CONSIDERACIONES PREVIAS DE UNA DROGA VEGETAL PARA LA OBTENCIÓN DE UN EXTRACTO DE CALIDAD. Dr. Q.F. Segundo G. Ruiz Reyes Universidad Nacional de Trujillo FARMACOERGASIA Proviene de ERGAZOMA: arte del cultivo y preparación de la recolección de las plantas medicinales. Jardín Botánico Rosa Elena De Los Ríos Martínez-Facultad de Farmacia y Bioquímica-UNT . FACTORES QUE INFLUYEN EN LA FITOCOMPOSICION DE LAS PLANTAS Variación ontogénica de algunos metabolitos EDAD ACEITES ESENCIALES Menta piperita (menta) Pulegona Tierna Mentona y Mentol Madura Menta spicata (hierba buena) Carvona Tierna Dihidrocarvona Madura . EVOLUCIÓN DEL CONTENIDO DE SERPENTINA EN RAÍCES DE Catharanthus roseus . Físicas del suelo •C.FACTORES A CONSIDERAR ANTES DE CULTIVAR FACTORES CLIMÁTICOS Y ATMOSFÉRICOS FACTORES EDÁFICOS •Temperatura •Humedad (ambiental y lluvias) •Radiación solar •Altitud •C. Químicas del suelo . .Laccopetalun giganteun (pacra pacra) exclusividad de 3000-4500 msnm. Cactus de La Provincia de San Miguel-Cajamarca 2665 msnm. . Esta comprobado que este factor influye notablemente en la biosíntesis de principios activos. . La luz UV puede inducir un incremento de productos POLIFENOLES como mecanismo de defensa. K ( sauco) crece de los 2800-3900 msnm .Sambucus peruviana H.B. a la composición química de las plantas medicinales. por tanto.CARACTERÍSTICAS QUÍMICAS DEL SUELO 1.. sino también puede ser un factor que limite su crecimiento.pH El pH del suelo puede afectar no sólo al desarrollo y. . FACTORES EDÁFICOS TIPOS DE SUELOS EXISTEN: • • • • • • • ARENOSOS ARCILLOSOS LIMOSOS PANTANOSO MAGROSOS GREDOSOS SALINOS . Laccopetalun giganteun (pacra pacra) planta silvestre y endémica de la región Ancash.CULTIVO: Plantas Silvestres y Cultivadas. . que necesita planes de conservación urgente. . de la Provincia de San MiguelCajamarca.Plantas silvestres. Cultivo en parcelas Cultivo in vitro . ) .RECOLECCION DE PLANTAS MEDICINALES Es el acto de tomar los materiales farmacéuticos de las plantas medicinales. (Miranda M. dependiendo la misma de la parte del material biológico a utilizar. . bulbo.Recomendaciones para la recolección de RAÍZ. La raíz. después que la parte aérea se ha secado. En esta etapa los órganos subterráneos. son mas ricos en sustancias activas o están en mayor concentración. RIZOMAS Y BULBOS. rizoma o tubérculo deben extraerse durante el período de reposo vegetativo de la planta. .Panax ginseng La raíz presenta la mayor cantidad de principio activo a los 30 años si es silvestre y a los 4-5 años si es cultivada. nunca horizontal.Recomendaciones para la recolección de LA CORTEZA DEL TALLO La forma de los cortes ( de extracción) deben hacerse en forma vertical. Sangre de grado y sauce. para no alterar la circulación de la savia y asegurar la vida del árbol. Árbol de la Quina . Se “cosecha” de los árboles que han alcanzado su madurez total. Deben emplearse herramientas cortantes limpias y afiladas. Deben recolectarse al amanecer (antes de que salga el sol). Deben descartarse las hojas amarillentas o manchadas (acción de parásitos u hongos).Recomendaciones para la recolección de HOJAS Deben recolectarse antes de la floración ó cuando ésta. recién se ha iniciado. . En el secado artesanal. evitar el sol directo. antes de la fructificación para aprovechar la mayor cantidad de pétalos. .Recomendaciones para la recolección de FLORES Las flores deben recolectase en su estado juvenil (lozanas y vistosas). Se usan frescas o luego de secarlas. Se recolectan preferentemente en forma manual. Deben arrancarse de la planta. se recolectan antes de la completa madurez del pericarpio. Los frutos secos (dehiscentes) se recogen cuando el fruto está completamente maduro.Recomendaciones para la recolección de FRUTOS Y SEMILLAS Los frutos se recolectan en sus respectiva época de fructificación. Las semillas de los frutos carnosos (indehiscentes). . IDENTIFICACION TAXONOMICA . . Segunda consideración: Una vez determinado el numero de sacos o paquetes se TOMAN 3 MUESTRAS. . (superior-centro-inferior). FINALIDAD: MAYOR HOMGENEIDAD.CONTROLES DE CALIDAD DE LA DROGA VEGETAL: SELECCIÓN DE LAS MUESTRAS: Primera consideración: 5 O MENOS SACOS: TODOS 6-50 SACOS: AL AZAR 5 DE ELLOS MAYOR DE 50 SACOS: 10% DE ELLOS AL AZAR. ya que en caso de adulteraciones con otras drogas de características similares suelen llegarse a resultados erróneos y es necesario la aplicación de los métodos microscópicos y físico-químicos para poder llegar a resultados concluyentes. está basada en la forma.EXAMEN VISUAL E INSPECCIÓN MICROSCÓPICA La inspección visual (Características sensoriales y macroscópicas). texturas y fracturas de la droga. . color. tamaño. características superficiales. Este no puede considerarse como un ensayo definitorio. PARÁMETROS DE CALIDAD • CARACTERIZACIÓN MACROMORFOLÓGICA Color Textura Olor Superficie Condición Peculiaridades Dimensiones Forma . 5 cm de largo .5 cm de ancho 16.Estudio macroformológico externo de las hojas de Sambucus peruviana H.K. Limbo OblongoAovadas FORMA Borde Acerrado Ápice Acuminada Base Redonda Peciolo Corto Inervaci ón Imparipinnadas COLOR Verde SUPERFICIE Lustrosa OLOR Sui Generis CONDICIONES Fresca MEDICIONES PROMEDIO DE LA HOJA 6.B. .• CARACTERIZACIÓN MICROMORFOLÓGICA Observación de estructuras y elementos histológicos de la hoja fresca A través de Cortes superficiales Cortes transversale s La evaluación microscópica de las drogas es indispensable para su identificación pudiendo emplearse reactivos químicos para lograr una mayor información y visualización de los tejidos. • MUESTRA: Agave filifera (cabuya azul. • AUMENTO: 40X • OBSERVACION: tejido de conducción y células epidérmicas.) • CORTE: Longitudinal. . Compuestos fenólicos en la nervadura central de la hoja de Mangifera indica «mango». . después de teñirse con Vainillina clorhídrica.Presencia de taninos de color rojo. en los epidermis de hojas Myrcianthes discolor. . 2. Lavado y desinfección. Liofilización. Almacenamiento. Trituración o Molienda.ESTABILIZACION DE LA DROGA VEGETAL: 1. 40ºC 3. Bajo sombra. Secado Temperatura Ambiente. . 4. Al sol. 5. Tamización. Estufa. SECADO CONTENIDO DE AGUA EN DROGAS FRESCAS: • •HOJAS 20 .75% •CORTEZAS 40 .65% •TALLOS 30 – 70% • RAÍCES 25 – 80% • FLORES 15 – 80% . . MOLIENDA Y TAMIZADO TAMAÑO DE PARTICULA . Molienda y Tamización Obtener tamaño de partícula adecuada . mezclas de otras partes de la planta o de otras plantas.DETERMINACIÓN DE MATERIAS EXTRAÑAS Se entiende por materias extrañas. en especial animal o microbiano. piedra y otras sustancias minerales. estado y grado de pulverización. La presencia de cualquier otro contaminante. arena. . partes de la droga que no corresponden a las exigencias que señala la monografía en cuanto a color. o el incumplimiento de los parámetros establecidos para la droga. hace que la misma sea declarada: NO APTA PARA EL CONSUMO. tamaño. polvo. DETERMINACIÓN DE MICROORGANISMOS a) Contaminación de “drogas crudas” que se emplearán en procesos posteriores (incluyendo descontaminación adicional por un proceso físico o químico): Los límites estan dados para las drogas no tratadas. por gramo máximo 104 Escherichia coli por gramo máximo 105 Tierra vegetal por gramo . recolectadas bajo condiciones higiénicas aceptables. por gramo se establece: máximo 107 bacterias aeróbicas por gramo máximo 103 Sacharomycetes por gramo máximo 102 Escherichia coli por gramo NO SALMONELLA . (infusiones y decocciones). o que se usarán en forma tópica.b) Drogas que serán pretratadas. c) drogas para uso interno. máximo 105 bacterias aeróbicas por gramo máximo 103 Sacharomycetes por gramo máximo 101 Escherichia coli por gramo máximo 103 otras enterobacterias por gramo NO SALMONELLA . y se determina por tres métodos diferentes: Cenizas totales. .DETERMINACIÓN DE CENIZAS Se entiende por cenizas. el residuo que queda después de la ignición de una droga. ácido-insolubles y solubles en agua. 2. Método Físico Químico: Determinación de Cenizas Totales Se pesará 0.5 g de droga pulveriada y tamizada. agregando etanol de 96°C. . Se carbonizará la muestra hasta que ya no haya presencia de humo. Se enfriará el crisol en una desecadora a temperatura ambiente y se pesará. .Posteriormente se incinerará en un horno mufla a temperatura de 700ºC a 750°C durante 2 horas. puede ser establecida mediante el estudio de secado de la droga. tallos y raíces. oscila entre un 8 .DETERMINACIÓN DE AGUA HUMEDAD RESIDUAL Los límites de agua establecidos en la Farmacopea para las drogas. corresponden los valores más altos a: cortezas. La humedad residual o límite para la cantidad de agua.14 %. . Si el solvente es anhidro. el agua puede ser absorbida por el solvente y el resultado sería falso. por lo que se recomienda saturar el solvente con agua. .Determinación de la humedad Método azeotrópico: Mediante el cual debe obtenerse de forma directa la cantidad de agua presente en la droga cuando ésta es destilada junto con un solvente inmiscible tal como tolueno o xileno. antes de usarlo. Pérdida por desecación: Determina el agua y las sustancias volátiles método plantea el calentamiento de la droga a 100 .105ºC ó en una desecadora sobre pentóxido de fósforo a presión atmosférica reducida a temperatura ambiente por un período de tiempo específico para cada droga. . Este método no es recomendable cuando la planta contiene aceites esenciales. Las propiedades amargas de una droga son determinadas por comparación del extracto acuoso de la droga a diferentes concentraciones con una solución diluida de hidrocloruro de quinina (0. estas sustancias pueden ser determinadas químicamente.DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE AMARGOR Muchas drogas empleadas como medicinales presentan un fuerte sabor amargo.0005 g/ml). . MARCHA FITOQUIMICA Serie de métodos para la detección preliminar de los diferentes constituyentes químicos, basados en la extracción de estos con solventes apropiados y en la aplicación de pruebas de coloración. Mayer. Wagner y Hager) •Flavonoides (Shinoda) •Leucoantocianidi nas •(Rosenheim) •Saponinas (Espuma) •Taninos .(3g + 20ml de Diclorometa no Reflujo 10 min en BM Enfriar y filtrar EXTRACTO DICLOROMETANI CO ENSAYOS •Esteroides (LiebermanBurchard •Quinonas (Borntrager) MUESTR A (3g + 20ml de etanol 70%) Reflujo 10 min en BM (3g +20ml de HCl 1%) Reflujo 10 min en BM (3g+ 20ml de Agua destilada ) Reflujo 10 min en BM Enfriar y filtrar Enfriar y filtrar Enfriar y filtrar EXTRACTO ETANOLICO EXTRACTO ACUOSO ACIDO EXTRACTO ACUOSO ENSAYOS ENSAYOS ENSAYOS •Esteroides (Lieberman-Burchard •Alcaloides (Dragendorff y Mayer) •Flavonoides (Shinoda) •Taninos (Gelatina) •Alcaloides (Dragendorff . PRUEBA DE LA GOTA LIEBERMAN BURCHARD Identificación ESTEROIDES Azul-azul verdoso GELATINA Identificación TANINOS precipita do blanco FeCl 3 Identificación HIDROXILOS FENÓLICOS azul o verde SHINODA Identificación FLAVONOIDES ESPUMA Identificación SAPONINAS BORTRANGER Identificación QUINONAS LIBRE roja ROSENHEIN Identificación LEUCOANTOCIANIDINAS roja DRAGENDORFF Identificación ALCALOIDES precipitad o rojo a naranja MAYER Identificación ALCALOIDES precipitad o blanco Rojiza Persisten cia de la espuma . . IDENTIFICACION CROMATOGRAFICA . Sistema A4. Cromatografía en capa fina de extractos etanólicos a diferentes concentraciones de flores de Cordia lutea. . Soporte Sílica Gel 60 F254.Quercetina patrón. .Cromatografía en Columna (CC) de sabia de Musa acuminata. FE: Sílica Gel granulada. FM: Metanol-Agua en diferentes proporciones. Republic of Macedonia. . Cyril and Methodius University. HPLC analysis of Flavonoides.Stefova M. Stafilov T and Kulevanova S. PREPARACION DE EXTRACTOS DE IMPORTANCIA TERAPEUTICA. ACUOSOS: INFUSO DECOCTO HIDROALCOHOLICOS: Extractos fluidos Tinturas . DECOCTO . INFUSO . INFUSO DECOCTO . EXTRACTO FLUIDO . [email protected] por su atención.com [email protected] .edu.