TRABALHOS PRÁTICOSNETXPLICA :: Ciências Naturais – Biologia e Geologia 20 Protocolos Experimentais http://forum.netxplica.com Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Índice Observação microscópica de células de cebola Observação microscópica de células do epitélio bocal Factores bióticos: Observação de micorrizas (fungo e raíz) Factores bióticos: Observação de líquenes (alga e fungo) Factores bióticos: Observação de bactérias em raízes de leguminosas Observação de seres vivos numa gota de água Amido – um polissacarídeo de glicose presente em órgãos vegetais Movimento da água através da membrana celular Observação microscópica de cloroplastos de elódea Quais os pigmentos que existem nos cloroplastos? Fotossíntese e produção de amido Estrutura das folhas e taxa de evaporação|transpiração Factores que afectam a transpiração Ascensão de água nas plantas 1 Ascensão de água nas plantas 2 Observação microscópica dos tecidos condutores Observação microscópica de estomas da epiderme de folha de Tradescantia sp. Transporte no xilema: hipótese da pressão radicular Extrair e visualizar moléculas de DNA de Quivi Observação microscópica de fases do ciclo celular Créditos das imagens e Condições de Utilização NETXPLICA :: http://netxplica.com 02 03 04 05 06 07 08 09 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 2 com o auxílio da agulha de dissecção. Distende o fragmento. em seguida. Figs. o citoplasma. NETXPLICA :: http://netxplica.com 3 . 8. a parede celular e o vacúolo. alguns organelos celulares da epiderme da cebola. 2. com a tesoura. 5. 4.ieoonions. substituindo o vermelho-neutro (corante). 3. o núcleo. Destaca. Coloca uma gota de vermelho-neutro. Coloca o fragmento sobre a gota de corante. Repete os passos (1 a 7) anteriores. com a pinça. Cobre a preparação com a lamela e observa ao microscópio nas várias ampliações. Esquematiza o observado. o Identifica. 7. 02 e 03 – Células da epiderme da face côncava de uma túnica de um bolbo da cebola. pouco concentrado. de modo a obteres um pequeno quadrado de aproximadamente 5mm de lado. sobre uma lâmina. tais como a membrana celular. através da legendagem dos esquemas efectuados. Corta o fragmento obtido. por azul-de-metileno. um fragmento da epiderme da face côncava de uma túnica do bolbo da cebola.com/images/sales/red_onions. 6. primeiro por água iodada e. em caso de necessidade.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica de células de cebola Material: http://www. 01 Procedimento: 1.jp g • • • • • • • • • Microscópio Lâminas e lamelas Pinça Agulha de dissecção Tesoura Vermelho-neutro Água iodada Azul-de-metileno Cebola Fig. NETXPLICA :: http://netxplica.Célula epitelial da boca com bactérias – já foram identificadas cerca de 500 bactérias diferentes na boca humana. Esquematiza o observado. com o auxílio de outro palito. Fig. com o palito. Cobre a preparação com a lamela e observa ao microscópio nas várias ampliações.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica de células do epitélio bocal Material: • • • • • Microscópio Lâminas e lamelas Palitos Conta-gotas Azul-de-metileno diluído http://www. 4. 04 1. o citoplasma e o núcleo. Coloca uma gota da solução diluída de azul-de-metileno no centro de uma lâmina. 2.sporeworks. 05 . a superfície interna da bochecha.com 4 . alguns organelos das células do epitélio bocal.com/ Procedimento: Fig. o Identifica. 3. através da legendagem do esquema efectuado. Raspa. Coloca. tais como a membrana celular. 5. o produto obtido sobre a gota de azul-demetileno. Material: • • • Raízes de pinheiro. NETXPLICA :: http://netxplica.com 5 . Figs. com cogumelos nas proximidades. Fig. com o auxílio de bibliografia adequada. 2.Observa as raízes com a lupa binocular. 08 e 09 – Micorrizas observadas com ampliações sucessivamente maiores. Os fungos têm a capacidade de absorver e concentrar fósforo de uma forma mais eficiente do que a efectuada pelas raízes da planta. o fungo fornece-lhe este nutriente mineral imprescindível ao seu bom desenvolvimento e obtém da planta matéria orgânica por ela produzida.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Factores bióticos: Observação de micorrizas (fungos em associação com raízes de plantas) Mais de três quartos das espécies de plantas com sementes possuem fungos associados às suas raízes. 3. o Legenda os esquemas efectuados.Observa macroscopicamente as raízes. Assim. o Explica as vantagens desta associação para o meio ambiente.Sacode suavemente as raízes. pois tanto o fungo como a planta beneficiam com a relação. Lupa binocular Placas de Petri Procedimento: 1. 4.Esquematiza o que observas. 06 – Micorrizas. 07. de modo a removeres as partículas de solo. Esta associação é mutualista. 5. a partir do ar e das chuvas (s. particularmente sensíveis a substâncias tóxicas). NETXPLICA :: http://netxplica. na maioria das vezes.Coloca os espécimes de líquenes recolhidos na saída de campo em frascos com água. O fungo. efectua cortes finos nos líquenes. e por isso obrigatória.Com a ajuda da lâmina de barbear. protege a alga da desidratação e fornece-lhe água e sais minerais que absorve. Esquematiza o que observa com a objectiva de maior ampliação.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Factores bióticos: Observação de líquenes (algas em associação com fungos) Um líquen é uma associação simbiótica. Fotografa-os. 4. ser autotrófico. 10 – Desenhos de líquenes observados à vista desarmada. ser heterotrófico. o Explica porque podem os líquenes ser considerados indicadores de poluição. algumas horas antes do início da actividade. por isso. A alga. o Identifica a alga e o fungo.com 6 . rapidamente. sintetiza através da fotossíntese matéria orgânica que fornece ao fungo. de forma a facilitar a execução de cortes para microscopia. Fig. adiciona água como meio de montagem e procede à dissociação do material biológico com a ajuda das agulhas de dissecação. Material: • • • • • • Líquenes de vários tipos Lâmina de barbear Lupa binocular Microscópio Lâminas e lamelas Agulhas de dissecação • Óleo de imersão • • • • • Conta-gotas Placas de Petri Frascos Pinças Bisturi ou navalha Procedimento: 1. absorvem-nos. A alga e o fungo são facilmente distinguidos pela coloração e forma das suas células (esféricas e verdes nas algas). 3. 2.Coloca lamelas sobre o material biológico dissociado e observa ao microscópio nas várias ampliações. Os líquenes parecem absorver alguns sais minerais a partir do substrato mas. à lupa e ao microscópio.Coloca os cortes sobre lâminas distintas. se possível.Coloca os líquenes nas placas de Petri e observa-os com a lupa binocular. estabelecida entre fungos e algas unicelulares. nos esquemas efectuados. 6. retira pequenos fragmentos de tecido da zona vermelha dos nódulos seccionados e coloca-os sobre lâminas de vidro.Coloca uma gota de água (ou azul-de-metileno) sobre as lâminas contendo os cortes dos nódulos e esmaga os fragmentos com a vareta de vidro. faveira ou ervilheira) Lâmina de barbear Lupa binocular Microscópio Lâminas e lamelas Agulhas de dissecação • • Placas de Petri Pinças • • • • Varetas de vidro Conta-gotas Óleo de imersão Azul-de-metileno Procedimento: 2.Observa macroscopicamente os nódulos presentes nas raízes das leguminosas. o Legenda os esquemas efectuados.Coloca a lamela sobre o preparado e observa ao microscópio óptico. convertendo-o em amónia. com o auxílio de uma pinça. 11 – Nódulos nas raízes de uma leguminosa. Material: • • • • • • Leguminosas (trevo. feijoeiro. tremoceiro. Esquematiza o que observas com a objectiva de imersão. Figs. 3. em placas de Petri. para o meio ambiente. Fig. o Explica as vantagens desta associação. estabelecendo com elas uma relação simbiótica em que fornecem amónia à planta e obtêm dela nutrientes orgânicos. apresentam a capacidade de fixarem o azoto atmosférico. e observa-os com a lupa binocular.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Factores bióticos: Observação de bactérias fixadoras de azoto atmosférico em raízes de leguminosas Apesar de 79% da composição da atmosfera ser azoto (N2). Retirea um dos nódulos e. secciona-o transversalmente. algumas bactérias do solo. NETXPLICA :: http://netxplica. 13 e 14 – Nódulos observados com ampliações sucessivamente maiores. por exemplo as do género Rhizobium. Contudo. Estas bactérias podem invadir as raízes das leguminosas. Esquematiza o que observas.Lava as raízes das leguminosas com água. com o auxílio de bibliografia adequada.Coloca os cortes. com a ajuda da lâmina.Com a ajuda das agulhas de dissecação. soja. de forma a remover as partículas de solo nelas aderidas. este elemento encontra-se indisponível para as plantas e outros seres vivos. 4. 12. 5. 7.com 7 . aquários…) (1) NOTA (1) – Em alternativa. deixam de se ver rapidamente. com a pipeta.Os seres que se movimentam são difíceis de observar porque. tais como a membrana celular. Coleps e Acanthocystis. Repete os passos anteriores com água de outros frascos. o citoplasma. Podes facilitar a observação juntando à preparação algumas (poucas) fibras de algodão. o núcleo e eventuais organelos locomotores como cílios e flagelos.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação de seres vivos numa gota de água Material: • • • • • Microscópio Lâminas e lamelas Pipetas Algodão (1) Frascos com água de origem diversa (lagos.edu/microscope/portal. 4. NETXPLICA :: http://netxplica. 8 . através da legendagem dos esquemas efectuados. colocando. charcos. alguns organelos celulares dos seres observados. Monta a gota de água entre lâmina e lamela (2). num recipiente de vidro aberto. de modo a aprisioná-los ou dificultar-lhes a movimentação. à temperatura ambiente e ao abrigo da luz directa do Sol. durante 6 a 10 dias. feno ou outra vegetação seca com água.mbl. podes preparar uma infusão. Fig. uma gota de água de um dos frascos. Observa ao microscópio. 3. Euglena. 16 – Espirogira (alga filamentosa). 5.php o o NOTA (2) . barragens. Procedimento: 1. Metopus. Spirostomum. Paramecium. dadas as pequenas dimensões do campo do microscópio. tanques. 15 . Recolhe.com o Identifica. podes tentar identificar os seres vivos através do site: http://starcentral. Fig.De cima para baixo: Stentor. Esquematiza os seres observados. 2. o Se tiveres curiosidade. 17 Procedimento: 1. .A água iodada. que decompõe o amido. adiciona um dedo de água destilada a cada um dos tubos e esmaga a banana o melhor possível com a vareta de vidro. com a faca de cozinha. Adiciona água destilada ao tubo de ensaio 3. 4. um precipitado cor de tijolo. 6. (2) Quando se aquece um tubo de ensaio.com 9 . durante alguns minutos. Regista os resultados obtidos nos passos 3. 4 e 6 num quadro. 2.O licor de Fehling. uma rodela de banana em 3 porções iguais. e efectua o teste do licor de Fehling. 3. de cor amarela. etc. adicionando-lhe algumas gotas de água iodada. obtidas no passo 1. Corta. o Que conclusões podes tirar dos resultados obtidos? (1) Normalmente o licor de Fehling prepara-se adicionando iguais quantidades de soluções (A e B) deste reagente. nos tubos de ensaio 1 e 2. 5. a quente. Material: • • • • • • • Banana. de modo a evitar eventuais danos em caso de projecção do conteúdo. Água iodada e licor de Fehling (1) Lamparina e pinça de madeira 3 tubos de ensaio num suporte Vareta de vidro e pipeta graduada Faca de cozinha Água destilada Fig.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Amido – um polissacarídeo de glicose presente em órgãos vegetais Princípios: . corando-o de azulvioleta. no tubo de ensaio 3. é um reagente indicador de glicose. 2 ml de licor de Fehling e levando-o à ebulição (2). é um reagente indicador do amido. batata. Efectua o teste do licor de Fehling ao conteúdo do tubo 2. de cor azul. NETXPLICA :: http://netxplica. Efectua o teste da água iodada ao conteúdo do tubo 1. 7. Coloca a terceira porção de banana obtida no passo 1. Coloca 2 das 3 porções de banana. até ser atingido um volume igual ao dos tubos 1 e 2. adicionando-lhe.A amilase é uma substância (enzima) presente na saliva. formando. deve virar-se a sua abertura para um local onde não haja ninguém. com a pipeta. . depois de bem mastigada. 18 – Flor de pelargónio. um fragmento da epiderme da página superior de uma pétala. Monta o fragmento numa gota de solução de Ringer. clara. e viceversa. Repete os passos 1.: pelargónio) Fig. entra. utilizando água destilada em substituição da solução de Ringer.com 10 . o Completa as afirmações. sai. As células ficam __C__. As células ficam __J__. com a pinça. parede. túrgidas. entre a lâmina e a lamela. que __G__ de volume. plasmolisadas. que __B__ de volume. mais intensa a tonalidade da célula. Observa ao microscópio e esquematiza. Destaca. 2. 5. maior. a água __A__ para os vacúolos. delimitado pela membrana plasmática. Procedimento: 1. sendo acompanhados pelo citoplasma. Quando as células são montadas numa solução concentrada. 2 e 3 anteriores. Quanto maior a concentração desses pigmentos. devido à __L__ concentração dos pigmentos. com os termos: aumentam. 2 e 3 anteriores. menor. devido à __E__ concentração dos pigmentos. 3. Entre o vacúolo e a parede celular localizam-se o núcleo e o citoplasma. 4. apresentando uma coloração mais __K__. apresentando uma coloração mais __D__. a água __F__ dos vacúolos. utilizando solução de cloreto de sódio concentrada em substituição da solução de Ringer. desprendendo-se da __H__ __I__.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Movimento da água através da membrana celular As células da epiderme das pétalas de flores coloridas têm um vacúolo muito desenvolvido corado naturalmente por pigmentos solúveis na água que contêm. NETXPLICA :: http://netxplica. intensa. Material: • • • • • • • • Microscópio óptico Lâminas e lamelas Pinça Conta-gotas Água destilada Solução de cloreto de sódio concentrada Solução de Ringer Flor vermelha (ex. que se retrai. celular. diminuem. Quando as células são montadas em água destilada. Repete os passos 1. 2. Coloca as folhas num vidro de relógio com água sob uma lâmpada acesa. o Identifica alguns constituintes. 3. Observa a preparação ao microscópio nas diferentes ampliações. entre a lâmina e a lamela.com 11 . Corta a ponta de uma folha e monte-a numa gota de água. Material: • • • • • • • • Microscópio Lâmina e lamela Vidro de relógio Tesoura. Desenha o que observas com a ampliação de 400X. 5. Figs. Pinça Agulha de dissecção Conta-gotas Elódea Procedimento: 1. Destaca algumas folhas da região terminal de uma elódea. com o auxílio de bibliografia adequada.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica de cloroplastos de elódea Fig. NETXPLICA :: http://netxplica. 19 – Elódea (planta aquática de água doce). 20 e 21 – Aula prática de Biologia (Cursos Profissionais). 4. 5. Verte o filtrado para a placa de Pétri. 2. 22. Adiciona acetona. e aguarda uns minutos.com 12 . 4. agita com a vareta e filtra. 24. Corta as folhas em pedaços. 26 e 27 – Aula prática de Biologia (Cursos Profissionais). refere a principal função dos pigmentos fotossintéticos. 3. explica a mudança de coloração das folhas no Outono. NETXPLICA :: http://netxplica. 25. Junta um pouco de areia fina e esmaga com o pilão. 23. para dentro do almofariz. como mostra a figura. Introduz no filtrado um papel de filtro cortado ao meio.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Quais os pigmentos que existem nos cloroplastos? Material: • • • • • Folhas Tesoura Funil Placa de Pétri Gobelé • • • • • Acetona ou Álcool a 90% Areia fina Vareta Papel de Filtro Almofariz + Pilão Procedimento: 1. Figs. o Consulta bibliografia adequada ou a Internet e: identifica os pigmentos fotossintéticos observados no papel de filtro. 3. Regista o observado. com água iodada. Corta uma folha que não tenha sido coberta (A) e a folha tapada (B). Coloca as folhas em placas de Pétri. NETXPLICA :: http://netxplica. 7. 6. Introduz essas folhas em água e ferver. 28 – Folhas de pelargónio. 29 – Folha de pelargónio. Coloca a planta num ambiente sem luz. durante cinco minutos. 4. 2.com 13 . Tapa uma folha com papel de estanho e coloca a planta à luz durante algumas horas. durante 48 horas. Explica a diferença de resultados no que respeita à presença/ausência de amido. em banho-maria. envasada Água iodada (indicador de amido. Introduz as folhas fervidas em álcool em ebulição. Procedimento: 1. Fig.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Fotossíntese e produção de amido Material: • • • • • • • • • Planta com folhas verdes e brancas (ex: pelargónio). 5. até ficarem descoradas (a descoloração significa que os pigmentos fotossintéticos foram destruídos). corando de azulvioleta na sua presença) Papel de estanho Tesoura Placa de aquecimento Banho-maria 4 Gobelés 2 placas de Pétri Álcool a 90% Fig. Explica a não distribuição uniforme de amido na folha. em seguida. 30.) Tabuleiro metálico de levar ao forno Procedimento: 1.Folhas adaptadas a um ambiente seco. cobre-o com papel de cera e. Estende um dos guardanapos (A) sobre o tabuleiro. 6. o Faz a analogia entre os guardanapos e os diferentes tipos de folhas. o Relaciona a superfície das folhas com a velocidade da evaporação o Relaciona as adaptações das folhas das plantas do deserto com a diminuição das perdas de água.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Estrutura das folhas e taxa de evaporação|transpiração Material: • • • 3 guardanapos de papel verdes Papel de cera (q. 2. desenrola os guardanapos. b. sem que fiquem a pingar.com 14 . apalpa-os e regista os resultados. Fig. NETXPLICA :: http://netxplica. 4. Humedece os guardanapos de papel (A. Enrola o último guardanapo (C) do mesmo modo que o segundo. Passadas 24 horas. Põe o tabuleiro com os guardanapos num local onde receba luz solar directa. coloca-o tabuleiro. Enrola o segundo guardanapo (B) e coloca-o no tabuleiro ao lado do guardanapo estendido. 5. B e C) com água. 3. Transpiração. a humidade e o vento. o Fig. A taxa de transpiração (quantidade de água libertada por unidade de tempo) pode ser determinada através do uso de potómetros. 31 – Potómetro. Planifica e executa uma actividade experimental que implique o uso de potómetros. Fig. NETXPLICA :: http://netxplica.com 15 .Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Factores que afectam a transpiração A transpiração é influenciada por vários factores. para estudar a influência de um dos factores referidos anteriormente na transpiração das plantas (tomateiro). 33 . 32 – Transpiração. Fig. a temperatura. como a luz. uma porção da metade inferior dos dois caules 5. 3.com 16 . com a tesoura. NETXPLICA :: http://netxplica. Efectua um corte transversal. conforme a figura seguinte. as folhas a um dos pedaços (B). a partir da extremidade superior. o Identifica as estruturas coradas. com soluções diluídas de corante alimentar. Divide longitudinalmente. Coloca as montagens num local iluminado e arejado e aguarda um dia. Corta. 35 – Montagem e resultados da actividade. na base dos caules. Fig. e regista a distância percorrida pelo corante em cada um. Efectua cores transversais. o Formula uma hipótese que explique as diferenças verificadas entre A e B. lâmina de barbear ou x-acto Água 4 placas de Petri Tesoura Fig. Selecciona dois pedaços (A e B) de aipo curtos e de igual comprimento. 4.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Ascensão de água nas plantas 1 Material: • • • • • • Aipo Corante alimentar vermelho e verde Bisturi. com o auxílio do bisturi. Monta os dois conjuntos nas placas de Petri. 2. 7. nos conjuntos A e B. com o bisturi. 6. 34 – Aipo Procedimento: 1. com o bisturi. 2.Montagem experimental com uma possibilidade diferente. Coloca as flores nos copos. Coloca as montagens num local iluminado e arejado e aguarda um dia. à direita. 4. 36 – Lupa binocular. o Explica as diferenças encontradas. Repete o passo 1. Procedimento: 1. com soluções diluídas de corante alimentar. com a lâmina de barbear e observa-o à lupa. Faz um corte muito fino do caule de uma das flores. 5. utilizando um caule de uma flor corada. Observa o aspecto das flores. NETXPLICA :: http://netxplica. 37 . 3.com 17 .Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Ascensão de água nas plantas 2 Material: • • • • • • • Lupa binocular Flores de pétalas brancas Gobelés ou copos de vidro Corante alimentar de várias cores Lâmina de barbear ou x-acto Água Tesoura Fig. Fig. d) mistura de 10 partes de carmim e 1 parte de verde-iodo – 1 minuto. 40 – Caule (extremidade) 18 . por vidros de relógio com: a) lixívia .Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica dos tecidos condutores • Caso não possuas preparações definitivas.Raiz (extremidade) NETXPLICA :: http://netxplica. 5.3 minutos. em gota de água. raízes e caules herbáceos de diferentes plantas Procedimento: 1. 2. Material: Fig. Monta os melhores cortes entre lâmina e lamela. 3. b) água destilada – 1 minuto. 39 .com Fig. sucessivamente. Efectua cortes o mais finos possível dos órgãos a observar. podes efectuar as tuas próprias. passa os cortes. Esquematiza o observado e identifica os feixes condutores (vasos xilémicos e floémicos) com o auxílio do quadro da página anterior ou bibliografia adequada.30 segundos. Fig. c) ácido acético 1% . utilizando diferentes ampliações. 4. 38 – Vasos condutores • • Microscópio óptico composto • Lâminas e lamelas • Micrótomo ou lâmina de barbear • Agulha lanceolada • Vidros de relógio • Água destilada • Lixívia • Verde-iodo • Carmim aluminado • Ácido acético 1% Folhas. Observa ao microscópio. Utilizando uma agulha lanceolada. 42. com o auxílio da pinça e da agulha de dissecção.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica de estomas da epiderme de uma folha de Tradescantia sp. uma pequena película da epiderme da página inferior de uma folha de Tradescantia sp.Estomas de tradescância purpúrea (Tradescantia pallida). o Legenda um estoma no esquema efectuado. Observa ao microscópio óptico e esquematiza. NETXPLICA :: http://netxplica. 41. 3. Procedimento: 1.com 19 .Tradescância purpúrea (Tradescantia pallida). 2. utilizando azul de metileno como meio de montagem. Material: • • • • • • Microscópio óptico Lâminas e lamelas Tradescância Agulha de dissecção Pinça Corante (azul de metileno) Fig. Fig. Efectua uma preparação microscópica com o material obtido no passo 1. Destaca. Coloca uma pequena porção de mercúrio no tubo de vidro Liga o tubo de vidro com mercúrio ao tubo colocado no passo 2. 4. 5. 6. NETXPLICA :: http://netxplica.com 20 . com a caneta de acetato. com a caneta de acetato. 2. 44 – Montagem da actividade. 3. 7. o nível (inicial) de mercúrio no tubo de vidro. Marca. o Formula uma hipótese explicativa para os resultados obtidos. Coloca o dispositivo num local arejado e iluminado e rega a planta. Procedimento: 1. 43 – Raízes de tomateiro.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Transporte no xilema: hipótese da pressão radicular Material: • • • • • • • Planta envasada (tomateiro …) Água Tubo de borracha Tubo de vidro curvo Mercúrio Faca. Liga um tubo de borracha curto e justo à extremidade enraizada. Corta a planta envasada 6 a 8 cm acima da superfície do solo. o nível (final) de mercúrio no tubo de vidro. Fig. bisturi ou x-acto Caneta de acetato Fig. Ao fim de 45 minutos marca. Recolhe algum material (precipitado) da fase aquosa. lentamente. 5. 3. álcool refrigerado em quantidade aproximadamente igual à do filtrado ao longo da parede da proveta. c) passa novamente o precipitado por água destilada. o produto obtido através de papel de filtro e de algodão hidrófilo. esbranquiçada. 7. 8. formando uma massa filamentosa. banana…) 10 ml de detergente da loiça 1 colher de sal 70 ml de água destilada Almofariz Recipiente com gelo Funil Papel de filtro Algodão hidrófilo 2 tubos de ensaio Álcool refrigerado Proveta Pipeta Vareta Ácido clorídrico normal Reagente de Schiff (fucsina descorada) Fig. 6. e outra inferior. que contém proteínas e outros materiais. Coloca a mistura obtida no almofariz e tritura.com 21 . Descasca e corta o quivi em pequenos fragmentos e coloca-os no almofariz. Coloca o material num tubo de ensaio e observa o “novelo de DNA” (2). aquosa (1). Filtra. Procedimento: 1. d) mergulha o precipitado no reagente de Schiff durante 3 min. para a proveta. b) mergulha o precipitado em ácido clorídrico normal durante 15 s. alcoólica. com o auxílio da vareta e com movimentos circulares. 45 – Quivi. (2) – Podes colorir o DNA da seguinte forma: a) coloca o precipitado em água destilada durante 10 s.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Extrair e visualizar moléculas de DNA de Quivi Material: • • • • • • • • • • • • • • • • Quivi (ou cebola. Aguarda algum tempo e procura observar a formação de duas fases: uma superior. Deita o sal e o detergente num gobelé com água destilada e agita suavemente. NETXPLICA :: http://netxplica. 2. sucessivamente. 4. Faz escorrer. (1) – O DNA é insolúvel no álcool e precipita. Para obteres raízes jovens coloca. 7. 12. Comprime a lamela. 14. NETXPLICA :: http://netxplica. devem ser utilizadas quando têm entre 3 e 5mm de comprimento. uns dias antes da realização do trabalho. Adiciona algumas gotas de ácido clorídrico e aguarda 30 minutos. Coloca 2 a 3 gotas de orceína acética numa lâmina de vidro. As raízes. 11. a cebola sobre um gobelé com água. para esmagar as raízes. Coloca as extremidades das raízes sobre a orceína acética e cobre com a lamela. Levanta a lamela e repete o passo anterior.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Observação microscópica de fases do ciclo celular Material: Extremidades de raízes jovens de cebola Microscópio óptico composto Lâminas e lamelas Material de dissecção (agulha e bisturi) Ácido clorídrico a 5% Vidro de relógio Lamparina Papel de filtro Orceína acética (corante do DNA) Fig. sem carbonizar as raízes. Esquematiza e identifica as fases do ciclo celular. Passa a lâmina sobre a chama da lamparina. que se começam a formar após alguns dias. 47 – Extremidade de uma raiz ao MOC. Fig. a. 46 – Cebola. As extremidades das raízes (figura 49) são zonas de intenso crescimento. Observa ao microscópio nas diferentes ampliações. • • • • • • • • • Procedimento: 6. com o cabo da agulha de dissecção. 9. Limpa o excesso de corante com papel de filtro.com 22 . sendo possível observar inúmeras células em divisão. 13. 8. Coloca 3 extremidades das raízes (com cerca de 3mm) num vidro de relógio. 10. ac.mooseyscountrygarden. 15 .wordpress.http://starcentral. 29 . 47 .danacode.ieoonions.com/ Pág.Ana Sofia Pág.http://www. 28 .http://eppcapps.http://truluvrabbitry.com.Fonte desconhecida.icbm. 04 | Fig. 16 | Fig. 05 | Figs.uk/ Pág.com 23 .uk/ Pág. 07 | Figs. 01 . 15 | Fig.org/ :: Fig. Pág. 02 e 03 .http://www. 35 . 45 .com/ :: Fig. 01 | Capa . 11 | Fig.http://www. 44 .com/ :: | Fig.flickr.de/ Pág. 31 . 22 a 27 .http://serc.ky.edu/ Pág. 33 http://. 08 | Fig.bio.com/ :: Fig.com/ :: Fig. 41 .ubcbotanicalgarden.http://www.sporeworks. 06 a 09 – Fonte desconhecida. 34 .bonappetit. 38.http://watersavers.gov/ :: Figs. 19 . 22 | Fig. 10 .http://www. 30 . 17 .http://phschool.http://classes.http://.http://.co.wsu.com/ | Figs. 02 | Índice .hortla. 17 | Fig.ipb.http://www.meemelink.cornell.Ciências Naturais :: Biologia 20 TRABALHOS PRÁTICOS Créditos das imagens Pág.http://www.com/ Pág.il/ Pág.uk/ Condições de utilização Este guia pode ser fotocopiado e utilizado livremente.id/ :: Fig.com/ Pág. 06 | Fig. 36 . Pág.edu/ | Fig.co. 37 . 21 | Fig.http://www.com/ :: Fig. 03 | Fig. 19 | Fig. 13 | Fig.treehuggingfamily.microscopy-uk.Fonte desconhecida.ieoonions.wsu. desde que se faça referência ao site http://netxplica.mbl. Edição revista a 9 de Abril de 2009 NETXPLICA :: http://netxplica. 11 a 14 .http://www.com/ Pág.org.carleton.http://farm4. 04 .phschool. 14 | Fig.ac. 18 .athelasplants.judithadam.http://classes.http://www. 32 .Porto Editora Pág. 42 .http://www. 20 | Fig.edu/ Pág.org/ Pág.http://www.com/ Pág.http://biog-101-104.com/ | Fig 05 .edu/ Pág. 39.dkimages.com/ :: Fig. 46 . 10 | Fig.microscope-microscope. 18 | Fig. 20 e 21 – Ana Sofia Pág. Pág. 40 . 16 . 12 | Figs.files.http://www.york. 43 .http://bima.edu/ Pág. 09 | Fig.static.http://www.hortla.com/ Pág.