmente un lápiz de tal forma que queden alineados la tarjeta. 4. Para determinar el campo visual. Observe los ojos del sujeto. otro compañero tapará cuidadosamente el orificio del lado derecho. Haga un esquema de un ojo y del dispositivo usado con el cual se expliquen los fenómenos de percepción reportados por el sujeto. invite al sujeto a que enfoque la mirada en el cuerpo de la vela sin mirar la llama. ¿Cuál es el resultado? Repita todos los procedimientos anteriores. Siga el mismo procedimiento para el otro ojo. Represente estas imágenes en un esquema del ojo. Explique la percepción de una mancha en el campo visual. LA ACOMODACIÓN. el alfiler y el lápiz. Pídale al sujeto que indique el momento en que perciba la punta del dedo y marque el lugar en el pizarrón. Mida el diámetro pupilar del sujeto en experimentación. Describa lo que observe en los ojos del sujeto. para volver a hacerlo después. Compare sus dos esquemas y explique las diferencias encontradas. estando de pie. Repita la maniobra después de tres minutos de descanso. PERIMETRÍA VISUAL Seleccione un ambiente bien iluminado para este experimento. pero pídale al sujeto que vea nítidamente el lápiz y que reporte la percepción de la imagen del alfiler. Pídale que sin enmendar el enfoque diga cómo se ve el lápiz. acerque la tarjeta lentamente. Coloque la vela encendida a 25 cm de los ojos del sujeto experimental e invítelo a observar el techo del laboratorio. . LA ACOMODACIÓN. mientras el izquierdo lo mantiene cerrado. Repita el experimento varias veces hasta que el sujeto esté completamente seguro de su percepción. Dibuje en el pizarrón un circulo de 60 cm de diámetro y divídalo con diámetros que formen ángulos entre sí de 30º. 2009-2010) 173 2. SENSIBILIDAD VESTIBULAR 2. ¿A qué porción de la retina corresponde el punto ciego? Haga un esquema del ojo y de la figura usada con el que se explique el fenómeno. El centro del círculo se situará a la altura de los ojos del sujeto en exploración. Observe las imágenes formadas en el globo ocular y haga un esquema de ellas. Pídale que diga cuando ya vea nítidamente el alfiler. 15.FISIOLOGÍA ( SEGUNDO AÑO . pero pidiéndole que gire 10. En una tarjeta blanca de 8 x 12 cm dibuje una cruz con brazos de 1 cm de longitud. Al terminar la última vuelta procure que su cara quede frente a usted. Repita los procedimientos con vueltas a la izquierda. Observe verticalmente la tarjeta y divídala mentalmente en tres zonas con líneas horizontales. Al mirar la cruz con el ojo derecho. Colocado a 20 cm del pizarrón debe fijar la mirada de uno de sus ojos en el centro del esquema mientras que el otro ojo permanece cerrado. con ayuda de la plastilina. Sensibilidad visual Seleccione un ambiente con luz sumamente tenue para este experimento. Con ayuda de la plastilina coloque verticalmente la tarjeta sobre el borde de la mesa. En cada caso observe los ojos del sujeto. EL PUNTO CIEGO Y LA MANCHA AMARILLA 1. En medio de la zona superior haga dos perforaciones con un alfiler. IV. Observe cuidadosamente las tres imágenes de la vela que se forman en el globo ocular del sujeto. a razón de una vuelta por segundo aproximadamente hasta completar cinco vueltas. Luego. Repita la prueba y cuando el sujeto reporte otra vez los mismos resultados anteriores. con el ojo derecho. Pídale al sujeto que reporte lo que ve. Cierre ambos ojos por un momento y después mire con el derecho a través del vidrio azul. manteniendo cerrado el ojo izquierdo. Hay una distancia (anótela) en la que notará que ya no percibe el circulo negro. A 20 cm de la tarjeta encaje un alfiler sobre la mesa y a un metro. Springer-Verlag. Seleccione a un sujeto fumador y repita el procedimiento anterior. Sobre la porción apical de la lengua coloque un cristal de sacarosa. Adviértale que dispone sólo de un segundo para efectuar una inhalación profunda y que inmediatamente le va a ofrecer otro y otro sucesivamente. 1981. Repita la maniobra. Con el mismo procedimiento explore toda la superficie superior de la lengua. Lecturas recomendadas Schmidt RF. Mida el tiempo entre la inhalación y la señal. Pídale que indique el momento en que deje de percibir el sonido.174 PRÁCTICAS DE LABORATORIO VII. alcohol alcanforado o alguna otra sustancia volátil. Registre los valores reportados por el sujeto. Fundamentals of sensory physiology. Repita la misma maniobra pero con soluciones de sacarosa al 1:800. VI. Compare entre sí los diferentes sabores. b) Vende los ojos del sujeto. UMBRAL GUSTATIVO Elaboración del informe Además de reportar lo observado y de comentar los fenómenos para cada una de las maniobras realizadas. el cual no debe estar enterado de la naturaleza y sucesión de las pruebas que se le van a hacer. Sensibilidad gustativa 1. La prueba debe durar menos de cinco minutos. pero ahora acerque el diapasón al oído izquierdo. 1:400 y 1:200. . sobre la piel cabelluda en el punto bregma. empuje cuidadosamente el extremo nasal del tubo hasta que penetre en la porción más alta de la fosa nasal. En un esquema de la superficie superior de la lengua registre el lugar estimulado y el tiempo transcurrido entre la aplicación del cristal y la percepción del sabor. Sensibilidad olfatoria a) Introduzca una pequeña porción del tubo de hule a través del orificio nasal del sujeto experimental. 1:600. Sensibilidad auditiva TRANSMISIÓN AÉREA Y TRANSMISIÓN ÓSEA Golpee el diapasón en su codo y acérquelo al oído derecho del sujeto experimental. DISTRIBUCIÓN TOPOGRÁFICA DE LOS RECEPTORES GUSTATIVOS a) Con una torunda de algodón o de gasa esterilizada seque la lengua del sujeto experimental. Invite al sujeto a que inhale suavemente y que con una señal de la mano indique el momento en que perciba el olor. Saque la lengua de su sujeto experimental y humedézcale toda la superficie con una solución de sacarosa al 1:1000. V. b) Con el mismo procedimiento explore la lengua aplicando ahora una torunda de algodón montada en un palillo y humedecida en una de las soluciones de sabor. 2. Pídale al sujeto que indique si vuelve a percibir el sonido y que indique también en que oído lo percibe con más intensidad. Realmente usted le va a ofrecer el mismo frasco. Mida el tiempo entre la inhalación y la señal. indique su posible aplicación y utilidad en la exploración y diagnóstico de un paciente. Continúe la exploración con los otros sabores. Pídale que en una escala de 5 califique la intensidad del olor de diversos frascos que le va a ofrecer y que contienen la misma sustancia (vainilla) a diversas concentraciones. Pida al sujeto que se enjuague la boca con agua. Compare estos resultados con los de un sujeto no fumador. Use códigos diferentes en sus registros. Introduzca ahora el otro extremo del tubo en un frasco que contenga aceite de clavo. Pídale al sujeto que con una señal de la mano indique el momento en que perciba algún sabor. Compare lo reportado por el sujeto en las diferentes pruebas. Invite al sujeto a que inhale suavemente y a que vuelva a señalar el momento en que perciba el olor. Compare los lapsos transcurridos entre inhalación y señal registrados en los dos ensayos. Pídale al sujeto que exprese su percepción. cuidando que el tubo no quede en contacto con la sustancia. coloque la base del diapasón en la cabeza del sujeto. Cuando así lo haga. Pídale al sujeto que indique en cuál de los dos ensayos percibió más intensamente el olor. Después de esta prueba. especule sobre los posibles resultados que ante las maniobras que usted acaba de realizar pudieran obtenerse ante ciertos padecimientos o lesiones neurológicas.